不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓提取物抗氧化與抑菌作用研究

姜文潔,孫曉紅,*,朱 穎,楊 晗,劉曉鈺，吳啟華,潘迎捷

(1.上海海洋大學(xué)食品學(xué)院,上海水產(chǎn)品加工及貯藏工程技術(shù)研究中心,上海 201306;2.美國(guó)緬因大學(xué)食品與農(nóng)業(yè)學(xué)院,緬因 04469)

不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓提取物抗氧化與抑菌作用研究

姜文潔1,孫曉紅1,*,朱 穎1,楊 晗1,劉曉鈺1，吳啟華2,潘迎捷1

(1.上海海洋大學(xué)食品學(xué)院,上海水產(chǎn)品加工及貯藏工程技術(shù)研究中心,上海 201306;2.美國(guó)緬因大學(xué)食品與農(nóng)業(yè)學(xué)院,緬因 04469)

本文以18種栽培藍(lán)莓的乙醇提取物為研究對(duì)象,利用體外法研究了不同產(chǎn)區(qū)藍(lán)莓提取物對(duì)DPPH自由基和羥基自由基的清除作用及還原能力,分別采用福林酚法、亞硝酸鈉法和pH示差法測(cè)定了18種藍(lán)莓中總酚、黃酮及花青素的含量,同時(shí)利用試管二倍稀釋法測(cè)定了不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓提取物對(duì)副溶血性弧菌的抑制作用。結(jié)果表明,不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓對(duì)DPPH自由基及羥基自由基均具有良好的清除作用,對(duì)DPPH自由基清除率的范圍為11%～65%,對(duì)羥基自由基清除率的范圍為20%～64%,杭州產(chǎn)區(qū)的藍(lán)莓還原能力強(qiáng)于上海及青島兩個(gè)產(chǎn)區(qū);不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓的總酚、黃酮及花青素含量不同,總酚含量較高的藍(lán)莓具有較好的抗氧化能力;不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓粗提液對(duì)副溶血性弧菌表現(xiàn)出不同程度的抑制作用,其MIC值最小的為15.625mg/mL,最大的為250mg/mL。由此可以得出,不同產(chǎn)區(qū)不同品種藍(lán)莓在功能和活性成分上存在差異。

不同產(chǎn)區(qū),藍(lán)莓提取物,抗氧化,抑菌作用

藍(lán)莓(Blueberry),又稱越桔,屬于杜鵑花科越橘屬多年生常綠灌木。果實(shí)呈現(xiàn)深藍(lán)色,外面裹有一層白色果粉,酸甜適口,風(fēng)味獨(dú)特,具有極高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值。藍(lán)莓含有豐富的多酚類物質(zhì),具有抗氧化、抗癌、抗炎癥、抗衰老及預(yù)防心血管疾病等多種生理活性功能[1]。自1983年我國(guó)引種藍(lán)莓以來(lái),全國(guó)藍(lán)莓種植企業(yè)及大型種植戶不斷增加,累計(jì)約200多家,各類藍(lán)莓品種超過(guò)200個(gè),種類繁多。

國(guó)內(nèi)外很多研究者對(duì)藍(lán)莓的抗氧化能力進(jìn)行過(guò)探討。周方等[2]通過(guò)對(duì)6個(gè)高叢藍(lán)莓品種的花青素含量及抗氧化能力研究發(fā)現(xiàn),品種埃利奧特表現(xiàn)出較強(qiáng)的 DPPH 自由基清除能力和總還原能力,有較好的抗氧化效果。姜愛(ài)麗[3]等人對(duì)四個(gè)品種北高叢藍(lán)莓進(jìn)行了抗氧化活性研究。Wang等[4]人以不同品種的兔眼藍(lán)莓為對(duì)象,研究了不同品種之間的抗氧化能力差異。關(guān)于藍(lán)莓抑菌能力方面的報(bào)道,國(guó)外比較常見(jiàn)。Chatterjee等[5]發(fā)現(xiàn)藍(lán)莓對(duì)clarithromycin有抗藥性的幽門(mén)桿菌(49503)有抑制作用,或加強(qiáng)其對(duì)clarithromycin的敏感性。Caillet[6]等人研究結(jié)果表明,藍(lán)莓提取物對(duì)沙門(mén)氏菌、大腸桿菌、銅綠假單胞菌、單增李斯特菌和金黃色葡萄球菌等致病菌均有一定的抑制作用。目前,國(guó)內(nèi)尚未有關(guān)于不同產(chǎn)區(qū)不同品種藍(lán)莓抗氧化和抑菌功能及其活性成分的研究。因此,本研究以我國(guó)三個(gè)地區(qū)18個(gè)不同品種藍(lán)莓作為研究對(duì)象,測(cè)定了其總酚含量、花青素含量以及黃酮成分含量,對(duì)抗氧化功能以及抑菌功能進(jìn)行了探討,為藍(lán)莓栽培和開(kāi)發(fā)藍(lán)莓保健食品等提供理論支持。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

愛(ài)國(guó)者,藍(lán)豐,北青及尼爾森4個(gè)品種 購(gòu)自青島沃林藍(lán)莓有限公司;園藍(lán),森吐里昂,杰兔,巨豐,粉藍(lán),頂峰,精華,梯芙藍(lán)8個(gè)品種 購(gòu)自杭州貝萊特藍(lán)莓綜合開(kāi)發(fā)有限公司;奧尼爾,藍(lán)豐,粉藍(lán),燦爛,日出及H31 6個(gè)品種 購(gòu)自上海金山敏藍(lán)藍(lán)莓專業(yè)合作社;實(shí)驗(yàn)用三株副溶血性弧菌:ATCC33847、ATCC17802購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院微生物研究所,F36由本實(shí)驗(yàn)室分離并保存,菌株于-20℃冰箱保存。

1,1-苯基-2-苦肼基自由基(DPPH) 購(gòu)自Sigma公司;過(guò)氧化氫,硫酸亞鐵,水楊酸,磷酸二氫鈉,磷酸氫二鈉,鐵氰化鉀,三氯乙酸,三氯化鐵,無(wú)水乙醇,亞硝酸鈉,硝酸鋁,氫氧化鈉,碳酸鈉,沒(méi)食子酸,蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,福林酚等 購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

超聲清洗儀SK5200HP 上?？茖?dǎo)超聲儀器有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海申生科技有限公司;循環(huán)水真空泵SHB-3 上海申生科技有限公司;電熱恒溫水浴鍋 上海申生科技有限公司;8010s 勻漿機(jī) Waring Commerial;隔水式恒溫培養(yǎng)箱 上海一恒科技有限公司;ESCO超凈工作臺(tái) 美國(guó)Airstream公司;Bio-Tek酶標(biāo)儀 美國(guó)伯騰儀器有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 藍(lán)莓粗提液的制備 參考謝慶超等[7]方法制備藍(lán)莓粗提液。

1.2.2 不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓粗提液對(duì)DPPH·的清除作用 不同品種藍(lán)莓粗提液對(duì)DPPH·的清除作用參照Cerezo等[8]的方法進(jìn)行改進(jìn)。用無(wú)水乙醇配制0.1mmol/L的DPPH溶液,避光保存。具體實(shí)驗(yàn)步驟按照表1進(jìn)行。將反應(yīng)體系充分混勻,室溫下避光靜置30min。反應(yīng)結(jié)束后,在517nm處測(cè)定吸光度值。0.5mg/mL抗壞血酸作為陽(yáng)性對(duì)照。

其自由基清除率按照公式(1)進(jìn)行計(jì)算

式中:Sa表示DPPH自由基清除率,Ai表示實(shí)驗(yàn)組,Aj表示空白實(shí)驗(yàn)組,A0表示對(duì)照實(shí)驗(yàn)組。

表1 DPPH·法反應(yīng)體系Table 1 Method of DPPH·

1.2.3 不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓粗提液對(duì)OH·的清除作用 參照Smironff等[9]的方法做改動(dòng),反應(yīng)體系包括1mL H2O2(8.8mmol/L),1mL FeSO4(9mmol/L),1mL水楊酸-乙醇(9mmol/L),樣品溶液1mL,最后加入H2O2啟動(dòng)整個(gè)反應(yīng),37℃條件下反應(yīng)30min。由于藍(lán)莓粗提液本身具有吸光值,以1mL FeSO4(9mmol/L),1mL水楊酸-乙醇(9mmol/L),1mL樣品溶液及1mL蒸餾水作為藍(lán)莓粗提液的本底吸收值。其自由基清除率按照公式(2)進(jìn)行計(jì)算。其中0.5mg/mL抗壞血酸作為陽(yáng)性對(duì)照。

式中:Sa表示OH自由基清除率,A0表示空白對(duì)照的吸光度,AX表示加入樣品的吸光度,AX0表示樣品的本底吸光度。

1.2.4 還原能力實(shí)驗(yàn) 參照李穎暢等[10]的方法,略做改動(dòng)。取一定濃度的樣品溶液2.5mL于試管內(nèi),依次加入2.5mL 0.2mol/L磷酸鹽緩沖液,2.5mL 1%的鐵氰化鉀,于50℃水浴保溫20min后,快速冷卻,再加入2.5mL 10%三氯乙酸(TCA),以3000r/min離心10min,取上清液2.5mL,加入2.5mL蒸餾水,0.5mL 0.1%的三氯化鐵溶液,充分混勻,靜置10min后在700nm處測(cè)定吸光度值,吸光度越大,表示樣品的還原能力越強(qiáng)。以0.5mg/mL抗壞血酸作為本實(shí)驗(yàn)的陽(yáng)性對(duì)照。

1.2.5 總酚含量的測(cè)定 總酚含量采用Folin-Ciocalte[11]的方法進(jìn)行測(cè)定,以沒(méi)食子酸作為標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)。沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制:準(zhǔn)確稱取沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)品0.05g,配制成0.1mg/mL的沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別移取標(biāo)準(zhǔn)品溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mL于2mL離心管中,加超純水至1mL,加入0.4mL Folin-Ciocalte試劑,混合均勻后再加入0.8mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的Na2CO3飽和溶液,定容至5mL,室溫下靜置2h,在770nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。以沒(méi)食子酸的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo)繪制沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線。樣品總酚含量的測(cè)定:準(zhǔn)確吸取一定濃度的樣品溶液100μL,定容至1.0mL,加入0.4mL Foiln-Ciocalte試劑以及0.8mL 10% Na2CO3飽和溶液,定容至5mL,室溫下靜置2h,總酚含量表示為沒(méi)食子酸的當(dāng)量,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.6 黃酮含量的測(cè)定 黃酮含量采用NaNO3-AI(NO3)3的方法[12]測(cè)定,以蘆丁作為標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)。蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制:準(zhǔn)確移取0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0mL濃度為0.11mg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液于試管中,加入60%乙醇溶液至5mL,加入0.3mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的亞硝酸鈉溶液,混合均勻放置3min;再加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)10%硝酸鋁溶液0.3mL,放置6min;加入8%氫氧化鈉溶液2.0mL,最后用60%乙醇定容至10mL,混勻放置15min,分別于500nm處測(cè)定吸光度值。以蘆丁濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。樣品黃酮含量的測(cè)定:吸取樣品溶液500μL,用60%乙醇定容至5mL,按照標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)定方法,加入顯色劑,在500nm處測(cè)定吸光度值。黃酮含量表示為蘆丁當(dāng)量,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.7 花青素含量的測(cè)定 采用pH示差法[13]進(jìn)行花青素含量的測(cè)定,以矢車(chē)菊-3-葡萄糖苷為參照。取藍(lán)莓粗提液1mL,加入pH4.5的0.4mol/L的醋酸鈉緩沖液或pH1.0的0.025mol/L氯化鉀緩沖液4mL,搖勻。分別在520nm和700nm波長(zhǎng)處測(cè)定其吸光度值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)進(jìn)行3次。花青素含量按照以下公式進(jìn)行計(jì)算:

式中,C為藍(lán)莓中花青素的含量,mg/L;A=(OD520-OD700)pH1.0-(OD520-OD700)pH4.5;ε:摩爾吸光系數(shù),以矢車(chē)菊-3-葡萄糖苷的摩爾系數(shù)進(jìn)行計(jì)算,為26900;MW為矢車(chē)菊-3-葡萄糖苷的摩爾質(zhì)量,為449.2g/mol;DF為稀釋因子。最終以1g試樣中含有花青素的量(mg)來(lái)表示。

1.2.8 藍(lán)莓提取液對(duì)副溶血性弧菌的抑制作用 參照呂平等[14]的方法,采用試管二倍稀釋法。取8支無(wú)菌試管,向第1至第7支試管中加入2mL TSB;在第1支試管中加入2mL藍(lán)莓提取物原液(1000mg/mL),混勻后再吸取2mL至第2支試管,如此倍比稀釋至到第6支試管,混勻后吸取2mL棄去。第7支試管為不加藍(lán)莓提取液的生長(zhǎng)對(duì)照。第8支試管加入2mL無(wú)菌TSB和2mL藍(lán)莓提取液,混勻后棄去2mL。最終使第1支試管至第6支試管的藍(lán)莓粗提液濃度分別為1000、500、250、125、62.5、31.25、15.625mg/mL。向7支試管中加入10μL四種菌的菌液,37℃下培養(yǎng)24h后,進(jìn)行10倍稀釋,取合適梯度涂TCBS平板,于恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h,以菌落數(shù)無(wú)變化的最低藍(lán)莓提取物的濃度為MIC值,以菌落數(shù)不超過(guò)5個(gè)的最低藍(lán)莓提取物的濃度為MBC值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)進(jìn)行3次。

1.2.9 數(shù)據(jù)處理 利用SPSS17.0以及Origin8.0進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析及作圖。

2 結(jié)果與討論

2.1 不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓粗提液對(duì)DPPH自由基的清除作用

由圖1可以看出,不同產(chǎn)區(qū)不同品種藍(lán)莓對(duì)DPPH自由基的清除作用存在差異,抗壞血酸對(duì)DPPH自由基的清除能力較強(qiáng),其DPPH自由基清除率遠(yuǎn)高于其他18個(gè)品種。這可能與本實(shí)驗(yàn)中藍(lán)莓的提取方法有關(guān),本實(shí)驗(yàn)以藍(lán)莓粗提液為對(duì)象,沒(méi)有進(jìn)一步純化,導(dǎo)致其DPPH自由基清除能力與抗壞血酸差距較大。18個(gè)品種中,清除DPPH自由基能力的前三位排序?yàn)?森吐里昂>杰兔>園藍(lán),其中森吐里昂的DPPH自由基清除率高達(dá)65.06%±0.04%,最后三位排序?yàn)槟釥柹?精華<北青,尼爾森的DPPH自由基清除率僅為10.79%±0.02%。Scalzo等[15]研究表明水果的基因型不同可以導(dǎo)致水果的抗氧化能力不同,與本研究相符,主要是由于不同品種藍(lán)莓本身的遺傳信息不同導(dǎo)致它們的DPPH自由基清除能力存在差異。對(duì)于3個(gè)產(chǎn)區(qū)的藍(lán)莓,產(chǎn)于杭州種植基地的藍(lán)莓DPPH自由基清除能力比產(chǎn)于上海的藍(lán)莓DPPH自由基清除能力強(qiáng),而青島的四個(gè)藍(lán)莓品種的DPPH自由基清除能力相對(duì)較弱。Sun等[16]對(duì)我國(guó)9種兔眼藍(lán)莓的抗氧化能力進(jìn)行了研究,結(jié)果表明9種兔眼藍(lán)莓對(duì)DPPH自由基均具有清除作用,主要是由于藍(lán)莓中所含的花青素所引起的。胡可等[17]研究表明光是影響花青素苷合成最重要的環(huán)境因子之一。由于杭州藍(lán)莓種植基地是露天種植,地理位置是在山坡上,藍(lán)莓果實(shí)能夠接受充足的陽(yáng)光。由此推斷,充足的陽(yáng)光促進(jìn)了藍(lán)莓中花青素苷的合成,因此杭州藍(lán)莓品種表現(xiàn)出比其它兩個(gè)地區(qū)更強(qiáng)的DPPH自由基清除能力。

圖1 18種藍(lán)莓粗提液對(duì)DPPH·的清除作用Fig.1 The DPPH(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl)radical scavenging activity of eighteen cultivars of blueberry extracts

圖2 18種藍(lán)莓粗提液對(duì)羥基自由基的清除作用Fig.2 The hydroxyl radical scavenging activity of eighteen cultivars of blueberry extracts

2.2 不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓粗提液對(duì)羥基自由基的清除作用

羥基自由基是目前所知活性氧自由基中對(duì)生物體毒性最強(qiáng)、危害最大的一種自由基,對(duì)細(xì)胞內(nèi)DNA的破壞作用最大[18]。由圖2可以看出,不同產(chǎn)區(qū)不同品種藍(lán)莓清除羥基自由基的能力存在差異,抗壞血酸的羥基自由基清除率高于其他18個(gè)品種的藍(lán)莓。18個(gè)品種中,青島的愛(ài)國(guó)者清除羥基自由基的能力最強(qiáng),其自由基清除率達(dá)到64.4%±0.02%,清除羥基自由的能力最差的為杭州的頂峰,清除率僅為20.2%±0.02%。對(duì)于3個(gè)產(chǎn)區(qū)的藍(lán)莓,青島產(chǎn)區(qū)的藍(lán)莓清除羥基自由基能力相對(duì)較強(qiáng)。

2.3 不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓粗提液還原力實(shí)驗(yàn)

由圖3可以得出,18種栽培藍(lán)莓的還原能力存在差異,抗壞血酸的還原能力比其他18個(gè)品種藍(lán)莓的還原能力強(qiáng),大約是還原能力最強(qiáng)的森吐里昂品種還原能力的1.16倍。18個(gè)品種中,還原能力較強(qiáng)的品種有森吐里昂(杭州),愛(ài)國(guó)者(青島),巨豐(杭州),粉藍(lán)(上海),園藍(lán)(杭州);還原能力較差的品種有藍(lán)豐(青島),尼爾森(青島),奧尼爾(上海)。來(lái)自三個(gè)區(qū)域的藍(lán)莓品種,杭州藍(lán)莓品種的還原能力強(qiáng)于上海藍(lán)莓品種,強(qiáng)于青島藍(lán)莓品種。

圖3 18種藍(lán)莓粗提液還原能力的測(cè)定Fig.3 The reducing power of eighteen cultivars of blueberry extracts

2.4 不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓總酚、黃酮及花青素含量

多酚、黃酮及花青素等生物活性物質(zhì)具有抗氧化、抗炎癥以及抗癌等功能,對(duì)維持和促進(jìn)人體健康有積極作用。有研究[19]表明藍(lán)莓總抗氧化能力與總酚含量具有良好的線性關(guān)系。由表2中可以看出,不同產(chǎn)區(qū)不同品種藍(lán)莓中的總酚、黃酮及花青素含量存在差異。總酚含量的范圍為0.63～2.81mg/g,含量最高的為杭州的森吐里昂,含量最低的為青島的尼爾森,含量較高的還有杭州的杰兔、園藍(lán)、巨豐等。黃酮含量在0.05～0.20mg/g之間,含量最高的為杭州的園藍(lán)及青島的尼爾森,含量最低的為杭州的梯芙藍(lán)和杰兔?；ㄇ嗨睾吭?.06～0.68mg/g之間,杭州的森吐里昂花青素含量最高,為0.68mg/g,含量最低的為上海的燦爛。

2.5 藍(lán)莓粗提液對(duì)副溶血性弧菌的抑制作用

由表3可以看出,不同產(chǎn)區(qū)不同品種藍(lán)莓提取物對(duì)副溶血性弧菌均有一定的抑制作用,但抑制程度存在差異。其中抑菌效果表現(xiàn)突出的有杭州的粉藍(lán)、頂峰以及上海的粉藍(lán)、H31,它們對(duì)副溶血性弧菌的MIC值僅為15.625mg/mL。Vivian C.H.Wu等[20]通過(guò)研究表明美國(guó)越橘中酚醛、花青素和有機(jī)酸等成分對(duì)大腸桿菌O157∶H7均有抑制作用,且酚類物質(zhì)的抑菌效果最好。Saftner等[21]的研究表明藍(lán)莓所表現(xiàn)出的良好品質(zhì)與藍(lán)莓生長(zhǎng)的地理位置、氣候條件以及藍(lán)莓本身的基因型有關(guān)。本文中的藍(lán)莓產(chǎn)于我國(guó)三個(gè)不同的地區(qū),由于其地理位置及氣候的不同很可能導(dǎo)致藍(lán)莓中所含活性成分不同,例如對(duì)抑菌作用貢獻(xiàn)較大的酚類物質(zhì)含量的不同,這就導(dǎo)致了18種不同藍(lán)莓粗提取液對(duì)副溶血性弧菌的抑制作用產(chǎn)生差異。

表2 18種藍(lán)莓總酚、黃酮及花青素的含量Table 2 The total phenolics content,total flavonoids and total anthocyanins contents of 18 blueberry cultivars

表3 18種藍(lán)莓粗提液對(duì)副溶血性弧菌的MIC值和MBC值Table 3 The MIC and MBC of 18 blueberry extracts against Vibrio parahaemolyticus

3 結(jié)論

不同產(chǎn)區(qū)不同品種的藍(lán)莓有不同的抗氧化活性,對(duì)DPPH自由基、羥基自由基表現(xiàn)出不同的清除能力,其中DPPH自由基清除率在11%～65%之間,羥基自由基清除率在20%～64%之間。DPPH自由基清除能力最強(qiáng)的為杭州的森吐里昂,清除率為65.06%±0.04%,清除OH自由基能力最強(qiáng)的為青島的愛(ài)國(guó)者,清除率為64.4%±0.02%。它們的還原能力也存在一定的差異,吸光度值在0.3～1.4之間,吸光度值越大,還原能力越強(qiáng),還原能力最強(qiáng)的為杭州的森吐里昂。

不同產(chǎn)區(qū)18種藍(lán)莓中總酚含量、黃酮含量及花青素含量存在差異,酚類物質(zhì)含量較高的品種對(duì)應(yīng)較強(qiáng)的抗氧化能力。

18種藍(lán)莓粗提液對(duì)副溶血性弧菌的均有一定抑制作用,不同品種不同產(chǎn)區(qū)藍(lán)莓對(duì)副溶血性弧菌均表現(xiàn)出了抑制作用,且它們的MIC和MBC值不相同,即抑制效果不同。對(duì)副溶血性弧菌抑制作用較強(qiáng)的有杭州的頂峰、粉藍(lán),MIC值僅為15.625mg/mL。

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Study on antioxidant capacities and antibacterial effects of eighteen blueberry cultivars from different areas

JIANG Wen-jie1,SUN Xiao-hong1，*,ZHU Ying1,YANG Han1,LIU Xiao-yu1,Vivian Chi-hua Wu2,PAN Ying-jie1

(1.College of Food Science & Technology,Shanghai Ocean University,Shanghai Engineering Research Center of Aquatic-Product Processing & Preservation,Laboratory of Quality & Safety Risk Assessment for Aquatic Products on Storage and Preservation(Shanghai),Ministry of Agriculture,Shanghai 201306,China;2.School of Food and Agriculture,the University of Maine,Orono,ME04469,USA)

The antioxidant capacities and antibacterial effects of 18 different blueberry cultivars from Hangzhou,Shanghai and Qingdao were investigated in this study. The antioxidant capacities of blueberry extracts were measured through free radical scavenging abilities including DPPH· and OH· free radicals and reducing power. The contents of total phenolics,flavonoids and anthocyanins were determined using Folin-Ciocalteu method,Sodium nitrite method and pH differential method respectively. The antibacterial effects of blueberry extracts against Vibrio parahaemolyticus were determined by the test tube two-fold dilution method. The results showed that 18 blueberry cultivars from three different areas showed good DPPH· and OH· free radical scavenging abilities with the range from 11%～65% and 20%～64%,respectively. The blueberry cultivars of Hangzhou showed stronger reducing power than those of the other two areas. 18 blueberry cultivars showed different antibacterial effects against Vibrio parahaemolyticus with the Minimal inhibitory concentration(MIC)and the Maximum inhibitory concentration(MBC)being of 15.625mg/mL and 250mg/mL,respectively. It can be concluded that there were differences in their function and components among different blueberry cultivars of different areas.

different areas;blueberry extracts;antioxidant capacities;antibacterial effects

2014-03-10

姜文潔(1989-)，女，碩士研究生，研究方向：食品科學(xué)與工程。

*通訊作者:孫曉紅(1978-),女，博士，副教授，研究方向：食品安全與食品微生物。

上海市科委部分地方院校能力建設(shè)項(xiàng)目(11310501100)；上海市教育委員會(huì)科研創(chuàng)新項(xiàng)目(11YZ159)。

TS201.3

A

1002-0306(2015)01-0119-05

10.13386/j.issn1002-0306.2015.01.017