易勝杰,謝靖,邱少富,宋宏彬
1.軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 疾病預(yù)防控制所,北京 100071;2.中南大學(xué) 湘雅醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410013
使用抗生素對(duì)抗感染性疾病是醫(yī)學(xué)和人類(lèi)健康歷史上巨大的進(jìn)步。自從青霉素被發(fā)現(xiàn)以來(lái),研究人員基于對(duì)細(xì)菌關(guān)鍵蛋白的化學(xué)抑制研發(fā)了多種抗生素,目前已經(jīng)在抗菌史上取得了十分偉大的成就。然而,這些年多重耐藥菌的發(fā)生率不斷提高,世界衛(wèi)生組織更是發(fā)表聲明稱(chēng),細(xì)菌廣泛的耐藥已經(jīng)明顯成為威脅人類(lèi)生命與健康的全球性問(wèn)題[1]。人類(lèi)的抗菌過(guò)程就是細(xì)菌與抗生素相互抵抗的過(guò)程,由于抗生素濫用等原因?qū)е录?xì)菌的耐藥性不斷提高,但是近幾十年來(lái)卻只有2種新的抗生素被成功運(yùn)用于臨床治療,這種不平衡將帶來(lái)嚴(yán)重的安全隱患[2]。新型抗生素的匱乏很大程度上是因?yàn)槲覀冴P(guān)注的藥物靶標(biāo)比較單一,以及對(duì)細(xì)菌耐藥機(jī)制的理解還不夠深入[3]。
目前被廣泛研究的細(xì)菌耐藥機(jī)制主要包括:抗生素滅活酶、改變抗生素靶位結(jié)構(gòu)、降低外膜通透性、加強(qiáng)主動(dòng)外排系統(tǒng)、形成生物膜等[4-8]。但是最近幾年,一種有別于傳統(tǒng)理念的耐藥機(jī)制被發(fā)現(xiàn),并被證明廣泛存在于細(xì)菌中,涌現(xiàn)了許多優(yōu)秀的相關(guān)研究和評(píng)論[9-14]。這些研究聚焦于一些細(xì)菌通過(guò)代謝產(chǎn)生的信號(hào)小分子,這些信號(hào)小分子能夠輕松地跨膜傳遞,它們通過(guò)誘導(dǎo)抗氧化酶表達(dá)等機(jī)制使細(xì)菌獲得廣譜的耐藥性,甚至極少部分的細(xì)菌產(chǎn)生的信號(hào)小分子就能夠?qū)е抡麄€(gè)菌群耐藥。這一理論的提出,不僅使得原有的細(xì)菌耐藥機(jī)制得到很好的補(bǔ)充和拓展,也為新型抗生素的研制提供了潛在性的靶標(biāo)和思路。為了更好地使研究者了解生物小分子導(dǎo)致細(xì)菌耐藥的機(jī)制,探索抗生素新的潛在靶標(biāo),我們通過(guò)細(xì)菌代謝產(chǎn)生的3種信號(hào)小分子——一氧化氮(NO)、硫化氫(H2S)和吲哚,探討信號(hào)分子使細(xì)菌獲得耐藥性的相關(guān)機(jī)制。
真核生物中的巨噬細(xì)胞或其他一些免疫細(xì)胞能通過(guò)誘導(dǎo)性一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthases,iNOS)催化產(chǎn)生NO,這些NO能夠通過(guò)硝化應(yīng)激和氧化應(yīng)激作用控制胞內(nèi)細(xì)菌的感染[15]。但是,“聰明”的細(xì)菌通過(guò)進(jìn)化也能產(chǎn)生一種細(xì)菌一氧化氮合酶(bacterial nitric oxide synthases,bNOS)。bNOS沒(méi)有還原酶區(qū)域,生物信息學(xué)分析顯示許多細(xì)菌中都能找到和bNOS同源的蛋白,它們?cè)谶M(jìn)化上有密切聯(lián)系,并且對(duì)細(xì)菌有著重要的生命學(xué)意義[16]。Gusarov等研究發(fā)現(xiàn),細(xì)菌內(nèi)源性的NO能夠讓細(xì)菌獲得廣譜的耐藥性。研究發(fā)現(xiàn),吖啶黃和NO混合處理過(guò)后對(duì)枯草芽孢桿菌和金黃色葡萄球菌的殺傷能力顯著降低,構(gòu)建的bNOS大腸桿菌表達(dá)體系也能顯著降低吖啶黃的濃度,其主要原因是NO能直接與吖啶黃反應(yīng),使吖啶黃亞硝基化失活。不僅如此,NO還能保護(hù)細(xì)菌抵御吖啶黃引發(fā)的氧化應(yīng)激損傷。這表明NO能夠直接改造某些抗生素,并且抵御抗生素引發(fā)的氧化應(yīng)激損傷,從而幫助細(xì)菌獲得耐藥性。那么,NO如何抵御抗生素引發(fā)的氧化應(yīng)激損傷?研究人員發(fā)現(xiàn),在綠膿菌素的壓力下(NO不能直接與其發(fā)生反應(yīng)),bNOS能夠誘導(dǎo)過(guò)氧化物歧化酶(cata?lase and superoxide dismutase,SOD)的表達(dá),從而抑制胞內(nèi)氧化應(yīng)激,并表現(xiàn)出對(duì)綠膿菌素的耐藥性,但是bNOS缺失株卻不能誘導(dǎo)SOD表達(dá),也沒(méi)有表現(xiàn)出耐藥性。不僅如此,加入一定濃度的頭孢呋辛后,野生株與bNOS缺失株在生長(zhǎng)曲線和生存曲線上都表現(xiàn)出明顯差異,而加入活性氧分子(reactive oxy?gen species,ROS)抑制劑或外源的NO都能顯著提高缺失株的存活率。重復(fù)驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)顯示,NO可使細(xì)菌對(duì)我們常用的許多抗生素耐受[12]。而另一個(gè)重要機(jī)制在Shatalin等的研究中闡明,炭疽桿菌能通過(guò)bNOS產(chǎn)生的NO激活細(xì)菌的過(guò)氧化氫酶,并抑制對(duì)自身有損傷性的芬頓反應(yīng),最終達(dá)到抵御胞內(nèi)氧化應(yīng)激[17]。Gusarov等在枯草芽孢桿菌中也發(fā)現(xiàn)了類(lèi)似機(jī)制,細(xì)菌依靠bNOS產(chǎn)生的NO來(lái)抵御宿主免疫系統(tǒng)帶來(lái)的氧化應(yīng)激損傷[18]。bNOS能夠抵御來(lái)自宿主的氧化應(yīng)激損傷,這在很大程度上也和抵抗抗生素相似,因?yàn)檠趸瘧?yīng)激很可能是許多抗生素殺菌過(guò)程中的關(guān)鍵因素[19]。耐甲氧西林金黃色葡萄球菌去除內(nèi)源性NO后,就馬上變得對(duì)氧化應(yīng)激和萬(wàn)古霉素等抗生素敏感[20]。這些研究都表明,NO能通過(guò)多種機(jī)制幫助細(xì)菌獲得廣譜的耐藥性。
產(chǎn)H2S的機(jī)制普遍存在于真核和原核生物中。盡管研究結(jié)果有一些差異,但毋庸置疑的是H2S調(diào)節(jié)多種細(xì)胞功能,包括炎癥、上皮細(xì)胞分泌、傷害感受等[21-23]。在哺乳動(dòng)物中已發(fā)現(xiàn)3種可催化產(chǎn)生H2S的酶,即胱硫醚β-合成酶(cystathionine β-synthase,CBS)、胱硫醚γ-裂解酶(cystathionine γ-lyase,CSE)和3-巰基丙酮酸硫基轉(zhuǎn)移酶(3-mercaptopyruvate sulfurtransferase,3MST)。對(duì)細(xì)菌的基因組分析發(fā)現(xiàn),絕大部分細(xì)菌都至少能表達(dá)3種酶中的一種[13]。除此之外,一些特殊的細(xì)菌能基于不同的底物和途徑產(chǎn)生H2S。如沙門(mén)菌就能通過(guò)phs和asr操縱子分別以硫代硫酸鹽和亞硫酸鹽為底物產(chǎn)生H2S[24-25]。在人體內(nèi),尤其是腸道環(huán)境中,宿主和細(xì)菌都能產(chǎn)生大量H2S,并且相互影響、相互作用[26-27]。對(duì)于細(xì)菌本身,H2S也有著重要的生物學(xué)意義。Shatalin等通過(guò)對(duì)4種不同細(xì)菌的研究發(fā)現(xiàn),產(chǎn)H2S基因的缺失株與野生株相比對(duì)慶大霉素、卡那霉素、氯霉素更加敏感,在高濃度抗生素壓力下缺失株存活率顯著降低,但加入外源H2S后,存活率與野生株沒(méi)有顯著差異,這與bNOS對(duì)細(xì)菌的影響十分相似。對(duì)大腸桿菌的進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),慶大霉素能夠顯著抑制3MST缺失株的生長(zhǎng),但是加入ROS抑制劑后生長(zhǎng)曲線與野生株沒(méi)有差異。另外,3MST缺失、過(guò)表達(dá)和野生株能不同程度地誘導(dǎo)過(guò)氧化氫酶和SOD的表達(dá),3MST的活性與過(guò)氧化氫酶和SOD表達(dá)量是正相關(guān)的。這表明H2S能通過(guò)激活過(guò)氧化氫酶和SOD抵御抗生素引起的氧化應(yīng)激損傷,從而使細(xì)菌獲得耐藥性。這一機(jī)制能使細(xì)菌獲得長(zhǎng)久的耐藥性,但是在抗生素發(fā)揮作用的初期,H2S主要是通過(guò)與游離的Fe2+直接發(fā)生反應(yīng),從而抑制DNA損傷性的芬頓反應(yīng)。多次驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果還顯示,H2S同樣能使細(xì)菌對(duì)頭孢類(lèi)、喹諾酮類(lèi)等常見(jiàn)抗生素的耐藥性增加[13]。
吲哚是一種細(xì)胞間的信號(hào)分子,多種革蘭陰性和陽(yáng)性細(xì)菌都能產(chǎn)生[28]。產(chǎn)生吲哚最重要的一種酶是色氨酸酶(tryptophanase,TnaA),它能可逆地將色氨酸轉(zhuǎn)化為吲哚、丙酮酸和氨[29-30]。許多研究認(rèn)為吲哚在大腸桿菌中是一種壓力信號(hào)分子,在抗生素等壓力狀態(tài)下,吲哚能通過(guò)激活藥物外排泵相關(guān)基因從而對(duì)抗生素耐受[28,31-32]。Lee等基于此進(jìn)行了進(jìn)一步的研究,他們不斷提高大腸桿菌培養(yǎng)基中諾氟沙星的濃度,發(fā)現(xiàn)整個(gè)菌群都能耐藥,但絕大多數(shù)大腸桿菌個(gè)體的耐藥性都沒(méi)有整體的耐藥性高。通過(guò)全基因組測(cè)序分析,他們發(fā)現(xiàn)某些大腸桿菌在關(guān)鍵耐藥基因上發(fā)生了突變,如gyrB22,而這些突變讓這些大腸桿菌獲得對(duì)諾氟沙星的耐藥性。這些耐藥菌通過(guò)產(chǎn)生吲哚可以保護(hù)其他對(duì)諾氟沙星敏感的菌株,但那些處于抗生素壓力下的非耐藥菌卻不能產(chǎn)生吲哚。為了進(jìn)一步探究吲哚導(dǎo)致大腸桿菌耐藥的機(jī)制,研究者通過(guò)對(duì)野生株和TnaA缺失株在抗生素壓力下的轉(zhuǎn)錄組對(duì)比分析,發(fā)現(xiàn)吲哚能夠上調(diào)一些藥物外排泵相關(guān)基因,如mdtE。更有意思的是,分析結(jié)果顯示一個(gè)小RNA oxyS的表達(dá)量被下調(diào)了,這個(gè)小RNA是細(xì)菌內(nèi)氧化應(yīng)激的感受器。這些結(jié)果表明,吲哚至少可能通過(guò)激活藥物外排基因以及降低氧化應(yīng)激損傷使大腸桿菌對(duì)抗生素耐受[14]。吲哚誘導(dǎo)持留菌的形成或許也是導(dǎo)致細(xì)菌耐藥的一種機(jī)制。持留菌的顯著特點(diǎn)是,在抗生素等逆境條件下處于非分裂增長(zhǎng)的休眠狀態(tài),降低代謝活動(dòng)以維持自身的生存;而當(dāng)抗生素或逆境條件消失時(shí),持留菌又可重新恢復(fù)生長(zhǎng),并進(jìn)行增殖再生。Vega等發(fā)現(xiàn),在氧氟沙星的壓力下,大腸桿菌野生株的存活率明顯高于TnaA缺失株,但在無(wú)色氨酸的培養(yǎng)基中,兩者之間沒(méi)有差異。同時(shí)研究人員還用微流控技術(shù)監(jiān)測(cè)到在卡那霉素處理后,吲哚能明顯促進(jìn)持留菌形成,這表明吲哚信號(hào)在誘導(dǎo)大腸桿菌形成持留菌對(duì)抗生素耐受的過(guò)程中發(fā)揮著關(guān)鍵性作用。吲哚信號(hào)能通過(guò)激活大腸桿菌的氧化應(yīng)激和噬菌體侵襲壓力反應(yīng)從而對(duì)抗生素產(chǎn)生耐受,最終導(dǎo)致了持留菌的形成[33]。吲哚的產(chǎn)生受多種因素如碳源、氮源、pH值、環(huán)境壓力等影響[34],可能是多種因素使細(xì)菌“感受到危機(jī)”從而產(chǎn)生吲哚,產(chǎn)生的吲哚再逐步引導(dǎo)細(xì)菌轉(zhuǎn)變成持留菌。
3種信號(hào)分子有一個(gè)共同點(diǎn),就是它們能使細(xì)菌對(duì)抗多種抗生素和氧化應(yīng)激損傷。胞內(nèi)氧化應(yīng)激的特征是代謝或呼吸過(guò)程中產(chǎn)生的ROS與抗氧化系統(tǒng)的平衡被打破。抗生素發(fā)揮抗菌作用時(shí),氧化應(yīng)激一直被認(rèn)為是一個(gè)重要的因素[19]。盡管最近一些研究對(duì)這一理論提出了質(zhì)疑[35-36],但本文所涉及的3種信號(hào)分子在抵抗氧化應(yīng)激和抗生素這一點(diǎn)上表現(xiàn)出很強(qiáng)的一致性[12-13,33]。這也暗示著它們?cè)诖x通路和作用機(jī)制上一定有著密切的聯(lián)系。NO、H2S和吲哚產(chǎn)生的底物是3種不同的氨基酸,分別為精氨酸、半胱氨酸和色氨酸。胞內(nèi)高濃度的半胱氨酸會(huì)促進(jìn)有DNA損傷性的芬頓反應(yīng)[37],而NO能通過(guò)影響半胱氨酸來(lái)抑制芬頓反應(yīng)[18]。產(chǎn)生吲哚的色氨酸酶TnaA與半胱氨酸在調(diào)控和代謝上也有密切聯(lián)系。這表明3種信號(hào)分子在代謝的上游就表現(xiàn)出了密切的聯(lián)系。Shatalin等還探究了NO和H2S對(duì)抗氧化應(yīng)激和抗生素過(guò)程中的協(xié)同作用,他們發(fā)現(xiàn)無(wú)論是NO還是H2S缺失后,另一種信號(hào)分子的表達(dá)量在抗生素的壓力下會(huì)比野生株更高。這表明,NO和H2S對(duì)抗氧化應(yīng)激和抗生素時(shí)具有協(xié)同作用,并在一定程度上能夠相互補(bǔ)償[13]。而在吲哚的作用下,大腸桿菌的NO反應(yīng)系統(tǒng)也同樣被激活,從而協(xié)同抵抗氧化應(yīng)激和抗生素[14]。盡管有些細(xì)菌并不能產(chǎn)生3種信號(hào)分子,但它們有可能進(jìn)化出類(lèi)似的補(bǔ)償機(jī)制。如沙門(mén)菌不能產(chǎn)生NO,但它能利用宿主產(chǎn)生的NO降低自身呼吸強(qiáng)度,從而減少氨基糖苷類(lèi)抗生素的攝入量[38]。更有意思的是,沙門(mén)菌甚至能夠攔截大腸桿菌的吲哚信號(hào),通過(guò)誘發(fā)氧化應(yīng)激反應(yīng)或激活藥物外排基因從而達(dá)到對(duì)抗生素耐受[39-40]。以上研究表明,3種信號(hào)分子很可能在對(duì)抗氧化應(yīng)激和抗生素時(shí)具有某種共同的作用機(jī)制,在不同的情況下發(fā)揮作用,卻又能相互協(xié)作相互影響(圖1)。
一般研究耐藥菌都會(huì)集中在許多與某種特定抗生素相關(guān)的耐藥基因,這種通過(guò)基因突變或基因水平轉(zhuǎn)移對(duì)某種藥物產(chǎn)生耐藥性的情況會(huì)造成整個(gè)群體都變成耐藥株。因?yàn)榭股氐暮Y選會(huì)淘汰不耐藥的菌株,含有耐藥基因的菌株就被選擇出來(lái)。但是信號(hào)分子導(dǎo)致的群體耐藥則是完全不同的情況,極少量菌株會(huì)產(chǎn)生一些信號(hào)分子并且分泌到胞外,它們將通過(guò)激活藥物外排泵或抗氧化酶等多種機(jī)制使得整個(gè)菌群產(chǎn)生耐藥。因此,菌群的多樣性被保存下來(lái),并且絕大多數(shù)菌株并不具有太強(qiáng)的耐藥性。這種情況已在上述研究中被證實(shí),耐藥菌株產(chǎn)生的吲哚能夠保護(hù)菌群中不耐藥的菌株[14],而大腸桿菌野生株產(chǎn)生的H2S也能保護(hù)3MST缺失的突變株[13]。NO、H2S和吲哚這些信號(hào)小分子能夠很方便地跨膜運(yùn)輸,在菌群中發(fā)揮功能。少量個(gè)體的利他行為就能以最小的代價(jià)使群體對(duì)外界抗生素產(chǎn)生耐受。如果外界抗生素壓力只是暫時(shí)的,那么這樣的策略就能最大限度地保留種群的多樣性。這種利他行為是一種類(lèi)似親緣選擇的現(xiàn)象,既保證了菌群的生存,又保留了探索更有利突變的空間,符合微生物的社會(huì)進(jìn)化理論[41]。
圖1 3種信號(hào)分子的耐藥機(jī)制和協(xié)同作用
細(xì)菌信號(hào)小分子幫助細(xì)菌抵御抗生素,是對(duì)目前細(xì)菌耐藥理論和模型的一個(gè)非常重要的補(bǔ)充,有助于我們更全面地理解細(xì)菌耐藥的機(jī)制。更重要的是,這些新發(fā)現(xiàn)能幫助我們擴(kuò)大抗生素藥物篩選的范圍,通過(guò)抑制這些生物小分子發(fā)揮作用研制新型抗生素或抗生素的佐劑。目前已發(fā)現(xiàn)添加bNOS的抑制物能使細(xì)菌變得對(duì)抗生素更加敏感[42-43]。但是,目前對(duì)這些信號(hào)小分子產(chǎn)生耐藥的具體分子機(jī)制還不是非常清楚,尤其是多種小分子是否有非常明確的共同通路或耐藥機(jī)制。還有許多問(wèn)題亟待廣大學(xué)者去攻破,但這項(xiàng)研究對(duì)抗生素的研發(fā)、對(duì)人類(lèi)的生命健康安全具有重大意義。
[1] The dangers of hubris on human health[R].World Economic Forum:Global Risks 2013.
[2] Hamad B.The antibiotics market[J].Nat Rev Drug Discovery,2010,9(9):675-676.
[3] Clatworthy A E,Pierson E,Hung D T.Targeting virulence:a new paradigm forantimicrobialtherapy[J].NatChem Biol,2007,3(9):541-548.
[4] Jacoby G A.β-lactamase nomenclature[J].Antimicrob Agents Chemother,2006,50(4):1123-1129.
[5] Jones L A,McIver C J,Kim M J,et al.The aadB gene cas?sette is associated with blaSHV genes in Klebsiella species producing extended-spectrum beta-lactamases[J].Antimicrob Agents Chemother,2005,49(2):794-797.
[6] Hernandez-Alles S,Benedi V J,Martinez-Martinez L,et al.Development of resistance during antimicrobial therapy caused by insertion sequence interruption of porin genes[J].Antimi?crob Agents Chemother,1999,43(4):937-939.
[7] Anderl J N,Zahller J,Roe F,et al.Role of nutrient limita?tion and stationary-phase existence in Klebsiella pneumoniae biofilm resistance to ampicillin and ciprofloxacin[J].Antimi?crob Agents Chemother,2003,47(4):1251-1256.
[8] Piddock L J.Multidrug-resistance efflux pumps-not just for resistance[J].Nat Rev Microbiol,2006,4(8):629-636.
[9] Luhachack L,Nudler E.Bacterial gasotransmitters:an innate defense against antibiotics[J].Curr Opin Microbiol,2014,21C:13-17.
[10]Lee H H,Collins J J.Microbial environments confound antibi?otic efficacy[J].Nat Chem Biol,2012,8(1):6-9.
[11]Bernier S P,Letoffe S,Delepierre M,et al.Biogenic ammo?nia modifies antibiotic resistance at a distance in physically separated bacteria[J].Mol Microbiol,2011,81(3):705-716.
[12]Gusarov I,Shatalin K,Starodubtseva M,et al.Endogenous ni?tric oxide protects bacteria against a wide spectrum of antibi?otics[J].Science,2009,325(5946):1380-1384.
[13]Shatalin K,Shatalina E,Mironov A,et al.H2S:a universal defense againstantibioticsin bacteria[J].Science,2011,334(6058):986-990.
[14]Lee H H,Molla M N,Cantor C R,et al.Bacterial charity work leads to population-wide resistance[J].Nature,2010,467(7311):82-85.
[15]Schairer D O,Chouake J S,Nosanchuk J D,et al.The poten?tial of nitric oxide releasing therapies as antimicrobial agents[J].Virulence,2012,3(3):271-279.
[16]Filippovich S Y.Bacterial NO synthases[J].Biochemistry(Mos?cow),2010,75(10):1217-1224.
[17]Shatalin K,Gusarov I,Avetissova E,et al.Bacillus anthracisderived nitric oxide is essential for pathogen virulence and survival in macrophages[J].Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(3):1009-1013.
[18]Gusarov I,Nudler E.NO-mediated cytoprotection:instant ad?aptation to oxidative stress in bacteria[J].Proc Natl Acad Sci USA,2005,102(39):13855-13860.
[19]Kohanski M A,Dwyer D J,Hayete B,et al.A common mech?anism of cellular death induced by bactericidal antibiotics[J].Cell,2007,130(5):797-810.
[20]van Sorge N M,Beasley F C,Gusarov I,et al.Methicillin-re?sistant Staphylococcus aureus bacterial nitric-oxide synthase affects antibiotic sensitivity and skin abscess development[J].J Biol Chem,2013,288(9):6417-6426.
[21]Medani M,Collins D,Docherty N G,et al.Emerging role of hydrogen sulfide in colonic physiology and pathophysiology[J].Inflammatory Bowel Dis,2011,17(7):1620-1625.
[22]Wang R. Physiological implications of hydrogen sulfide: a whiff exploration that blossomed[J].Physiol Rev,2012,92(2):791-896.
[23]Schemann M,Grundy D.Role of hydrogen sulfide in visceral nociception[J].Gut,2009,58(6):744-747.
[24]Heinzinger N K,Fujimoto S Y,Clark M A,et al.Sequence analysis of the phs operon in Salmonella typhimurium and the contribution of thiosulfate reduction to anaerobic energy metabolism[J].J Bacteriol,1995,177(10):2813-2820.
[25]Huang C J,Barrett E L.Sequence analysis and expression of the Salmonella typhimurium asr operon encoding production of hydrogen sulfide from sulfite[J].J Bacteriol,1991,173(4):1544-1553.
[26]Flannigan K L,McCoy K D,Wallace J L.Eukaryotic and prokaryotic contributions to colonic hydrogen sulfide synthesis[J].Am J PhysiolGastrointestLiverPhysiol,2011,301(1):G188-193.
[27]Linden D R.Hydrogen sulfide signaling in the gastrointestinal tract[J].Antioxidants Redox Signaling,2014,20(5):818-830.
[28]Lee J H,Lee J.Indole as an intercellular signal in microbial communities[J].FEMS Microbiol Rev,2010,34(4):426-444.
[29]Lee J,Jayaraman A,Wood T K.Indole is an inter-species biofilm signal mediated by SdiA[J].BMC Microbiol,2007,7:42.
[30]Newton W A,Snell E E.Formation and interrelationships of tryptophanase and tryptophan synthetases in Escherichia coli[J].J Bacteriol,1965,89:355-364.
[31]Hirakawa H,Inazumi Y,Masaki T,et al.Indole induces the expression of multidrug exporter genes in Escherichia coli[J].Mol Microbiol,2005,55(4):1113-1126.
[32]Kobayashi A,Hirakawa H,Hirata T,et al.Growth phase-de?pendent expression of drug exporters in Escherichia coli and its contribution to drug tolerance[J].J Bacteriol,2006,188(16):5693-5703.
[33]Vega N M,Allison K R,Khalil A S,et al.Signaling-mediat?ed bacterial persister formation[J].Nat Chem Biol,2012,8(5):431-433.
[34]Han T H,Lee J H,Cho M H,et al.Environmental factors af?fecting indole production in Escherichia coli[J].Res Microbi?ol,2011,162(2):108-116.
[35]Keren I,Wu Y,Inocencio J,et al.Killing by bactericidal an?tibiotics does not depend on reactive oxygen species[J].Sci?ence,2013,339(6124):1213-1216.
[36]Liu Y,Imlay J A.Cell death from antibiotics without the in?volvementofreactive oxygen species[J].Science,2013,339(6124):1210-1213.
[37]Park S,Imlay J A.High levels of intracellular cysteine pro?mote oxidative DNA damage by driving the fenton reaction[J].J Bacteriol,2003,185(6):1942-1950.
[38]McCollister B D,Hoffman M,Husain M,et al.Nitric oxide protects bacteria from aminoglycosides by blocking the energydependent phases of drug uptake[J].Antimicrob Agents Che?mother,2011,55(5):2189-2196.
[39]Vega N M,Allison K R,Samuels A N,et al.Salmonella ty?phimurium intercepts Escherichia coli signaling to enhance an?tibiotic tolerance[J].Proc Natl Acad Sci USA,2013,110(35):14420-14425.
[40]Blair J M,Cloeckaert A,Nishino K,et al.Alternative explana?tion for indole-induced antibiotic tolerance in Salmonella[J].Proc Natl Acad Sci USA,2013,110(48):E4569.
[41]West S A,Griffin A S,Gardner A,et al.Social evolution the?ory for microorganisms[J].Nat Rev Microbiol,2006,4(8):597-607.
[42]Holden J K,Li H,Jing Q,et al.Structural and biological studies on bacterial nitric oxide synthase inhibitors[J].Proc Natl Acad Sci USA,2013,110(45):18127-18131.
[43]Holden J K,Kang S,Hollingsworth S A,et al.Structurebased design of bacterial nitric oxide synthase inhibitors[J].J Med Chem,2015,58(2):994-1004.