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    鹽漬青菜真菌菌群結(jié)構(gòu)DGGE分析及酵母菌分離鑒定*

    2015-04-06 19:03:58尹禮國馬偉玲李文芳楊婧梁會朋張其圣陳功吳正云張文學
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2015年1期
    關(guān)鍵詞:鹽漬泡菜青菜

    尹禮國,馬偉玲,李文芳,楊婧,梁會朋,張其圣,,陳功,吳正云,張文學

    1(宜賓學院 生命科學與食品工程學院,四川 宜賓,644007)

    2(四川大學 輕紡與食品學院,四川成都,610065)

    3(宜賓學院固態(tài)發(fā)酵資源利用四川省重點實驗室,四川宜賓,644007)

    4(四川省食品發(fā)酵工業(yè)研究設(shè)計院,四川成都,611130)

    國內(nèi)外學者對發(fā)酵蔬菜的微生物生態(tài)研究表明,乳酸菌、酵母菌是發(fā)酵蔬菜中的優(yōu)勢菌群,乳酸菌通過產(chǎn)酸降低pH值,抑制腐敗微生物的生長,酵母菌在發(fā)酵過程中會產(chǎn)生乙醇、酯類等物質(zhì),可賦予發(fā)酵蔬菜良好的風味。張鵬[1]、鄯晉曉[2]、曾駿[3]等開展了泡菜增香酵母菌的分離、鑒定及應(yīng)用。羅松明等[4]采用微生物培養(yǎng)技術(shù)對四川地區(qū)16份企業(yè)鹽漬水樣品微生態(tài)研究表明,大多數(shù)泡菜樣品的酵母菌含量為103~106CFU/mL。傳統(tǒng)分離培養(yǎng)技術(shù)能獲得的微生物僅占自然界微生物的1% ~10%,操作步驟繁瑣,無法反映樣品的真實菌群結(jié)構(gòu)[5-6]。變性梯度凝膠電泳技術(shù)(denatured gradient gel electrophoresis,DGGE)是一項研究微生物生態(tài)的現(xiàn)代分子生物學技術(shù),1993年由Muyzer等[7]首次應(yīng)用于微生物生態(tài)學研究,不需培養(yǎng)分離微生物,直接提取樣品DNA,對目的片段擴增后電泳分析獲得菌群結(jié)構(gòu)信息。目前,該技術(shù)已廣泛應(yīng)用于土壤、海洋、胃腸道、菌肥、廢水、污泥、發(fā)酵食品的菌群結(jié)構(gòu)研究。1999年,Ampe等[8]首次采用DGGE技術(shù)研究食品菌群結(jié)構(gòu),隨后許多科學家采用該技術(shù)對發(fā)酵面團、葡萄酒、香腸、韓國泡菜等發(fā)酵食品的菌群結(jié)構(gòu)進行了研究。

    四川地區(qū)的鹽漬青菜,俗稱酸菜,是泡菜加工企業(yè)的主要產(chǎn)品之一,是以當?shù)胤Q為青菜的葉用芥菜(Brassica juncea)鹽漬發(fā)酵而成的腌漬菜,是制作酸菜魚底料、老壇酸菜方便面調(diào)味料、下飯菜及其他調(diào)味料、菜品的重要原料。與家庭傳統(tǒng)泡菜不同的是,為了達到長期貯藏蔬菜的目的,腌漬過程中的食鹽添加量達10%左右。開展鹽漬青菜微生物菌群結(jié)構(gòu)研究,對生產(chǎn)管理、降低食鹽用量、降低生產(chǎn)成本等具有指導(dǎo)意義。本文采用DGGE技術(shù)對取自生產(chǎn)車間的鹽漬青菜的真菌菌群結(jié)構(gòu)進行了解析,對分離培養(yǎng)得到的酵母菌進行了分子生物學鑒定,并對2種方法的實驗結(jié)果進行了對比分析。

    1 材料與方法

    1.1 樣品采集與保存

    用無菌取樣瓶取鹽漬青菜(2013年3月19日取自四川省眉山市吉香居、李記食品廠),樣品取回后保存于-20℃冰箱中,及時提取總DNA。1、2號樣品為青菜的桿、葉,購自農(nóng)貿(mào)市場;3、4、5號樣品為鹽漬2個月、14個月、26個月的青菜桿部,6、7、8號樣品為鹽漬26個月、14個月、2個月的青菜的葉部。

    1.2 主要實驗藥品

    Ezup柱式細菌基因組DNA抽提試劑盒、UNIQ-10核酸純化套件、2×Taq PCR MasterMix、去離子甲酰胺、丙烯酰胺、甲叉雙丙烯酰胺、TEMED、過硫酸銨、十二烷基磺酸鈉、尿素、SYBEGREENⅠ(購自生工生物工程(上海)股份有限公司)。

    1.3 主要實驗儀器

    高速冷凍離心機、超凈工作臺、TECHNE TC-412 PCR儀(TECHNE公司);DYY-5電泳儀(北京六一);凝膠成像儀(Bio-Rad,USA);Bio-rad T1000梯度PCR儀、變性梯度凝膠電泳裝置(Bio-Rad,USA)。

    1.4 實驗方法

    1.4.1 鹽漬青菜總DNA的提取

    取鹽漬青菜樣品于冰袋表面解凍,用無菌研缽搗碎得鹽漬汁液。取汁液1mL于1.5 mL離心管,10 000 g離心5 min,去上清液,加入500μL裂解液(100 mmol/L Tris-Cl,5 mmol/L EDTA,500 mmol/L NaCl,1%SDS,pH 7.5)懸浮樣品,在 -20 ℃反復(fù)凍融3次,加入20μL蛋白酶溶液(20 mg/mL)于56℃水浴60 min。向離心管中加入200 μL無水乙醇,混勻,用UNIQ-10核酸純化柱套件純化得總DNA,置于-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.4.2 真菌26S rDNA D2區(qū)擴增

    PCR 擴增引物[9]:反向引物 NL3A(GAGACCGATAGCGAACAAG)、正向引物NL4A-GC(CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGGGTCCGTGTTTCAAGACGG)均由上海生工合成,擴增目的片斷大小為320bp。PCR擴增體系為50 μL,樣品總 DNA4 μL,上游引物 NL4A-GC(10 μmol/L)和下游引物 NL3A(10 μmol/L)各 2 μL,2 × Taq PCR MasterMix 25 μL,無菌超純水 17 μL。PCR 擴增程序,94℃預(yù)變性5 min,94℃變性30 s,60℃退火40 s,72℃延伸1 min,30個循環(huán);最后72℃延伸7 min。所得產(chǎn)物在2%的瓊脂糖凝膠上電泳。

    1.4.3 擴增產(chǎn)物的DGGE分析與測序

    制備變性劑(尿素與甲酰胺)線性梯度30% ~60%的8%(W/V)聚丙烯酰胺(37.5∶1,W/W)凝膠,安裝好儀器后,移取擴增產(chǎn)物40 μL于點樣孔中。在溫度為60℃條件下,200 V電泳4 h,取出凝膠,用SYBER GREEN I溶液染色20 min,置于凝膠成像系統(tǒng)中拍照。在紫外防護下,將優(yōu)勢條帶切割下來,送上海生工克隆測序,在NCBI網(wǎng)站利用BLAST比對鑒定。

    1.5 酵母菌分離與鑒定

    1.5.1 酵母菌分離與形態(tài)觀察

    在無菌條件下取鹽漬青菜研磨,取5 mL汁液于50 mL的MRS液體培養(yǎng)基中,置于轉(zhuǎn)速為120 r/min、28℃恒溫搖床中培養(yǎng)24 h。用無菌生理鹽水將富集培養(yǎng)后的培養(yǎng)液稀釋,得 10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7的不同梯度稀釋液。分別取 10-4、10-5、10-6、10-7梯度稀釋液各 0.2 mL 涂布于 YPD固體平板培養(yǎng)基中,放于30℃生化培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,每個梯度做2個平行。將其中具有典型酵母菌菌落特征的菌株挑出,在另一個YPD固體平板培養(yǎng)基上劃線培養(yǎng),鏡檢,反復(fù)2~3次,得到純化的單菌落。

    1.5.2 酵母菌的分子生物學鑒定

    1.5.2.1 總DNA的提取

    將酵母菌活化培養(yǎng)后,接種于液體培養(yǎng)基中,培養(yǎng)16~24 h,吸取1.5 mL菌液于1.5 mL離心管中,采用Ezup柱式酵母基因組DNA抽提試劑盒提取總DNA,置于-20℃保存。

    1.5.2.2 18S rDNA的擴增與測序

    酵母菌18S rDNA的擴增反應(yīng)體系為50 μL,模板 DNA 4 μL,引物 EF3(10 μmol/L)、EF4(10 μmol/L)各2 μL,2 × TaqPCRMasterMix 25 μL,無菌超純水 17 μL。PCR擴增程序為94℃預(yù)變性5 min,94℃變性1 min,48℃退火1 min,72 ℃延伸2 min,共35個循環(huán);最后72℃延伸10 min,4℃保存10 min。通過1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,將擴增成功的樣品送上海生工測序,測序結(jié)果在NCBI網(wǎng)站進行比對分析。

    1.6 系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建

    將所得的序列與數(shù)據(jù)庫中已知序列進行比較,用Clustal 1.83和MEGA5.0進行相似性分析及做系統(tǒng)發(fā)育樹,bootstrap為1 000,建樹類型為鄰接法(neighbor-joining)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 鹽漬青菜真菌菌群的DGGE分析

    依據(jù)實驗方法1.4.1提取各鹽漬青菜樣品總DNA,擴增真菌26S rDNA D2區(qū),采用DGGE分析,結(jié)果如圖1所示。

    由圖1可知,鹽漬青菜中真菌的基因多樣性豐富,各樣品之間呈現(xiàn)一定的規(guī)律變化,隨著鹽漬時間的延長,優(yōu)勢條帶數(shù)量增多。鹽漬2個月的青菜桿與葉的真菌生物量相對較少,b、c、d等條帶生物量低,而腌漬14個月與26個月的青菜的b、c、d等條帶優(yōu)勢明顯,依此推斷這3個條帶對應(yīng)的微生物在腌漬菜的成熟過程中可能發(fā)揮著十分重要的作用。采用QUANTITIY ONE軟件的complete linkage聚類方法作系統(tǒng)進化樹分析,結(jié)果如圖2所示,各列之間的相似性矩陣如表1所示。

    由圖2可知,青菜桿與青菜葉聚于1個小分支,與鹽漬2個月的青菜桿與青菜葉聚于一個大分支。鹽漬14個月的青菜桿和葉、鹽漬26個月的青菜和桿分別聚于一個小分支,4個樣品的真菌群落結(jié)構(gòu)聚于一個大分支。由圖2與表1可知,各鹽漬青菜樣品的真菌群落結(jié)構(gòu)的相似度與系統(tǒng)進化樹分析結(jié)果一致。

    由于青菜鹽漬過程中添加的食鹽比例高達10%左右,乳酸發(fā)酵產(chǎn)酸,抑制了真菌的生長,因此,鹽漬2個月的青菜桿、葉與原料的相似度較鹽漬14個月與26個月的高;經(jīng)過長期的腌漬后,耐鹽耐酸微生物生長繁殖,占據(jù)優(yōu)勢,由于高鹽、高酸環(huán)境的抑制作用,生長緩慢,因此在很長時間內(nèi)菌群結(jié)構(gòu)保持穩(wěn)定。

    2.2 DGGE條帶的序列分析

    對DGGE圖譜中的優(yōu)勢條帶克隆測序、序列比對結(jié)果如表2所示。

    由表2可知,鹽漬青菜5個優(yōu)勢條帶中4個為酵母菌,另一條帶e與白芥(Sinapis alba)的26S核糖體RNA基因序列相似性最高,推斷這個序列是源自于青菜[10-11]。另4個條帶分別與假絲酵母屬(Candida)、德巴氏酵母屬(Debaryomyces)、接合酵母屬(Zygosaccharomyces)的菌株相似。a、d條帶分別與NCBI數(shù)據(jù)庫中登錄號為GU195657、DQ438242的2株假絲酵母屬酵母最為相似,相似度約為99%;b、c條帶分別與NCBI數(shù)據(jù)庫中登錄號為KC442271、JQ689016的Debaryomyces sp.和魯氏接合酵母(Zygosaccharomyces rouxii)相似,相似度接近 100%。Dakal等[14]研究指出魯氏接合酵母具有耐糖、耐鹽特性;Wah等[15]研究表明,強化季也蒙畢赤酵母(Pichia guilliermon-dii)與魯氏接合酵母共培養(yǎng)物,可提高泰國豆醬風味,楊松彰等[16]報道分離自優(yōu)質(zhì)醬油的(Candida versatilis CGMCC3790)、魯氏接合酵母 CGMCC3791與乳酸菌共同發(fā)酵可提升郫縣豆瓣醬的品質(zhì),Cano-Garcia等[17]報道從自然發(fā)酵香腸中分離得的漢遜德巴氏利酵母具有提高產(chǎn)品香味品質(zhì)的功能。鹽漬青菜中的酵母菌具有耐高滲環(huán)境的特性,部分酵母具有促進生香功能。

    國內(nèi)外學者針對發(fā)酵蔬菜的真菌菌群結(jié)構(gòu)也開展了一些研究。張先琴[12]采用DGGE技術(shù)對四川地區(qū)家庭制作泡菜微生物多樣性研究表明,所得真菌序列與(Meyerozyma guilliermondii)和奧默柯達酵母(Kodamaea ohmeri)的序列具有最高相似度。Chang等[13]采用DGGE技術(shù)對韓國泡菜的酵母菌分析得到的條帶與絲孢酵母屬(Trichosporon)、酵母菌屬(Saccharomyces)、孢堆黑粉菌屬(Sporisorium)、畢赤酵母屬(Pichia)的真菌序列具有最高的相似度。比較可知,不同發(fā)酵蔬菜之間的真菌優(yōu)勢菌有一定的差異性,這是由于微生物菌群結(jié)構(gòu)受到蔬菜品種、來源、預(yù)處理方法及腌漬工藝等因素影響。

    2.3 酵母菌分離鑒定

    依據(jù)實驗方法1.5從鹽漬青菜中分離得到10株酵母菌,通過分子生物學鑒定,結(jié)果如表3所示。

    由表3可知,分離獲得的酵母菌分別與漢遜德巴利酵母、釀酒酵母、魯氏接合酵母相似。對比表2與表3可知,分離得到了與DGGE圖譜優(yōu)勢條帶b、c相似的菌株,未得到條帶a、d所對應(yīng)的酵母菌,這是由于傳統(tǒng)培養(yǎng)技術(shù)的偶然性、部分微生物對培養(yǎng)條件的選擇性所致。張鵬[1]從四川泡菜中分離篩選得到2株酵母菌,通過Sher lock微生物鑒定系統(tǒng)鑒定為粗狀假絲酵母(Candida valida)、平滑假絲酵母(Candida parapsilosis);鄯晉曉[2]從泡菜中分離得到6株,通過生理生化試驗初步鑒定為釀酒酵母、粘紅酵母(Rhodotorula glutinis)、粗壯假絲酵母、異變酒香酵母(Torulopsis glabrata)、異常漢遜氏酵母(Hansenula anomala);曾駿[3]從傳統(tǒng)四川泡菜中分離純化得到5株酵母,通過分子生物學初步鑒定4株為Kazachstania exigua,1株為膜醭畢赤酵母。不同樣品的分離結(jié)果有一定的差異,這是由于樣品的差異與微生物鑒定方法存在的差異所致。

    3 結(jié)論

    通過PCR-DGGE技術(shù)對真菌菌群結(jié)構(gòu)分析表明,鹽漬青菜的真菌基因多樣性豐富,隨著鹽漬時間的延長,優(yōu)勢條帶數(shù)量增多,鹽漬2個月的青菜僅有1條優(yōu)勢條帶,真菌菌群結(jié)構(gòu)與青菜原料相似,鹽漬14個月與26個月的青菜真菌菌群結(jié)構(gòu)相似,并有4條優(yōu)勢條帶。通過序列分析表明,4個優(yōu)勢條帶分別與假絲酵母屬、德巴利酵母屬、接合酵母屬的菌株相似。從鹽漬青菜樣品中分離得到10株酵母菌,通過分子生物學鑒定為漢遜德巴利酵母、釀酒酵母、魯氏接合酵母。PCR-DGGE技術(shù)對鹽漬青菜菌群結(jié)構(gòu)的解析不依賴培養(yǎng),方便簡便快捷,獲得的實驗數(shù)據(jù)可靠,對生產(chǎn)具有較好的指導(dǎo)作用,是一種有效的研究手段。酵母菌在發(fā)酵蔬菜中具有促進香味物質(zhì)生成、提高發(fā)酵蔬菜品質(zhì)、抑制腐敗等功能,可進一步開展發(fā)酵蔬菜專用酵母菌篩選、菌劑研發(fā)與應(yīng)用等研究。

    致謝:本論文中的樣品采集得到了四川省吉香居食品有限公司、李記泡菜四川公司的大力支持,實驗開展過程中宜賓學院實驗與教學資源管理中心、固態(tài)發(fā)酵資源利用四川省重點實驗室的幫助,在此表示衷心感謝!

    [1] 張鵬.四川泡菜中酵母菌的分離篩選及其應(yīng)用研究[D].哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學,2007.

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