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      骨髓間充質(zhì)干細胞及其對脊髓損傷的治療

      2015-04-03 14:23:46李秀云李春蘭隋曉娜
      實用醫(yī)藥雜志 2015年3期
      關(guān)鍵詞:脊髓干細胞分化

      曹 娟,李秀云,李春蘭,隋曉娜,唐 靜

      1 脊髓間充質(zhì)干細胞(BMSC)的特性

      1.1 BMSC起源及體外分離、培養(yǎng)和鑒定

      1.1.1 BMSC起源 BMSC是一種最早從骨髓中分離的成體干細胞,因其能夠誘導(dǎo)分化為中胚層來源的間質(zhì)細胞而得名。BMSC屬成人干細胞,又稱成纖維細胞集落形成單位 (fibroblastic colony forming unit,F(xiàn)CFU)或間質(zhì)祖細胞(mesenchymal progenitor cells,MPC),因主要存在于結(jié)締組織和器官間質(zhì),骨髓為主要來源,統(tǒng)稱為BMSC。Minguell等將BMSC概括為:存在于脊髓間充質(zhì)內(nèi)的非造血來源的細胞亞群,可在體外擴增,并可誘導(dǎo)分化為成骨細胞、軟骨細胞、脂肪細胞、肌腱細胞、肌管、神經(jīng)細胞與支持造血的干細胞的基質(zhì)。

      1.1.2 分離 目前BMSC的體外分離主要用細胞表面分子標(biāo)記分選法、細胞貼壁篩選法、密度梯度離心法、細胞篩篩選法等。細胞表面分子標(biāo)記分選法分離細胞的純度與所選擇的表面活性分子密切相關(guān),但目前仍未發(fā)現(xiàn)特異性的BMSC表面標(biāo)記,單克隆抗體磁珠分離系統(tǒng)和流式細胞術(shù)也可用于細胞分離,但降低細胞活性。細胞貼壁篩選所分離的BMSC純度較低,而且傳代培養(yǎng)也難以去除雜質(zhì)。目前應(yīng)用較為廣泛的是細胞貼壁篩選法加密度梯度離心法。

      1.1.3 培養(yǎng) BMSC具有自我更新和多向分化潛能,傳代培養(yǎng),細胞形態(tài)均一,生長方式為貼附型,形態(tài)類似于成纖維細胞,呈梭形、紡錘形,克隆樣生長,培養(yǎng)至9代后生長減慢,胞質(zhì)空泡化、胞體變大等老化現(xiàn)象[1]。目前使用最為廣泛的BMSC培養(yǎng)基含10%胎牛血清的低糖DMEM,10%胎牛血清和1%雙抗,以95%飽和濕度,37℃ CO2孵箱培育。擴增BMSC時常用標(biāo)記方法包括熒光標(biāo)記法;化學(xué)標(biāo)記法;Y染色體標(biāo)記法等方法?;瘜W(xué)及熒光標(biāo)記技術(shù)簡單、專一性強、標(biāo)記效率高,但適用于短期標(biāo)記移植細胞;而且熒光標(biāo)記只能判定細胞的存在,無法觀察細胞形態(tài)。再者,標(biāo)記細胞凋亡或死亡后會釋放標(biāo)記物,一方面可標(biāo)記周圍細胞,造成假陽性,一方面如果被巨噬細胞吞噬,細胞碎片也可以有熒光表達。對標(biāo)記細胞在同一動物、不同時間活體內(nèi)的追蹤常用放射性核素標(biāo)記法、超順磁性三氧化二鐵納米微粒(SPIO)標(biāo)記法、生物發(fā)光活體成像技術(shù)。MRI活體示蹤磁性標(biāo)記細胞,可對BMSC遷移、增殖、分化進行監(jiān)測,但不同部位的移植細胞需采用不同顯影劑,應(yīng)用受限。此外還有細胞膜標(biāo)記、Hoechst標(biāo)記等方法。

      1.1.4 鑒定 在表型上,至今仍未發(fā)現(xiàn)BMSC有特異性的表面標(biāo)記物。目前主要通過兩種方法鑒定:形態(tài)學(xué)特征及生長特點成纖維細胞樣生長,如前所述;再者即排除法:BMSC在體外實驗中主要根據(jù)其分化為間充質(zhì)干細胞系如脂肪細胞、成軟骨細胞等[2];以及表達特定的細胞表面標(biāo)志物鑒定:BMSC表達多種表面標(biāo)志物,包括細胞外基質(zhì)成分、細胞因子、生長因子及其受體等,但造血及內(nèi)皮細胞表達的抗原陰性。流式細胞術(shù)檢測發(fā)現(xiàn),與造血、內(nèi)皮細胞一致的標(biāo)志物(尤其是CD45、CD34等),BMSC 表達陰性,而與基質(zhì)細胞和間質(zhì)細胞一致的標(biāo)志物如CD44、CD29、CD13等表達陽性。 雖然國際細胞治療協(xié)會 標(biāo) 準(zhǔn) ,BMSC 應(yīng) 表 達 CD106、CD90、CD73; 不 表 達CD45,CD19,CD19或 CD79,CD14或 CD11b,也不表達成纖維細胞的組織相容性抗原-DR 型(HLA-DR)等[3],但目前其具體表型標(biāo)志還不明確,這一標(biāo)準(zhǔn)也不是唯一參數(shù)。

      1.2 BMSC的生物學(xué)特性

      1.2.1 形態(tài)和生長方式 BMSC在形態(tài)上呈現(xiàn)為成纖維樣或不規(guī)則樣,胞質(zhì)豐富,核染色質(zhì)細,核仁明顯,平行排列或旋渦樣生長。

      1.2.2 自我更新 BMSC具有較強的端粒酶活性,可通過不對稱分裂方式增殖,實現(xiàn)分化、增殖,維持自身干細胞的數(shù)量。

      1.2.3 多向分化潛能 已有研究表明,BMSC可以向中胚層、外胚層、內(nèi)胚層分化。

      1.3 BMSC的免疫學(xué)特性及免疫修復(fù)機制

      1.3.1 BMSC的免疫抑制性 BMSC具有弱免疫原性,僅表達中等水平的主要組織相容性抗原Ⅰ(HLA-Ⅰ)類分子,不表達 HLA-Ⅱ類分子、Fas配體和 B7-1、B7-2、CD40、CD40L等協(xié)同刺激分子,能夠逃避移植受者免疫系統(tǒng)的識別。BMSC可通過分泌可溶性因子或外界激活/刺激而對移植受者產(chǎn)生負(fù)性免疫調(diào)節(jié)作用,當(dāng)BMSC與同種異體組織接觸并釋放可溶因子免疫抑制最有效。BMSC可誘導(dǎo)T淋巴細胞失能,表現(xiàn)為不能增殖以及在抗原刺激后通常是在沒有足夠刺激后,不分泌細胞因子,抑制樹突狀細胞(DC)的發(fā)育及功能,向成骨細胞分化后的BMSC仍具有免疫調(diào)節(jié)功能[4]。BMSC還誘導(dǎo)Th1減少INF-γ分泌,誘導(dǎo)Th2分泌IL-4。在Ⅱ型膠原誘導(dǎo)關(guān)節(jié)炎中,給予同種異體BMSC可能通過降低T細胞增殖反應(yīng)、降低血清IL-4、INF-γ水平等途徑阻止軟骨和骨的不可逆性免疫破壞[5]。對于B細胞,BMSC可通過抑制B細胞與NK細胞的增殖和活化而發(fā)揮免疫抑制效應(yīng)[6]。BMSC可通過產(chǎn)生介質(zhì)抑制B細胞的增殖和分化,使B淋巴細胞停留在G0/G1期,從而產(chǎn)生抑制作用;或下調(diào)B細胞趨化因子受體等途徑減弱B細胞向炎癥部位募集[7]。在混合淋巴細胞培養(yǎng)中,BMSC能夠抑制T細胞和B細胞增殖。BMSC對DC的抑制作用表現(xiàn)為,共同培養(yǎng)BMSC與DC時,發(fā)現(xiàn)DC衍生物CD14+單核細胞反應(yīng)減弱,成熟DC標(biāo)志CD83的表達減少,抑制單核細胞系向抗原提呈細胞分化,或通過阻斷細胞周期而抑制樹突狀細胞的分化和功能[8]。

      1.3.2 BMSC的免疫刺激作用 在血液、脾臟的淋巴細胞中,BMSC有輕度增加IgG和INF-γ分泌的作用。新近研究表明,人和小鼠的BMSC在體外用γ干擾素和異種可溶性蛋白質(zhì)處理后,能充當(dāng)抗原提呈細胞,并通過HLA-Ⅱ類分子途徑產(chǎn)生保護性的免疫反應(yīng)。

      2 BMSC治療與SCI后脊髓修復(fù)

      2.1 脊髓損傷后功能恢復(fù)的機制 軸突損傷后,即使神經(jīng)元胞體仍然存活,神經(jīng)元功能也可能缺失。用BMSC對損傷脊髓干預(yù),旨在通過改變SCI后的病理過程從而促進脊髓功能恢復(fù),可能修復(fù)機制主要包括:①分化成受損神經(jīng)組織細胞,達到結(jié)構(gòu)和功能的恢復(fù)[9]:但目前仍然備受爭議,部分學(xué)者不贊同 BMSC 神經(jīng)分化觀點[10,11];②分泌生長因子和細胞因子,為軸突或神經(jīng)元再生提供最佳微環(huán)境:損傷脊髓內(nèi)的神經(jīng)生長因子、血管內(nèi)皮生長因子和腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子等營養(yǎng)因子的含量明顯增高,神經(jīng)元軸突再生明顯;神經(jīng)營養(yǎng)因子是神經(jīng)系統(tǒng)中重要的調(diào)節(jié)蛋白,可調(diào)節(jié)神經(jīng)元的存活、軸突生長、突觸可塑性和神經(jīng)遞質(zhì)的產(chǎn)生,但這些因子受到神經(jīng)膠質(zhì)瘢痕抑制,因此它們改變脊髓損傷的微環(huán)境作用是有限的[12-15];③移植材料填充損傷部位并形成細胞橋,從而為損傷軸突的再生提供機械或生物通道[16];④減輕急慢性炎癥反應(yīng),免疫抑制,保護組織,加強感覺運動功能的恢復(fù):減輕脊髓損傷急性炎癥反應(yīng),防止再損傷的發(fā)生和星形膠質(zhì)細胞、小膠質(zhì)細胞和巨噬細胞的反應(yīng)[17,18]。

      2.2 BMSC移植治療SCI的動物 BMSC移植治療SCI的動物實驗,將BMSC體外誘導(dǎo)分化為Schwann細胞移植入損傷7d后的小鼠脊髓,損傷脊髓囊腔變小,軸突再生,小鼠后肢功能恢復(fù)顯著。Bakshi等發(fā)現(xiàn),選用表達人胎盤堿性磷酸酶的轉(zhuǎn)基因大鼠,將獲取的BMSC經(jīng)腰穿移植入SD大鼠的SCI部位,能夠減少SCI囊變和再損傷的發(fā)生,而將人BMSC用于治療脊髓半橫斷損傷的大鼠,無須進行免疫抑制,大鼠可存活數(shù)月,并且沒有出現(xiàn)炎癥或免疫排斥反應(yīng)[19]。將BMSC經(jīng)靜脈注射用于成體動物,BMSC可遷移到中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi),表達神經(jīng)元特異性標(biāo)志物,如神經(jīng)核蛋白(NeuN)、βⅢ微管蛋白(Tubulin2βⅢ)等,因而被認(rèn)為已經(jīng)分化為成熟的星形膠質(zhì)細胞和神經(jīng)元,有望形成新的神經(jīng)環(huán)路。通過大量的嚙齒類和靈長類動物實驗證實BMSC對脊髓損傷部分功能恢復(fù)是有效的,并且是安全的,這為BMSC的臨床應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

      2.3 BMSC 臨床應(yīng)用

      2.3.1 完全性、不完全性脊髓損傷 移植治療不完全性脊髓損傷患者,肌肉力量,關(guān)節(jié)僵硬,感覺,尿便自控力,少數(shù)患者性功能等方面會有較為明顯的改善。完全性損傷則治療效果很有限:感覺障礙范圍縮小,肌張力降低和輕度肌力提高[20]。

      2.3.2 脊髓損傷的急性期、亞急性期和慢性期 急性期或亞急性期BMSC臨床治療較以往傳統(tǒng)治療都取得了較理想的功能恢復(fù)。對于慢性期患者,大部分研究證實BMSC治療效果不明顯。即便有少數(shù)患者在注射BMSC后立即出現(xiàn)感覺或功能好轉(zhuǎn),但這些改善也往往會在之后的3~4個月消失[21]。暫時的感覺和功能的改善主要是因為BMSC注射時,硬脊膜被輕微的損傷刺激、腦脊液暫時恢復(fù)、休眠的神經(jīng)元被刺激、神經(jīng)膠質(zhì)瘢痕的斷裂引起的,而不是因為BMSC的植入。因為BMSC植入后細胞擴增及各種因子的分泌都有一定的潛伏期。國內(nèi)研究證實完全性脊髓損傷接受移植治療的時間超過傷后3年,則治療效果很有限,最常見的改善是感覺障礙范圍縮小、肌張力降低和輕度肌力提高[20]。

      目前BMSC治療SCI的具體機制尚不十分清楚,雖然多數(shù)的動物實驗和臨床研究證實BMSC移植治療后,SCI導(dǎo)致的神經(jīng)功能缺失癥狀能明顯得以改善,但臨床試驗中獲得顯著功能改善的結(jié)論很少。RakhiPal等[22]通過長期隨訪證實經(jīng)BMSC治療的SCI患者沒有明顯的不良反應(yīng)及帶來額外的并發(fā)癥,而且都有不同程度的功能恢復(fù),證實骨髓間充質(zhì)干細胞移植治療脊髓損傷是安全的,但這一結(jié)果還需要大量臨床報告證實。因治療而導(dǎo)致的神經(jīng)性疼痛或腫瘤等并發(fā)癥正處于進一步研究階段。目前干細胞聯(lián)合治療方案已經(jīng)成為SCI治療的一種新趨勢。

      2.3.3 BMSC治療的方式及時機的選擇 靜脈注射法是一種更為便捷的方法,但是細胞注射到血液中,只有很少一部分能植入脊髓內(nèi),到達損傷局部的更是微乎其微;局部注射法注射的BMSC能最大限度地移植入脊髓損傷部位,進而發(fā)揮促進修復(fù)的作用;腰穿注射BMSC能夠通過腦脊液循環(huán)到達脊髓損傷局部,并且可以進入脊髓內(nèi)部,是目前最好的移植方法;定向誘導(dǎo)分化為神經(jīng)元或者神經(jīng)膠質(zhì)細胞后再進行細胞移植,或許是一種更為有效的治療方法;還可聯(lián)合其他細胞、細胞因子、組織工程支架、藥物移植。

      脊髓損傷后,幾分鐘內(nèi)局部即可發(fā)生形態(tài)學(xué)改變。傷后1h,前角細胞出現(xiàn)中央染色溶解和缺血。傷后4h,出血呈離心性,傷后21h有明顯脫髓鞘改變,出現(xiàn)多形核白細胞浸潤等改變繼而并發(fā)繼發(fā)性損傷,這一急性過程約持續(xù)7d左右。細胞移植過早,因急性期血腦屏障破壞嚴(yán)重的炎癥免疫反應(yīng)會導(dǎo)致移植的干細胞壞死;過晚由于脊髓損傷部位膠質(zhì)瘢痕形成,神經(jīng)纖維難以再生。因此許多學(xué)者則認(rèn)為10~14d亞急性階段為BMSC最佳的治療時間[21]。但有研究證實鼠脊髓損傷后6h至28d不同時間點經(jīng)BMSC治療,行為測試結(jié)果證實6h及1、3d早期治療結(jié)果好于后期[23]。但也有觀點認(rèn)為SCI的急性期、亞急性期及慢性期都可適用于BMSC治療:BMSC可調(diào)節(jié)急性期劇烈的炎癥反應(yīng),在亞急性及慢性期降低神經(jīng)膠質(zhì)瘢痕抑制,為軸突再生提供持續(xù)的最佳微環(huán)境[15]。目前干細胞治療脊髓損傷的機制探討不是很明確,因此治療的最佳時機仍需通過大樣本、長期臨床觀察方能確定。

      3 問題及展望

      BMSC移植治療SCI在臨床仍處于起步階段,有很多問題亟待闡明:①BMSC的自身基因調(diào)控機制;②BMSC與宿主神經(jīng)組織相互融合的機制;③BMSC分化而來的神經(jīng)細胞是否具有完整的神經(jīng)元功能,移植后的神經(jīng)細胞之間能否建立精確的聯(lián)系;④盡管大量動物實驗及臨床試驗已經(jīng)證明BMSC移植治療SCI可顯著促進神經(jīng)功能恢復(fù),但應(yīng)如何進一步明確及提高療效;⑤BMSC移植治療的臨床應(yīng)用亟須大樣本的隨機對照研究以確認(rèn)遠期效果及安全性(腫瘤化與分化誘導(dǎo));⑥BMSC的臨床試驗設(shè)計,SCI患者選擇,SCI治療結(jié)果評價等需要根據(jù)臨床前的實驗進一步的優(yōu)化。

      盡管如此,復(fù)習(xí)文獻可知BMSC具有強大的增殖能力和多向分化潛能,可向非間質(zhì)細胞譜系如神經(jīng)細胞分化的潛能,易于培養(yǎng),移植后免疫性低,能夠通過改變SCI后的病理過程從而促進脊髓功能恢復(fù)且倫理問題爭議少,對SCI疾病的防治前景較為廣闊。

      [1] 李念龍,于占革.骨髓間充質(zhì)干細胞移植治療脊髓損傷的研究進展[J].中國矯形外科雜志,2012,10(04):62-64.

      [2] Dominici M,Le Blanc K,Mueller I,et al.Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells,the international society for cellular therapy position statement[J].Cytotherapy,2007,9(3):301-302.

      [3] Benayahu D,Akavia UD,Shur I.Differentiation of bone marrow stroma derived mesenchymal cells[J].Curr Med Chem,2007,14(2):173-179.

      [4] Di Nicola M,Carb-Stella C,Magni M,et al.Human bone marrow stromal cells suppress T-lymphocyte proliferation induced by cellular or nonspecific mitogenic stimuli[J].Blood,2002,99(10):3838-3843.

      [5] Augello A,Tasso R,Negrini SM,et al.Cell therapy using allogeneic bone marrow mesenchymal stem cells to prevent tissue damage in collagen-induced arthritis [J].Rheum,2007,56(4):1175-1186.

      [6] Maggini J,Mirkin G,Bognanni I,et al.Mouse bone marrowderived mesenchymal stromal cells turn activated macrophages into a regulatory-like profile[J].PLoS One,2010,5(2):e9252.

      [7] Corcione A,Benvenuto F,F(xiàn)erretti E,et al.Human mesenchymal stem cells modulate B-cell functions[J].Blood,2006,107(1):367-372.

      [8] Djouad F,Charbonnier LM,Bouffi C,et al.Mesenchymal stem cells inhibit the differentiation of dendritic cells through an IL-6-dependent mechanism[J].Stem Cells,2007,5(8):2025-2032.

      [9] Pedram MS,Dehghan MM,Soleimani M,et al.Transplantation of a combination of autologous neural differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells into injured spinal cord of rats[J].Spinal Cord,2010,48(6):457-463.

      [10] Weidong Gu,F(xiàn)ujun Zhang,Qingsheng Xue,et al.Transplantation of bone marrow mesenchymal stem cells reduces lesion volume and induces axonal regrowth of injured spinal cord[J].Neuropathology,2010,30(3):205-217.

      [11] Parr AM,Kulbatski I,Wang XH,et al.Fate of transplanted adult neural stem/progenitor cells and bone marrow derived mesenchymal stromal cells in the injured adult rat spinal cord and impact on functional recovery[J].Surg Neurol,2008,70(6):600-607.

      [12] Parr AM,Tator CH,Keating A.Bone marrow derived mesenchymal stromal cells for the repair of central nervous system injury[J].Bone Marrow Transplant,2007,40(7):609-619.

      [13] Kamei N,Tanaka N,Oishi Y,et al.Bone marrow stromal cells promoting corticospinal axon growth through the release of humoral factors in organotypic cocultures in neonatal rats[J].Neurosurg Spine,2007,6(5):412-419.

      [14] Sasaki M,Radtke C,Tan AM,et al.BDNF-h(huán)yper secreting human mesenchymal stem cells promote functional recovery,axonal sprouting,and protection of corticospinal neurons after spinal cord injury[J].Neurosci,2009,29(47):14932-14941.

      [15] Wright KT,El Masri W,Osman A,et al.Concise review:Bone marrow for the treatment of spinal cord injury:mechanisms and clinical applications[J].Stem Cells,2011,29(2):169-178.

      [16] Wright KT,El Masri W,Osman A,et al.Bone marrow stromal cells stimulate neurite outgrowth over neural proteoglycans(CSPG),myelin associated glycoprotein and Nogo-A[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,354(2):559-566.

      [17] Abrams MB,Dominguez C,Pernold K,et al.Multipotent mesenchymal stromal cells attenuate chronic inflammation and injury-induced sensitivity to mechanical stimuli in experimental spinal cord injury [J].Neurosci,2009,27(4):307-321.

      [18] Auletta JJ,Deans RJ,Bartholomew AM,et al.Emerging roles for multipotent,bone marrow -derived stromal cells in host defense[J].Blood,2012,119(8):1801-1809.

      [19] Bakshi A,Barshinger AL,Swanger SA,et al.Lumbar puncture delivery of bone marrow stromal cells in spinal cord contusion:a novel method for minimally invasive cell transplantation[J].Neurotrauma,2006,23(1):55-65.

      [20] 徐 瑤,肖曉山.干細胞移植治療脊髓損傷的研究[J].現(xiàn)代醫(yī)院,2012,12(6):7-9.

      [21] Yoon SH,Shim YS,Park YH,et al.Complete spinal cord injury treatment using autologous bone marrow cell transplantation and bone marrow stimulation with granulocyte macrophagecolony stimulating factor: Phase I/II clinical trial[J].Stem Cells,2007,25(8):2066-2073.

      [22] Pal R,Venkataramana NK,Bansal A,et al.Ex vivo-expanded autologous bone marrow-derived mesenchymal stromal cells in human spinal cord injury/paraplegia:a pilot clinical study[J].Cytotherapy,2009,11(7): 897-911.

      [23] Osaka M,Honmou O,Murakami T,et al.Intravenous administration of mesenchymal stem cells derived from bone marrow after contusive spinal cord injury improves functional out come[J].Brain Res,2010,1343(2):226-235.

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