細(xì)胞自噬對(duì)牛病毒性腹瀉病毒復(fù)制的影響

宮曉煒，鄭福英，陳啟偉，劉永生，李兆才，周繼章，才學(xué)鵬，殷 宏

(中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院 蘭州獸醫(yī)研究所 家畜疫病病原生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 草食動(dòng)物細(xì)菌病創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)，蘭州 730046)

細(xì)胞自噬對(duì)牛病毒性腹瀉病毒復(fù)制的影響

宮曉煒，鄭福英，陳啟偉，劉永生*，李兆才，周繼章*，才學(xué)鵬，殷 宏

(中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院 蘭州獸醫(yī)研究所 家畜疫病病原生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 草食動(dòng)物細(xì)菌病創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)，蘭州 730046)

本研究旨在了解牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)誘導(dǎo)的細(xì)胞自噬在病毒感染過程中所起的作用。用Oregon C24V株感染MDBK細(xì)胞，以Western blot、間接免疫熒光、透射電鏡三種方法鑒定細(xì)胞自噬的產(chǎn)生；通過自噬抑制藥物Wortmannin和自噬基因Beclin-1的RNAi干擾阻斷自噬，探究自噬對(duì)BVDV復(fù)制的影響。結(jié)果顯示，病毒感染可以引起LC3I向LC3Ⅱ的轉(zhuǎn)化及p62的降解；轉(zhuǎn)染GFP-LC3質(zhì)粒的細(xì)胞，在病毒感染后出現(xiàn)增多的聚集顆粒；透射電鏡能觀察到細(xì)胞中出現(xiàn)大量的雙層膜結(jié)構(gòu)；此外，抑制細(xì)胞自噬或干擾Beclin-1的表達(dá)，細(xì)胞上清中病毒的滴度及病毒蛋白質(zhì)的表達(dá)量都有所降低。BVDV感染早期可以誘導(dǎo)自噬的產(chǎn)生，且自噬對(duì)病毒的復(fù)制有利。

牛病毒性腹瀉病毒；細(xì)胞自噬；病毒復(fù)制

牛病毒性腹瀉病毒(bovine viral diarrhea virus，BVDV)是一種有包膜的單股正鏈RNA病毒，為黃病毒科瘟病毒屬成員[1]。BVDV感染動(dòng)物能引起以急慢性黏膜病、持續(xù)性感染和免疫抑制為主要特征的傳染性疾病[2]。近二十多年來，歐盟多個(gè)國(guó)家采取了凈化BVDV的措施，包括持續(xù)性感染動(dòng)物的檢測(cè)和清除、疫苗保護(hù)性的提高及嚴(yán)格的生物安全操作，取得了不錯(cuò)的效果，但流行病學(xué)調(diào)查數(shù)據(jù)顯示，BVDV感染在全球流行的形勢(shì)依然嚴(yán)峻，如亞洲、中歐、美洲等[3-6]。在中國(guó)，BVDV的流行也明顯呈上升趨勢(shì)[7-8]。目前，從宿主角度研究黃病毒科病毒致病機(jī)制的報(bào)道越來越多，但探索與BVDV復(fù)制相關(guān)的研究極為有限。

自噬是一種進(jìn)化保守的細(xì)胞自救行為，對(duì)維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài)和應(yīng)激條件下細(xì)胞的存活有重要意義[9]。目前已鑒定的自噬相關(guān)基因(ATGs)有36個(gè)，它們通過多種機(jī)制嚴(yán)格調(diào)控細(xì)胞自噬，包括自噬空泡和自噬溶酶體的形成[10]。而作為真核細(xì)胞早期的保護(hù)防御機(jī)制，細(xì)胞自噬可通過相應(yīng)機(jī)制清除胞內(nèi)病原體，水泡性口炎病毒(VSV)和裂谷熱病毒(RVFV)感染誘導(dǎo)的自噬能有效抑制病毒復(fù)制[11-12]。但也有許多病毒，如豬瘟病毒(CSFV)、柯薩奇病毒B3(CVB3)、丙型肝炎病毒(HCV)、乙型腦炎病毒(JEV)、登革熱病毒(DV)可進(jìn)化出各種不同的機(jī)制來破壞、逃避和抑制細(xì)胞自噬，甚至?xí)米允蓙碓鰪?qiáng)自身的繁殖能力[13-16]。

鑒于細(xì)胞自噬在病毒感染中的重要調(diào)節(jié)作用，本試驗(yàn)用BVDV Oregon C24V感染MDBK細(xì)胞，檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)自噬空泡的形成及自噬相關(guān)蛋白質(zhì)的表達(dá)；并通過影響自噬產(chǎn)生的信號(hào)通路，明確自噬與病毒復(fù)制之間的關(guān)系。

1 材料與方法

1.1 毒株和細(xì)胞株

Oregon C24V毒株購(gòu)于中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所；MDBK細(xì)胞為筆者實(shí)驗(yàn)室保存。

1.2 質(zhì)粒和相關(guān)抗體

兔抗-LC3B多克隆抗體(Anti-LC3B antibody produced in rabbit，L7543)購(gòu)自Sigma公司；兔源BECN1(H-300)抗體購(gòu)自SANTA GRUZ公司；Anti-p62/SQSTM1購(gòu)自MBL公司；小鼠抗β-actin單克隆抗體和山羊抗兔IgG-HRP購(gòu)自Earthox公司；羊抗兔IgG-TRITC抗體購(gòu)自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司；兔抗Npro多克隆抗體、pEGFP-N1-LC3質(zhì)粒為筆者實(shí)驗(yàn)室制備。

1.3 相關(guān)試劑

雷帕霉素(Rapamycin，R0395)和Wortmannin(W1628)為Sigma公司產(chǎn)品；Trizol Reagent、脂質(zhì)體2000(Lipofectamin 2000 Reagent)為Invitrigen公司產(chǎn)品；X-tremeGENE siRNA Transfection Reagent為羅氏公司產(chǎn)品；OPTI-MEM培養(yǎng)基為Gibco公司產(chǎn)品；DAPI封片劑為Southern Biotech公司產(chǎn)品。

1.4 Western blot檢測(cè)LC3脂?；癗pro蛋白的表達(dá)

1.4.1 接毒和細(xì)胞處理 將待接毒和處理的細(xì)胞鋪于細(xì)胞板，當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)80%～90%時(shí)，用感染復(fù)數(shù)MOI為1的BVDV感染MDBK細(xì)胞，37 ℃吸附2 h，然后棄掉含病毒的液體，加入完全培養(yǎng)基培養(yǎng)；在不同的時(shí)間點(diǎn)收取細(xì)胞；試驗(yàn)中陽(yáng)性對(duì)照組加入100 nmol·L-1的Rapamycin，陰性對(duì)照不感染BVDV。

1.4.2 細(xì)胞樣品制備及檢測(cè) 收集細(xì)胞沉淀，加入細(xì)胞裂解液混勻沉淀，冰上裂解40 min，12 000 r·min-1離心10 min后移出上清，進(jìn)行SDS-PAGE電泳。轉(zhuǎn)膜后，用5%的脫脂奶粉封閉2 h，兔抗-LC3B多克隆抗體(1∶1 000稀釋)和兔抗Npro多克隆抗體(1∶200稀釋)作為一抗37 ℃孵育2 h；山羊抗兔IgG-HRP(1∶10 000稀釋)作為二抗37 ℃孵育45 min；最后利用ECL顯色液進(jìn)行X光膠片曝光。

1.5 Wortmannin處理對(duì)LC3脂?；癗pro蛋白表達(dá)的影響

將待接毒和處理的細(xì)胞鋪于細(xì)胞板，當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)80%～90%時(shí)，預(yù)先在培養(yǎng)基中添加100 nmol·L-1的Wortmannin，處理4 h，然后用感染復(fù)數(shù)MOI為1的BVDV感染MDBK細(xì)胞，37 ℃吸附2 h，棄掉含毒的液體，加入完全培養(yǎng)基培養(yǎng)；陽(yáng)性對(duì)照組加入100 nmol·L-1的Rapamycin，陰性對(duì)照組接毒后不加Wortmannin；其余方法同1.4.2。

1.6 檢測(cè)GFP-LC3在細(xì)胞中的聚集

1.6.1 pEGFP-N1-LC3質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染 將待接毒和處理的細(xì)胞鋪于細(xì)胞板，細(xì)胞密度達(dá)80%～90%時(shí)，使用Lipofectamin 2000轉(zhuǎn)染試劑，按質(zhì)?！肔ipofectamin 2000 = 1∶2的比例進(jìn)行轉(zhuǎn)染。

1.6.2 接毒和細(xì)胞的處理 Rapamycin陽(yáng)性對(duì)照組：質(zhì)粒轉(zhuǎn)染之前預(yù)先在培養(yǎng)基中添加100 nmol·L-1的Rapamycin，處理2 h后，用相同濃度的完全培養(yǎng)基培養(yǎng)；病毒感染組：待轉(zhuǎn)染質(zhì)粒后24 h，細(xì)胞接毒；陰性對(duì)照組：?jiǎn)无D(zhuǎn)質(zhì)粒的正常細(xì)胞。

1.6.3 間接免疫熒光檢測(cè) pEGFP-LC3轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞用4%多聚甲醛室溫固定30 min；0.1%的Triton X-100透化15 min；10%的羊血清室溫封閉2 h；兔抗Npro多克隆抗體(1∶200稀釋)作為一抗37 ℃孵育2 h；羊抗兔IgG-TRITC(1∶100稀釋)作為二抗37 ℃孵育45 min；最后用DAPI染色并封片，并在熒光顯微鏡下觀察拍照。

1.7 透射電鏡觀察自噬體的形成

收集感染組、陰性和陽(yáng)性對(duì)照組的細(xì)胞，用2.5%的戊二醛4 ℃固定4 h，1%的鋨酸室溫固定2 h，經(jīng)乙醇梯度脫水和丙酮置換，對(duì)樣品進(jìn)行包埋、修塊和切片；經(jīng)醋酸雙氧鈾和檸檬酸鉛染色后在透射電鏡下進(jìn)行觀察。

1.8 Western blot檢測(cè)p62的降解

方法同1.4.1，不感染病毒的細(xì)胞為陰性對(duì)照組；細(xì)胞樣品進(jìn)行Western blot時(shí)，Anti-p62/SQSTM1(1∶1 000稀釋)作為一抗，山羊抗兔IgG-HRP(1∶10 000稀釋)作為二抗。

1.9Beclin-1的干擾對(duì)LC3脂?；安《緩?fù)制的影響1.9.1Beclin-1的RNA干擾 所用Beclin-1的干擾性小RNA(siRNA)分子濃度為200 nmol·L-1，采用兩條Beclin-1干擾siRNA，其核苷酸序列：GAGCTTCAAGATTCTGGACCGTGT(siBeclin-1-1)和CACCATCCAGGAGCTCACAGCTC(siBeclin-1-2)，由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。轉(zhuǎn)染細(xì)胞時(shí)，按說明書推薦的比例，用相應(yīng)體積的OPTI-MEM分別稀釋siRNA和X-tremeGENE siRNA Transfection regent，試驗(yàn)中設(shè)置陰性對(duì)照組即轉(zhuǎn)染無序的siRNA；細(xì)胞接毒同方法1.4.1。

1.9.2 BVDV滴度的測(cè)定 用無血清的DMEM將病毒做連續(xù)10倍的稀釋，從10-1到10-10；接種96孔的細(xì)胞培養(yǎng)板中，每個(gè)稀釋度接種一縱排，共8個(gè)孔，每孔100 μL，最后兩縱排為正常細(xì)胞對(duì)照；逐日觀察細(xì)胞5～7 d并記錄細(xì)胞病變的結(jié)果，按Reed-Muench法計(jì)算病毒滴度。

1.9.3 Western blot檢測(cè) 方法同1.4.1，其中兔抗LC3多克隆抗體(1∶1 000稀釋)、兔抗Beclin-1多克隆抗體(1∶1 000稀釋)和兔抗Npro多克隆抗體(1∶200稀釋)作為一抗，山羊抗兔IgG-HRP(1∶10 000稀釋)作為二抗。

2 結(jié) 果

2.1 病毒感染對(duì)LC3脂?；癗pro蛋白表達(dá)的影響

以自噬誘導(dǎo)劑Rapamycin誘導(dǎo)的細(xì)胞為陽(yáng)性對(duì)照組，未處理的細(xì)胞為陰性對(duì)照組；用Oregon C24V毒株感染MDBK細(xì)胞，在感染后12、24、36 h分別收集細(xì)胞，檢測(cè)自噬蛋白LC3Ⅱ的表達(dá)，與陰性對(duì)照組相比，結(jié)果顯示(圖1)：BVDV感染細(xì)胞后24 h，形成脂酰化的LC3(LC3Ⅱ)，而在感染36 h，LC3Ⅱ的水平與對(duì)照組相比無差別，說明在BVDV感染早期，可以誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生自噬。同時(shí)，用兔抗Npro多克隆抗體檢測(cè)病毒蛋白質(zhì)表達(dá)的情況，發(fā)現(xiàn)LC3Ⅱ水平的增高與Npro蛋白的表達(dá)呈正相關(guān)。

圖1 Western blot檢測(cè)LC3I向LC3Ⅱ的轉(zhuǎn)化及Npro蛋白的表達(dá)Fig.1 Westen blot analysis of the coversion of LC3Ito LC3Ⅱ and expression of Npro

2.2 Wortmannin處理對(duì)LC3脂酰化及Npro蛋白表達(dá)的影響

從2.1結(jié)果中得知，病毒感染24 h可以誘導(dǎo)細(xì)胞自噬的產(chǎn)生，因此用Wortmannin處理細(xì)胞，結(jié)果表明(圖2)，處理后的細(xì)胞在BVDV感染24 h，LC3Ⅱ的含量明顯減少，說明Wortmannin的確阻斷了自噬的發(fā)生，而對(duì)應(yīng)的Npro蛋白含量顯著降低，說明病毒的復(fù)制依賴細(xì)胞自噬的發(fā)生。

2.3 檢測(cè)EGFP-LC3在細(xì)胞中的聚集

pEGFP-N1/LC3瞬時(shí)轉(zhuǎn)染MDBK細(xì)胞，24 h后用Oregon C24V感染細(xì)胞；感染24 h后，通過熒光顯微鏡觀察EGFP熒光是否形成點(diǎn)狀分布。結(jié)果證明(圖3)，用Rapamycin處理的陽(yáng)性細(xì)胞和BVDV感染的細(xì)胞中有EGFP-LC3點(diǎn)狀聚集，而在陰性處理組中EGFP熒光是呈彌散狀分布的；進(jìn)一步證實(shí)，BVDV感染24 h可以促進(jìn)細(xì)胞發(fā)生自噬。

圖2 Western blot檢測(cè)Wortamannin處理后LC3I向LC3Ⅱ的轉(zhuǎn)化及Npro蛋白的表達(dá)Fig.2 Westen blot analysis of the coversion of LC3Ito LC3Ⅱ and expression of Npro in the presence of Wortamannin

圖3 EGFP-LC3在感染細(xì)胞中的分布Fig.3 The redisturbution of EGFP-LC3 in BVDV-infected cells

2.4 透射電鏡觀察自噬體

為了在超微水平檢測(cè)自噬體的形成，利用透射電鏡對(duì)Rapamycin陽(yáng)性對(duì)照組、病毒感染組和陰性對(duì)照組的細(xì)胞進(jìn)行觀察；結(jié)果發(fā)現(xiàn)(圖4)，Rapamycin組和病毒感染組均能誘導(dǎo)細(xì)胞出現(xiàn)雙層膜的典型自噬體結(jié)構(gòu)，如自噬體包裹溶酶體和線粒體(C、E)，自噬體與溶酶體融合(F)。而相比之下，陰性對(duì)照組的細(xì)胞質(zhì)內(nèi)未見到雙層膜的結(jié)構(gòu)出現(xiàn)。

2.5 Western blot檢測(cè)p62的降解

p62/SQSTM1蛋白在細(xì)胞自噬過程中插入自噬小體，連接LC3和泛素化底物，隨后被自噬溶酶體降解。因此，p62的特異性降解代表了完整自噬的形成。通過Western blot檢測(cè)了BVDV感染過程中p62蛋白的水平；其中對(duì)照組的細(xì)胞培養(yǎng)24 h進(jìn)行收集，試驗(yàn)組分別在BVDV感染后 6、12和24 h收取樣品；結(jié)果表明(圖5)病毒感染24 h發(fā)生p62蛋白的降解，進(jìn)一步證實(shí)BVDV感染增加了細(xì)胞的基本自噬，并誘導(dǎo)了自噬流量的產(chǎn)生。

2.6 Beclin-1的干擾對(duì)LC3脂酰化及病毒復(fù)制的影響 2.6.1 Beclin-1的RNA干擾 為進(jìn)一步說明細(xì)胞自噬在BVDV復(fù)制中所起的作用，通過RNAi技術(shù)對(duì)Beclin-1基因進(jìn)行了干擾，Western blot結(jié)果證實(shí)(圖6)，相比轉(zhuǎn)染無序siRNA的MDBK，設(shè)計(jì)的siRNA可以有效地干擾內(nèi)源性Beclin-1蛋白的表達(dá)。

圖4 透射電鏡觀察細(xì)胞內(nèi)自噬樣空泡的形成Fig.4 The autophagosome-like vesicle formation in MDBK cells observed by transmission electron microscope

圖5 BVDV感染MDBK細(xì)胞后誘導(dǎo)p62的降解Fig.5 Degradation of p62 in MDBK cell after BVDV infection

圖6 Western blot檢測(cè)RNA干擾的效果Fig.6 The silencing efficiency was detected by Western blot

2.6.2 Beclin-1的干擾對(duì)LC3脂酰化和Npro蛋白的影響 抑制內(nèi)源性表達(dá)的Beclin-1，檢測(cè)病毒感染細(xì)胞中LC3Ⅱ的水平和病毒蛋白Npro的表達(dá)，結(jié)果顯示(圖7)RNAi可以降低LC3I向LC3Ⅱ的轉(zhuǎn)化和Npro蛋白的表達(dá)量，說明干擾自噬相關(guān)基因可以有效抑制BVDV蛋白的表達(dá)。

圖7 Beclin-1的干擾對(duì)LC3I向LC3Ⅱ的轉(zhuǎn)化及Npro蛋白表達(dá)的影響Fig.7 Impact of siBeclin-1 on the coversion of LC3Ito LC3Ⅱ and expression of Npro

2.6.3 Beclin-1的干擾對(duì)病毒滴度的影響 抑制內(nèi)源性表達(dá)的Beclin-1，對(duì)MDBK細(xì)胞上清中的BVDV滴度進(jìn)行了檢測(cè)，結(jié)果發(fā)現(xiàn)(圖8)與轉(zhuǎn)染無序siRNA的細(xì)胞相比，轉(zhuǎn)染siBeclin-1的細(xì)胞上清中病毒滴度下降2.13倍，說明干擾自噬相關(guān)基因可以有效抑制BVDV的復(fù)制。

*P<0.05圖8 Beclin-1的干擾對(duì)病毒滴度的影響Fig.8 Impact of siBeclin-1 on the virus titers

3 討 論

絕大多數(shù)RNA病毒在感染細(xì)胞之后可以引起自噬穩(wěn)態(tài)的產(chǎn)生和自噬體的蓄積。自噬穩(wěn)態(tài)檢測(cè)的方法主要包括Western blot檢測(cè)LC3的轉(zhuǎn)化、熒光顯微鏡觀察EGFP-LC3的分布及透射電鏡鑒定自噬體的形成[17]。本試驗(yàn)以O(shè)regon C24V毒株感染MDBK細(xì)胞，在不同時(shí)間點(diǎn)收取樣品，利用上述三種方法進(jìn)行檢測(cè)，結(jié)果表明：LC3I向LC3Ⅱ發(fā)生了轉(zhuǎn)化，LC3Ⅱ的水平增高，表明前體LC3I與自噬體表面的磷脂酰肌醇相連，形成了脂?；疞C3Ⅱ；細(xì)胞質(zhì)中，EGFP-LC3發(fā)出的熒光由彌散狀轉(zhuǎn)為顆粒狀，說明轉(zhuǎn)變的LC3Ⅱ定位在自噬體膜上；透射電鏡下可看到包裹細(xì)胞質(zhì)成分和異物的雙層囊膜結(jié)構(gòu)，以及正在發(fā)生融合的自噬體和溶酶體；這些均表明BVDV感染可以誘導(dǎo)自噬穩(wěn)態(tài)的產(chǎn)生。值得注意的是，在試驗(yàn)過程中，正常的細(xì)胞也會(huì)發(fā)生自噬，因此在細(xì)胞轉(zhuǎn)染、病毒感染及藥物處理后，均換成完全培養(yǎng)基進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)，以確保細(xì)胞生長(zhǎng)的良好狀態(tài)。

自噬穩(wěn)態(tài)的產(chǎn)生主要指細(xì)胞自噬誘導(dǎo)發(fā)生的起始階段，在自噬后期，自噬體需要和溶酶體融合發(fā)生降解，而判斷這一過程就看是否誘導(dǎo)了“自噬流量”的產(chǎn)生；p62/SQSTM1蛋白可以在后期形成自噬溶酶體時(shí)被溶酶體降解，因此對(duì)它進(jìn)行檢測(cè)可以明確是否發(fā)生了完整的自噬[18]。本試驗(yàn)表明p62在BVDV感染后24 h發(fā)生了降解，初步證明BVDV感染能誘導(dǎo)自噬流量的產(chǎn)生。自噬流量的增加更能反映出細(xì)胞內(nèi)自噬發(fā)生的程度，新城疫病毒(NDV)可誘導(dǎo)自噬流量的增加，從而誘導(dǎo)完整的細(xì)胞自噬[19]；豬繁殖和呼吸綜合征病毒(PRRSV)通過抑制自噬體向溶酶體的降解，不能誘導(dǎo)自噬流量的產(chǎn)生，從而誘導(dǎo)不完全的自噬[20-21]。因此，要明確BVDV感染后細(xì)胞自噬發(fā)生水平的高低，還需要通過檢測(cè)溶酶體抑制后LC3Ⅱ的轉(zhuǎn)化試驗(yàn)、EGFP-LC3和晚期溶酶體標(biāo)記物L(fēng)AMP1共定位試驗(yàn)等進(jìn)一步驗(yàn)證。

很多研究表明細(xì)胞自噬參與病毒的復(fù)制過程，是一把“雙刃劍”；一方面可通過阻斷或誘導(dǎo)自噬體的形成限制病毒在細(xì)胞中的復(fù)制，另一方面病毒可利用自噬為自身服務(wù)。為了進(jìn)一步探究自噬對(duì)BVDV復(fù)制的影響，我們通過添加自噬抑制藥物Wortmannin和干擾自噬關(guān)鍵基因Beclin-1的內(nèi)源性表達(dá)來檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)病毒蛋白質(zhì)的表達(dá)和病毒滴度的變化。Wortmannin可通過阻斷ClassI和ClassⅢ PI3K途徑抑制早期自噬體的形成[22]，Western blot結(jié)果證實(shí)抑制自噬可以降低病毒蛋白質(zhì)Npro的表達(dá)。據(jù)報(bào)道，瘟病毒屬病毒的Npro蛋白不僅參與病毒粒子的包裝，而且在病毒復(fù)制過程中也起關(guān)鍵作用[23]。此外，干擾Beclin-1的表達(dá)也有效抑制了Npro蛋白的表達(dá)和細(xì)胞上清中BVDV滴度；從而說明Beclin-1在BVDV的復(fù)制感染中起關(guān)鍵的作用，細(xì)胞自噬的誘導(dǎo)能夠促進(jìn)病毒的增殖。

最近，S.Shrivastava等證明，黃病毒科成員丙型肝炎病毒(HCV)可誘導(dǎo)自噬以增加自身的復(fù)制，更重要的是，HCV引發(fā)的自噬可以抑制干擾素的表達(dá)[24]。BVDV是一種免疫抑制性疾病，可影響宿主IFN的生成，能在機(jī)體內(nèi)持續(xù)性感染，然而BVDV在復(fù)制的時(shí)候是如何調(diào)控自噬通路的，又是如何利用自噬逃避宿主免疫防御系統(tǒng)的，還有待于進(jìn)一步研究。

4 結(jié) 論

BVDV感染早期可以誘導(dǎo)MDBK細(xì)胞發(fā)生自噬，并且自噬在BVDV的復(fù)制中發(fā)揮有利的作用。

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(編輯 白永平)

Impact of Cellular Autophagy on Bovine Viral Diarrhea Virus Replication

GONG Xiao-wei，ZHENG Fu-ying，CHEN Qi-wei，LIU Yong-sheng*，LI Zhao-cai，ZHOU Ji-zhang*，CAI Xue-peng，YIN Hong

(StateKeyLaboratoryofVeterinaryEtiologicalBiology，BacterialDiseaseinGrazingAnimalTeam，LanzhouVeterinaryResearchInstitute，ChineseAcademyofAgriculturalSciences，Lanzhou730046，China)

The objective of this study was to investigate the role of cellular autophagy in bovine viral diarrhea virus (BVDV) infection.We used Oregon C24V strain to determine whether BVDV infection induced autophagy by using western blot，indirect immunofluorescent assay and transmission electron microscopy.To analyze the effect of autophagy on the replication of BVDV in MDBK cell，wortmannin and small interfering RNAs targeting Beclin-1 were used to inhibit autophagy.The results showed that BVDV infection results in LC3-I/Ⅱ conversion，p62 degradation，an increased accumulation of punctate GFP-LC3-expressing cells，and a higher number of autophagosome-like double-membrane vesicles in the cytoplasm of host cells.Inhibition of autophagy or interfering expression of Beclin-1 led to a significant reduction in BVDV titers and protein expression.These results demonstrate that BVDV infection induces autophagy which in turn enhances BVDV replication.

bovine viral diarrhea virus；cellular autophagy；virus replication

10.11843/j.issn.0366-6964.2015.07.017

2014-10-10

國(guó)家肉牛產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系項(xiàng)目(CARS-38)

宮曉煒(1982-)，女，甘肅蘭州人，助理研究員，博士，主要從事動(dòng)物疫苗與分子免疫學(xué)研究，Tel：0931-8342673，E-mail：gongxiaowei@caas.cn

*通信作者：劉永生，主要從事細(xì)菌病致病機(jī)制及防控技術(shù)研究，E-mail：liuyongsheng@caas.cn；周繼章，主要從事動(dòng)物疫苗及分子免疫學(xué)研究，E-mail：zhoujizhang@126.com

S852.659.6

A

0366-6964(2015)07-1201-07