胡 蓉,鐘田雨,陳曉紅
(贛南醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院檢驗科,江西贛州341000)
宮頸癌是一種在婦女中多發(fā)的惡性腫瘤疾病,其病死率、發(fā)病率僅次于乳腺癌,發(fā)病年齡越來越趨于年輕[1]。發(fā)展中國家宮頸癌的發(fā)病率較高,我國宮頸癌患者約占全球總患者的1/3,且發(fā)病年齡年輕化,對女性的生命健康造成嚴重威脅,必須引起重視。人乳頭瘤病毒(HPV)感染一直被公認為是導致宮頸癌發(fā)病的病因[2-3],這種病毒的感染引發(fā)宮頸發(fā)生癌前病變,最終引發(fā)為宮頸癌。感染HPV婦女主要集中在青年和中年女性,但其中只有很少的婦女會發(fā)展為癌癥,并且感染的過程需要較長的時間,如果做好預防措施,治愈的可能性很大,因此單獨的HPV感染可能不是導致宮頸癌的主要病因。隨著對基因研究的不斷深入,特別是對基因多態(tài)性的研究發(fā)現(xiàn),在HPV感染發(fā)展到宮頸癌的過程中,基因的多態(tài)性可能起到很大的作用,本研究通過對128例宮頸癌婦女與100例健康婦女微小RNA-96(MiR-96)、缺氧誘導因子-1α(HIF-1α)、Twist與Slug基因表達水平的對比分析,評估其表達對宮頸癌發(fā)病的影響。
1.1 一般資料 選擇2010年3月至2014年5月在本院就診的宮頸癌患者128例,為觀察組。其中鱗癌110例(85.9%),腺癌10例(7.8%),腺鱗癌8例(6.3%),年齡22~67歲,平均(45.0±3.4)歲,手術之前均未接受化療或者放療。同時收集同期進行常規(guī)體檢的健康者100例作為對照組,對照組各項化驗指標正常并且無腫瘤史。兩組患者一般資料比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),具有可比性。
1.2 方法
1.2.1 HIF-1α表達檢測 采用HIF-1α試劑盒(蘇州普泰生物技術有限公司)對單克隆抗體HIF-1α進行檢測,按照試劑盒要求進行染色及組織標本制備,用顯微鏡對制備組織進行觀察,計數(shù)陽性染色細胞數(shù)。根據(jù)腫瘤細胞染色強度及顯色比例,計算陽性細胞率,大于10%為陽性。
1.2.2 MiR-96表達檢測 將組織標本切成薄片,再研磨成粉末,用Trizol試劑按照Trizol試劑盒(Invitrogen公司)的說明提取總RNA,將RNA進行反轉錄,通過PCR定量檢測MiR-96的相對表達值,其正向引物:5′-TTT GGC ACT AGC ACA TT-3′;反向引物:5′-TTT GGC ACT AGC ACA TT-3′。引物序列長度腫瘤的分期是按照WHO以及國際婦產(chǎn)科協(xié)會(FIGO)的腫瘤分期標準。MiR-96表達以U6參數(shù),測得到△Ct值,△Ct=MiR-96平均Ct值-U6平均Ct值,而2-△△Ct就可以反應MiR-96的相對表達情況。
1.2.3Twist與Slug基因表達檢測 將組織標本切成薄片,再研磨成粉末,Trizol試劑盒(Invitrogen公司)提取組織RNA,根據(jù)Twist與Slug基因的序列編號來進行引物的設計,Twist上游引物序列:5′-ACG AGC TGG ACT CCA AGA TG-3′,下游引物序列:5′-GGC ACG ACC TCT TGA GAA TG-3′;Slug上游引物序列:5′-CCT GGT TGC TTC AAG GAC AC-3′,下游引物序列:5′-TCC ATG CTC TTG CAG CTC TC-3′,通過PCR定量檢測Twist與SlugmRNA的相對表達值。TwistmRNA相對表達水平=Twist拷貝數(shù)/β-actin拷貝數(shù),SlugmRNA相對表達水平=Slug拷貝數(shù)/β-actin拷貝數(shù)。
表1 HIF-1α在兩組婦女宮頸組織中的表達結果[n(%)]
1.3 統(tǒng)計學處理 采用數(shù)據(jù)處理軟件包為SPSS16.0,計量資料符合正態(tài)分布、方差齊性的數(shù)據(jù)用±s表示,組間比較采用t檢驗,計數(shù)資料用率表示,組間采用χ2檢驗,以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 HIF-1α在兩組婦女宮頸組織中的表達 HIF-1α在腫瘤組織中的陽性表達率為75.8%,在正常組織中的表達率為0%,兩組比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),詳細見表1。
2.2 MiR-96在兩組婦女宮頸組織中的相對表達值 MiR-96在正常組織的相對表達值為1.01±0.16,在腫瘤組織中為44.56±3.67,在腫瘤組織中的相對表達值遠遠高于正常組織,兩組進行比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);腫瘤組織Ⅰ期、Ⅱ期、Ⅲ期MiR-96相對表達值分別為15.43±2.01、84.42±7.65、456.32±37.32,兩兩比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
2.3Twist與Slug基因在兩組婦女宮頸組織中的表達Twist基因在正常組織的相對表達量為(2.02±0.46)×10-3,在腫瘤組織中為(6.54±1.23)×10-3,在腫瘤組織中的相對表達量遠遠高于正常組織,兩組進行比較差異有統(tǒng)計學意義(t=38.29,P<0.05);Slug基因在正常組織的相對表達量為(1.32±0.34)×10-2,在腫瘤組織中為(4.68±1.02)×10-2,在腫瘤組織中的相對表達量遠遠高于正常組織,兩組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=34.87,P<0.05)。
宮頸癌是一種在中老年婦女中高發(fā)的癌癥疾病,發(fā)生率有逐年上升的趨勢。HPV病毒感染一直以來被公認為是導致宮頸癌的主要因素,針對此類病毒的疫苗研制取得了重大進展[4]。但隨著人們對宮頸癌疾病研究的不斷深入,發(fā)現(xiàn)只有少數(shù)的病毒感染者會最終發(fā)展為宮頸癌,提示宮頸癌的發(fā)生除了HPV感染導致以外,環(huán)境致癌因素與遺傳因素也可能是導致宮頸癌發(fā)生的主要因素。遺傳因素并不直接導致腫瘤的發(fā)生,但它會改變個體的易感性,并且在特殊的條件下被激發(fā)。
大量研究報道,MiR-96[5]、HIF-1α[6]、Twist與Slug基因表達升高可使患宮頸癌的概率大大提高,宮頸癌發(fā)生與上述基因的表達有很大的關系[7]。MiR-96可能通過調(diào)控參與基因的信號通路,從而導致癌細胞的侵襲能力增強,在這個過程當中MiR-96發(fā)揮了與癌基因類似的功能,間接參與了宮頸癌的發(fā)生[8];Twist與Slug基因,對宮頸癌的發(fā)生、侵襲,甚至耐藥都有著很大影響,它們的過度表達與乳腺癌、卵巢癌、胃癌等腫瘤的發(fā)生、發(fā)展關系密切[9]。HIF-1α在腫瘤的發(fā)生中起著不可忽視的作用[10]。腫瘤細胞的快速生長勢必會造成腫瘤組織缺氧,HIF-1α在應付組織缺氧方面起著重大作用[11-12],缺氧情況下HIF-1α上調(diào),引起多血管的形成[13-14],細胞適應缺氧的環(huán)境導致腫瘤細胞的繼續(xù)生長、擴散[15]。本研究通過對MiR-96、HIF-1α、Twist與Slug等易感基因在宮頸癌組織及正常組織中的表達水平測定,結果顯示:HIF-1α在正常組織中基本沒有陽性表達,而在腫瘤組織中陽性表達率遠遠高于正常組織;MiR-96在腫瘤組織中的相對表達值遠遠高于正常組織,并且隨著疾病的進展表達量顯著提高;Twist與Slug基因在腫瘤組織中的相對表達量遠遠高于正常組織;兩組進行比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
綜上所述,MiR-96、HIF-1α、Twist與Slug等易感基因均與腫瘤的發(fā)生有關,甚至可能是導致宮頸癌發(fā)生的重要因素。有必要對上述基因進行進一步的研究,為臨床婦科腫瘤的診斷、治療提供一定的科學依據(jù)。
[1] 張銘,張一鳴,左偉,等.干細胞標志物SALL4在宮頸癌中的表達研究[J].重慶醫(yī)學,2014,43(3):285-287.
[2] Lei T,Mao WM,Lei TH,et al.Incidence and mortality trend of cervical cancer in 11cancer registries of China[J].Chin J Cancer Res,2011,23(1):10-14.
[3] Duggan C,Coronado G,Martinez J,et al.Cervical cancer screening and adherence to follow-up among Hispanic women study protocol:a randomized controlled trial to increase the uptake of cervical cancer screening in Hispanic women[J].BMC Cancer,2012,12(1):170.
[4] Hu SY,Hong Y,Zhao FH,et al.Prevalence of HPV infection and cervical intraepithelial neoplasia and attitudes towards HPV vaccination among Chinese women aged 18-25in Jiangsu province[J].Chin J Cancer Res,2011,23(1):25-32.
[5] Meng F,Zhao X,Zhang S.Expression and significance of SHP-2in human papillomavirus infected cervical cancer[J].J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci,2012,32(2):247-251.
[6] 徐曉英,湯春輝,薛曉玲.高危型HPV、p16、COX-2在宮頸癌中的表達及臨床意義[J].重慶醫(yī)學,2011,40(12):1199-1201,1204.
[7] Wang D,Wu M,F(xiàn)eng FZ,et al.Pretreatment neutrophilto-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte ratios do not predict survival in patients with cervical cancer treated with neoadjuvant chemotherapy and radical hysterectomy[J].Chin Med J,2013,126(8):1464-1468.
[8] Chen HW,Liu SS,Miao LF,et al.Inhibitory effect of lanthanum chloride on migration and invasion of cervical cancer cells[J].J Rare Earth,2013,31(1):94-100.
[9] Liu N,Zhao LJ,Li XP,et al.Histone deacetylase inhibitors inducing human cervical cancer cell apoptosis by decreasing DNA-methyltransferase 3B[J].Chin Med J,2012,125(18):3273-3278.
[10] Ma YY,Cheng XD,Zhou CY,et al.Value of P16expression in the triage of liquid-based cervical cytology with atypical squamous cells of undetermined significance and low-grade squamous intraepithelial lesions[J].Chin Med J,2011,124(16):2443-2447.
[11] Li B,Li W,Sun YC,et al.Nerve plane-sparing radical hysterectomy:a simplified technique of nerve-sparing radical hysterectomy for invasive cervical cancer[J].Chin Med J,2011,124(12):1807-1812.
[12] Chadza E,Chirwa E,Maluwa A,et al.Factors that contribute to delay in seeking cervical cancer diagnosis and treatment among women in Malawi[J].Health,2013,4(11):1015-1022.
[13] Wu S,Lu S,Tao H,et al.Correlation of polymorphism of IL-8and MMP-7with occurrence and lymph node metastasis of early stage cervical cancer[J].J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci,2011,31(1):114-119.
[14] Li K,Jin X,F(xiàn)ang Y,et al.Correlation between physical status of human papilloma virus and cervical carcinogenesis[J].J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci,2012,32(1):97-102.
[15] 李嬋玉.MMP-9及其相關因子與宮頸癌[J].重慶醫(yī)學,2012,41(33):3545-3547.