蔡 佳,章述軍,秦 波
(重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院感染科 400016)
藥物性肝內(nèi)膽汁淤積是臨床最常見(jiàn)膽汁淤積的原因之一。Cajal間質(zhì)細(xì)胞 (interstitial cells of Cajal,ICC)是胃腸道的起搏細(xì)胞,它產(chǎn)生和傳導(dǎo)慢波引起平滑肌自發(fā)節(jié)律性收縮,在調(diào)節(jié)胃腸道蠕動(dòng)方面起著重要作用[1]。同時(shí)大量研究證實(shí)ICC也存在于胃腸道以外的器官如膽道系統(tǒng)中[2]。大黃素(emodin)是中藥大黃的主要有效成分,具有多種藥理作用。有實(shí)驗(yàn)表明大黃素具有保肝、降黃疸作用[3],同時(shí)大黃素也能顯著增加結(jié)腸ICC的數(shù)量從而發(fā)揮其調(diào)節(jié)腸道蠕動(dòng)和導(dǎo)瀉的作用。已有研究證實(shí):膽囊存在Cajal樣細(xì)胞,它在調(diào)節(jié)膽道運(yùn)動(dòng)方面具有重要的作用。膽道系統(tǒng)中ICC是否也能調(diào)節(jié)膽道的蠕動(dòng),在膽汁淤積中起重要作用,目前尚不清楚。近來(lái)研究表明ICC能特異性表達(dá)c-kit受體,并且c-kit信號(hào)途徑對(duì)于ICC的發(fā)生、發(fā)育具有重要作用,持續(xù)的c-kit信號(hào)刺激ICC形成和維持所必須的條件,c-kit敲除可導(dǎo)致ICC缺失,c-kit陽(yáng)性是ICC的主要鑒定標(biāo)準(zhǔn)之一。本研究試圖通過(guò)膽汁淤積模型及大黃素干預(yù)模型中膽管內(nèi)c-kit陽(yáng)性ICC數(shù)量變化及其對(duì)肝功能生化指標(biāo)的影響,探求大黃素對(duì)肝內(nèi)膽汁淤積的治療作用與膽管ICC數(shù)量的關(guān)系。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 選用雄性SD大鼠,體質(zhì)量200g,共15只,采用簡(jiǎn)單隨機(jī)法均分為3組,即對(duì)照組、藥物性肝內(nèi)膽汁淤積模型組(模型組)及大黃素干預(yù)組(大黃素組)。
1.2 模型建立及標(biāo)本采集
1.2.1 藥物性肝內(nèi)膽汁淤積模型及大黃素干預(yù)模型建立 參照蔣峻華等[4]的方法建立模型組,將異硫氰酸萘酯(α-naphthyl isothiocyanate,ANIT)用橄欖油配制成20g/L,大黃素用5g/L羧甲基纖維素鈉配制成4g/L的混懸液備用。將4%ANIT,予大鼠灌胃,首劑為15mg/100g,24h后再予5mg/100g。48h后,SD大鼠肝內(nèi)膽汁淤積型肝炎的模型建成,在病理學(xué)上與臨床上的藥物誘導(dǎo)的肝內(nèi)膽汁淤積型肝炎相似。對(duì)照組則予等容量的生理鹽水灌胃。造模4~6h后大黃素組按20mg·kg-1·d-1劑量給予大黃素灌胃,均為1次/天,連續(xù)治療7d,第7天給藥后4h,分離血清并留取肝臟標(biāo)本[5]。對(duì)照組則仍給予等體積等滲鹽水灌胃。對(duì)照組、模型組及大黃素組均在7d后取標(biāo)本。造模結(jié)束后光鏡下觀察可見(jiàn):肝細(xì)胞內(nèi)見(jiàn)膽色素沉積,毛細(xì)膽管內(nèi)膽汁淤積,匯管區(qū)較多炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。肝功能生化指標(biāo)可見(jiàn):血清丙氨酸基轉(zhuǎn)移酶(alanine transaminase,ALT)、堿性磷酸酶 (alkaline phosphatase,ALP)、總膽紅素(direct bilirubin,TBIL)、γ-谷 氨 酰 轉(zhuǎn) 肽 酶 (γ-glutamyl transpeptidaser,γ-GT)顯著高于對(duì)照組,證明肝內(nèi)膽汁淤積型模型造模成功。
1.2.2 標(biāo)本采集 實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,用水合氯醛(250mg/kg)腹腔麻醉后開(kāi)腹,然后抽取心臟血及摘眼球取血,留取相應(yīng)肝組織塊,分別以10%福爾馬林及2%戊二醛液浸泡固定,血標(biāo)本抗凝、離心后取上清液保存。肝組織固定,石蠟包埋,常規(guī)蘇木精-伊紅(HE)染色,光學(xué)顯微鏡下觀察病理變化。
1.2.3 生化指標(biāo)檢測(cè) 用日立7600生化自動(dòng)檢測(cè)儀檢測(cè),移液器將0.5mL血清移入加樣管中,系統(tǒng)自動(dòng)取樣分析,獲取血清標(biāo)本檢測(cè) ALT、ALP、D-Bil、γ-GT水平。
1.3 膽管ICC免疫組織化學(xué)及反轉(zhuǎn)錄PCR(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)法
1.3.1 免疫組織化學(xué)鑒定膽道ICC分布 動(dòng)物禁食6h后,頸椎脫臼處死。剖腹立即取膽總管及部分肝內(nèi)膽管,PBS(pH=7.4)沖凈腸內(nèi)容物,行冰凍切片,厚7μm。切片用丙酮(4℃)固定10min,PBS洗5min×3次。免疫組織化學(xué)步驟參照SABC免疫組織化學(xué)試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。其中ACK2抗體(5mg/L)于4℃孵育過(guò)夜,免疫反應(yīng)產(chǎn)物顯示為棕黃色。免疫組織化學(xué)結(jié)果判定:c-kit陽(yáng)性染色為棕黃色,定位于肌層,表現(xiàn)為以胞體為中心的向相反方向延伸的2個(gè)或2個(gè)以上長(zhǎng)突起,常常與鄰近的ICC突起相互連接構(gòu)成網(wǎng)絡(luò)[6]。采用MetaMorph/DP10/BX41顯微圖像分析系統(tǒng)分析結(jié)果,以積分光密度(integral optical density,IOD)代表蛋白顆粒密度。
1.3.2 膽管總mRNA提取及RT-PCR 動(dòng)物禁食6h后,頸椎脫臼處死。取膽總管及肝內(nèi)膽管,PBS漂洗干凈。用總RNA抽提試劑Trizol提取總核糖核酸(RNA),再應(yīng)用Dynbeads dT(25)從所提取的總RNA中提取出總信使核糖核酸(mRNA),其后逆轉(zhuǎn)錄成互補(bǔ)脫氧核糖核酸(cDNA)。c-kit的擴(kuò)增條件為:94 ℃,5min;94 ℃,15s;50 ℃,60s;72 ℃,60s 40個(gè)循環(huán),最后72℃,8min。c-kit上游引物序列:5′-GTA CAT AGA AAG AGA CGT GAC TCC T-3′,下游引物序列:5′-GAG TTG ACC CTC ACG GAA TGG TCC A-3′,擴(kuò)增產(chǎn)物為548bp。β-actin上游引物序列5′-GGC TAC AGC TTC ACC ACC AC-3′,下游引物序列:5′-TAC TCC TGC TTG CTG ATC CAC-3′,擴(kuò)增產(chǎn)物為285bp。擴(kuò)增產(chǎn)物(3μL)在12%瓊脂糖凝膠中電泳分離,溴化乙錠染色觀察DNA條帶。
1.3.3 結(jié)果分析 使用德國(guó)Labimage圖像分析系統(tǒng)對(duì)電泳結(jié)果進(jìn)行量化分析,計(jì)算各個(gè)組別的c-kit/β-actin的比值作為mRNA表達(dá)的相對(duì)定量。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS19.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料用±s表示,并用完全隨機(jī)設(shè)計(jì)方差分析進(jìn)行統(tǒng)計(jì)檢驗(yàn),檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 藥物性肝內(nèi)膽汁淤積模型建立 模型組 ALT、TBIL、ALP和γ-GT水平較對(duì)照組相比明顯升高(F=34.88,P<0.05;F=51.86,P<0.05;F=27.25,P<0.05;F=28.08,P<0.05),大黃素組上述指標(biāo)水平較對(duì)照組也有明顯升高,但比模型組低,組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=34.88,P<0.05;F=51.86,P<0.05;F=27.25,P<0.05;F=28.08,P<0.05),見(jiàn)表1。
病理組織觀察:光鏡下,對(duì)照組:肝小葉結(jié)構(gòu)完整,肝細(xì)胞形態(tài)正常。無(wú)變性壞死、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)和纖維組織增生等改變。模型組:肝細(xì)胞內(nèi)見(jiàn)膽色素沉積,中央靜脈淤血,可見(jiàn)肝細(xì)胞大量混濁腫脹、空泡變性,灶性壞死,匯管區(qū)較多炎性細(xì)胞浸潤(rùn)及膽管上皮細(xì)胞增生。表明實(shí)驗(yàn)大鼠服用ANIT后,成功構(gòu)建肝內(nèi)膽汁淤積型肝炎模型。
表1 不同組別肝功能相關(guān)生化指標(biāo)比較(±s,n=5)
表1 不同組別肝功能相關(guān)生化指標(biāo)比較(±s,n=5)
a:P<0.05,與對(duì)照組比較;b:P<0.05,與模型組比較。
組別 ALT(U/L) TBIL(μmol/L) ALP(U/L) γ-GT(U/L 8.7±1.1 54.1±13.5 312.2±73.3 2.2±0.6模型組 398.2±87.4a465.0±90.7a 680.1±82.6a7.2±1.3a大黃素組 280.5±97.2ab 323.0±65.5ab 412.0±87.4ab 4.4±1.1)對(duì)照組ab
圖1 不同組別膽管c-kit mRNA表達(dá)
圖2 不同組別膽管c-kit mRNA表達(dá)對(duì)比分析圖
2.2 RT-PCR法檢測(cè)c-kit mRNA的表達(dá)水平 結(jié)果顯示,對(duì)照組、模型組及大黃素組位于548bp處的條帶均有表達(dá)(圖1)。3組c-kit mRNA表達(dá)的相對(duì)量分別為0.98±0.195,0.47±0.064,0.86±0.120(圖2)。β-actin mRNA的擴(kuò)增片段為285bp。模型組c-kit mRNA表達(dá)量明顯低于大黃素組及對(duì)照組(P<0.05)。大黃素組低于對(duì)照組,但組間無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)。
2.3 免疫組織化學(xué)法檢測(cè)大鼠膽管中c-kit蛋白的表達(dá)水平 免疫組織化學(xué)結(jié)果顯示c-kit主要在肌層表達(dá),呈棕黃色,表現(xiàn)為以胞體為中心的向相反方向延伸的2個(gè)或2個(gè)以上長(zhǎng)突起,常常與鄰近的ICC突起相互連接構(gòu)成網(wǎng)絡(luò)[6]。對(duì)照組、模型組、大黃素組c-kit免疫組織化學(xué)表達(dá)量IOD比較c-kit表達(dá)量分別為34.2±12.86、10.5±2.32、28.7±9.86,模型組明顯低于對(duì)照組及大黃素組(P<0.05),見(jiàn)圖3。
圖3 大鼠膽管c-kit免疫組織化學(xué)結(jié)果(×200)
藥物性肝內(nèi)膽汁淤積的發(fā)病率較高,其病因和發(fā)病機(jī)制尚不清楚,臨床療效不理想[7]。本實(shí)驗(yàn)試圖通過(guò)藥物性膽汁淤積模型闡明藥物性肝內(nèi)膽汁淤積與膽管ICC的關(guān)系及大黃素改善肝內(nèi)膽汁淤積的機(jī)制。
ICC是胃腸道的起搏細(xì)胞,它產(chǎn)生和傳導(dǎo)慢波引起平滑肌自發(fā)節(jié)律性收縮,在調(diào)節(jié)胃腸道蠕動(dòng)方面起著重要作用[8]。同時(shí),ICC在膽囊、膽囊管、肝內(nèi)膽管、膽總管和十二指腸等多處存在,并參與調(diào)控膽管的自主節(jié)律性運(yùn)動(dòng)[9],而膽道梗阻動(dòng)物模型中膽囊ICC形態(tài)、結(jié)構(gòu)與對(duì)照組相比有明顯異常[10],因此本研究推測(cè)膽道ICC在調(diào)節(jié)膽道運(yùn)動(dòng)及肝內(nèi)膽汁淤積中可能發(fā)揮重要作用。近來(lái)研究表明ICC能特異性表達(dá)c-kit受體,持續(xù)的c-kit信號(hào)刺激是小鼠胃腸道ICC形成和維持的必須要素[11],因此本研究選擇c-kit為切入點(diǎn)。本研究結(jié)果提示:模型組膽管ICC特異性c-kit mRNA及其蛋白表達(dá)較對(duì)照組明顯減少,提示藥物性膽汁淤積與膽管ICC減少有關(guān)。由此推測(cè)膽道系統(tǒng)內(nèi)的ICC在肝內(nèi)外膽道的運(yùn)動(dòng)調(diào)節(jié)及膽汁淤積形成中可能發(fā)揮重要作用。
大黃素為蒽醌類衍生物,是中藥大黃的主要有效單體,具有多種藥理作用[12-13]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示大黃素能明顯改善藥物性肝內(nèi)膽汁淤積大鼠血清中ALT、ALP、TBIL及γ-GT水平,與模型組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。已有研究證實(shí):大黃素在一定濃度范圍內(nèi)能顯著增加結(jié)腸ICC的數(shù)量,在一定程度上明顯促進(jìn)腸道的蠕動(dòng)[14]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:大黃素能明顯改善模型組相關(guān)生化指標(biāo)及膽汁淤積程度,同時(shí)大黃素干預(yù)后膽管c-kit表達(dá)量較對(duì)照組明顯下降,但其明顯高于模型組,提示大黃素作用后膽管內(nèi)c-kit陽(yáng)性ICC量較模型組明顯增多。因此,本研究推測(cè),膽管ICC與肝內(nèi)膽汁淤積有一定關(guān)系,膽管ICC減少可能與肝內(nèi)膽汁淤積形成有關(guān)。同時(shí),大黃素可能通過(guò)促進(jìn)膽管ICC數(shù)量相對(duì)增多或其對(duì)膽管ICC的保護(hù)作用而發(fā)揮其改善肝內(nèi)膽汁淤積的作用。
關(guān)于大黃素對(duì)膽管ICC影響的作用機(jī)制方面,目前研究比較多的是干細(xì)胞因子(stem cell factor,SCF)/c-kit信號(hào)途徑,該通路在ICC的生長(zhǎng)發(fā)育中起重要作用。SCF能劑量依賴性地促進(jìn)ICC的發(fā)育,并且在維持其表型中起重要作用。一旦去除SCF,則ICC會(huì)明顯減少[15-16]。因此,大黃素對(duì)于膽管ICC的影響,可能就是通過(guò)SCF/c-kit途徑及其下游通路,對(duì)肝內(nèi)膽汁淤積起治療作用。該信號(hào)通路是本研究下一步的主要研究方向。
綜上所述,膽管ICC與藥物性肝內(nèi)膽汁淤積形成過(guò)程可能存在密切關(guān)系,膽管ICC可能成為肝內(nèi)膽汁淤積藥物治療的新靶點(diǎn)。為進(jìn)一步證實(shí)本研究的設(shè)想,目前本實(shí)驗(yàn)組正進(jìn)行c-kit阻斷及ICC缺失動(dòng)物模型及相應(yīng)膽汁淤積模型膽管ICC數(shù)量的研究,以期進(jìn)一步闡明肝內(nèi)膽汁淤積與ICC的關(guān)系。
[1] Huizinga JD,Chen JH,Mikkelsen HB,et al.Interstitial cells of Cajal,from structure to function [J].Front Neurosci,2013,7:43.
[2] Pasternak A,Gajda M,Gil K,et al.Evidence of interstitial Cajal-like cells in human gallbladder[J].Folia Histochem Cytobiol,2012,50(4):581-585.
[3] Lee BH,Huang YY,Duh PD,et al.Hepatoprotection of emodin and Polygonum multiflorum against CCl(4)-induced liver injury[J].Pharm Biol,2012,50(3):351-359.
[4] 蔣峻華,熊早生,楊欣,等.α-萘異硫氰酸酯實(shí)驗(yàn)性黃疸模型及其在中藥研究中的應(yīng)用[J].中成藥研究,1981(4):39-41.
[5] 周方,許紅梅.大黃素對(duì)肝內(nèi)膽汁淤積大鼠P-gp表達(dá)的影響[J].中國(guó)中藥雜志,2010,35(7):908-911.
[6] 張紅軍,于彬,梅峰,等.豚鼠Oddi括約肌內(nèi)Cajal樣細(xì)胞及NOS表達(dá)陽(yáng)性神經(jīng)元的分布[J].消化外科,2006,5(3):201-205.
[7] Rutherford AE,Pratt DS.Cholestasis and cholestatic syndromes[J].Curr Opin Gastroenterol,2006,22(3):209-214.
[8] Sanders KM,Koh SD,Ward SM.Interstitial cells of cajal as pacemakers in the gastrointestinal tract[J].Annu Rev Physiol,2006,68:307-343.
[9] Huizinga JD,F(xiàn)aussone Pellegrini MS.About the presence of interstitial cells of Cajal outside the musculature of the gastrointestinal tract[J].J Cell Mol Med,2005,9(2):468-473.
[10] 李湘楚,肖勇,余保平,等.膽道梗阻對(duì)膽囊動(dòng)力及Cajal間質(zhì)細(xì)胞形態(tài)的影響[J].中華消化雜志,2011,31(6):396-400.
[11] Heinrich MC,Rubin BP,Longley BJ,et al.Biology and genetic aspects of gastrointestinal stromal tumors:KIT activation and cytogenetic alterations[J].Hum Pathol,2002,33(5):484-495.
[12] Jung HA,Chung HY,Yokozawa T,et al.Alaternin and emodin with hydroxyl radical inhibitory and/or scavenging activities and hepatoprotective activity on tacrine-induced cytotoxicity in HepG2cells[J].Arch Pharm Res,2004,27(9):947-953.
[13] Ho TY,WU SL,Chert JC,et al.Emodin blocks the SARS coronavirus spike protein and angiotensin-converting enzyme 2interaction[J].Antiviral Res,2007,74(2):92-101.
[14] Peng C,Wang L,Wang YH.The toxicity of aconitine,emodin on ICC cell and the antagonist effect of the compatibility[J].Eur J Drug Metab Pharmacokinet,2009,34(3/4):213-220.
[15] Rich A,Miller SM,Gibbons SJ,et al.Local presentation of steel factor increases expression of c-kit immunoreactive interstitial cells of Cajal in culture[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2003,284(2):G313-320.
[16] Nakahara M,Isozaki K,Vanderwinden JM,et al.Dose-dependent and time-limited proliferation of cultured murine interstitial cells of Cajal in response to stem cell factor[J].Life Sci,2002,70(20):2367-2376.