郭海英,沈 文,陳冬梅,陳凱麗,張曉麗,高寶德,孫延鳴*
(1.石河子大學(xué)動物科技學(xué)院,石河子832003;2.石河子大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,石河子832003)
新疆天山地帶的野生盤羊是國家二級保護(hù)動物,巴什拜羊也是新疆特有的地方優(yōu)良品種,二者都具有很強(qiáng)的適應(yīng)性和抗病能力。長期調(diào)查發(fā)現(xiàn),其幼齡的雜交后代羊的抗病力卻大大降低,非常易感呼吸道疾?。?-2],研究表明主要與綿羊肺炎支原體感染有關(guān)[3]。盤羊的雜交后代可能存在先天性免疫能力下降,其可能與羊的疾病抗性基因變異有關(guān)[4]。
殺菌通透性增加蛋白基因(bactericidal/permeability-increasing protein gene,BPI)屬于抗菌肽或蛋白類基因,其編碼產(chǎn)物有殺滅革蘭陰性菌、中和內(nèi)毒素、對中性粒細(xì)胞的調(diào)理作用等活性,在動物機(jī)體先天免疫中起重要的作用,被很多學(xué)者作為豬牛等的抗病候選基因[5-6]。有學(xué)者發(fā)現(xiàn)BPI有抑制促炎細(xì)胞因子IL-6、TNF-α、IL-8等的作用,促進(jìn)抗炎因子如IL-10的表達(dá),減輕炎癥反應(yīng)[7-8]。研究表明肺炎支原體感染可以誘導(dǎo)多種細(xì)胞因子產(chǎn)生,有學(xué)者建立小鼠支原體肺炎模型檢測其細(xì)胞因子表達(dá)水平,表明IL-6、IL-8、TNF-α、IFN-r等參與其致病過程,在肺部防御與炎癥中起重要的作用[9-10]。前期研究中,作者發(fā)現(xiàn)巴什拜羊和盤羊雜交羊的BPI基因N端活性區(qū)域有3處核苷酸差異,并導(dǎo)致3處氨基酸改變。為進(jìn)一步研究BPI蛋白的免疫調(diào)節(jié)功能,本試驗建立了MO的盤羊雜交羊疾病模型,利用真核表達(dá)的重組BPI蛋白(r BPI)進(jìn)行治療試驗,測定外周血中IL-8、IL-10、TNF-α及IFN-γ變化規(guī)律,并對其肺組織的病理切片進(jìn)行病理評分,為研究BPI基因在MO的致病機(jī)制研究及治療提供一定的實驗基礎(chǔ)。
綿羊肺炎支原體菌株(Mycoplasma Ovipneumoniae,MO)(由石河子大學(xué)動物科技學(xué)院預(yù)防獸醫(yī)實驗室王靜梅高級實驗師提供,與Y-98標(biāo)準(zhǔn)株的相似性為98%);12只盤羊雜交羊(盤羊♂×巴什拜羊♀)及6只巴什拜羊由塔城裕民縣提供,均為2~3月齡,體重為10~15 kg,MO ELISA抗體檢測均為陰性。
綿羊肺炎支原體專用培養(yǎng)基(蘭州獸醫(yī)研究所儲岳峰研究員贈予);MO ELISA診斷試劑盒(美國ADL公司);r BPI為巴什拜羊重組BPI蛋白(石河子大學(xué)動物科技學(xué)院生化實驗室制備)[11];綿羊IL-8、IL-10、TNF-α及IFN-γELISA試劑盒(上海藍(lán)基(Blue Gene)公司)。
1.3.1 試驗羊分組、感染及r BPI注射 培養(yǎng)綿羊肺炎支原體,人工感染按參考文獻(xiàn)[12]的方法采用氣管內(nèi)注射。感染時所使用的MO濃度為CCU=106·m L-1,2 m L·只-1,試驗全程中飼喂均不添加抗生素。在感染MO后的第4天開始,C組羊每天注射rBPI 150 mg·只-1(真核表達(dá)的rBPI,濃縮后濃度為74.54 mg·m L-1),A、B組羊注射同劑量的生理鹽水。在感染的第0、2、5、7、14、21天,頸靜脈采血分離血清,試驗結(jié)束后宰殺綿羊進(jìn)行剖檢。試驗羊分組、感染及重組蛋白質(zhì)注射的具體情況見表1。
表1 試驗設(shè)計Table 1 The experimental design
1.3.2 臨床觀察與病原鑒定 每天定點(diǎn)測量記錄體溫,并觀察臨床癥狀,直至試驗結(jié)束。試驗結(jié)束后宰殺所有試驗羊,檢查肺部病變。在感染前和感染2周后,采血分離血清,使用MO ELISA診斷試劑盒檢測抗體水平,按試劑盒說明書操作。同時從每組隨機(jī)抽取2只個體,采用無菌棉拭子鼻腔采樣,接種于支原體專用培養(yǎng)基培養(yǎng),在5%CO237℃培養(yǎng)4 d,培養(yǎng)基由粉紅轉(zhuǎn)為黃色為陽性,并進(jìn)行葡萄糖發(fā)酵試驗、洋地黃皂苷試驗等理化特性鑒定[13]。
1.3.3 人工感染前后血清細(xì)胞因子的ELISA檢測在感染前(第0天)及感染后第2、5、7、14及21天,用普通采血管采集所有羊的靜脈血,37℃傾斜放置2 h后3 000 r·min-1離心15 min,取上清,-20℃保存?zhèn)溆谩⒄誆LISA試劑盒說明書檢測細(xì)胞因子IL-8、IL-10、TNF-α及IFN-γ的濃度。
1.3.4 標(biāo)本的固定染色及組織病理學(xué)評分 各組羊宰殺之后,取每只羊的左右肺組織常規(guī)制備石蠟切片、HE染色,光鏡下觀察組織學(xué)變化,參照張慧等對急性支原體肺炎動物模型的組織病理學(xué)評分系統(tǒng)[14],以0~26分的組織病理學(xué)評分來確定肺部的炎癥反應(yīng)程度,評分包括支氣管/細(xì)支氣管周圍浸潤部位的百分比、支氣管/細(xì)支氣管管腔炎性細(xì)胞浸潤的多少、支氣管/細(xì)支氣管管腔炎性滲出的嚴(yán)重程度、血管周圍炎性細(xì)胞浸潤的百分比、實質(zhì)性肺炎嚴(yán)重程度五方面。每一側(cè)肺的評分相加之后除以2而構(gòu)成每只動物的評分。
1.3.5 數(shù)據(jù)處理分析 采用SPSS 17.0軟件分析比較不同組羊細(xì)胞因子IL-8、IL-10、TNF-α及IFN-γ表達(dá)水平差異,以及每組病理評分的差異,結(jié)果以“±s”表示。
A組巴什拜羊在感染后2~3 d表現(xiàn)為食欲減退、體溫一過性升高(40~41℃),呼吸啰音,之后體溫恢復(fù)正常,無死亡病例,剖檢后肺表面有輕微出血點(diǎn)(圖2A);B組雜交羊體溫升高(40~41℃)并持續(xù)不下,有咳嗽、流漿液性鼻涕、嚴(yán)重呼吸啰音及腹瀉癥狀,死亡率為33%,剖檢胸膜有黃白色纖維素層附著,肺表面有不同程度的粉色肉變和肝變,有出血點(diǎn)、出血斑及表面凸出結(jié)節(jié)(圖2B)。C組雜交羊起初體溫升高、食欲減退、咳嗽癥狀,剖檢肺表面有出血點(diǎn)和出血斑(圖2C)。感染前后血清MO抗體ELISA檢測結(jié)果見圖1,測定OD值(與陰性對照OD值(NC)比較,>2NC+0.06為陽性)結(jié)果顯示陰性對照OD值為0.12,所以可得臨界值為0.3,人工感染前均為陰性,感染后血清MO抗體均呈陽性(圖1)。將鼻腔采集的棉拭子接種于培養(yǎng)基中,由粉紅轉(zhuǎn)為黃色,取培養(yǎng)物涂片姬姆薩染色鏡檢,可見球形及多形性支原體,接種于固體培養(yǎng)基,4 d后在顯微鏡下觀察呈典型支原體菌落,同時經(jīng)生化鑒定(表2),結(jié)果為MO,表明感染成功。
A組巴什拜羊表現(xiàn)為輕度病變,肺組織結(jié)構(gòu)清晰,局部視野肺間質(zhì)增寬,其間有淋巴細(xì)胞、巨噬細(xì)胞及淡粉色滲出液浸潤。細(xì)支氣管上皮排列尚規(guī)則,管腔的周圍有少量炎癥細(xì)胞浸潤(圖3A)。B組雜交羊均表現(xiàn)重度病變,其病變范圍廣泛,大部分視野可見肺間質(zhì)明顯變寬,壓迫肺間質(zhì)致使連成片,肺泡腔消失,間隔內(nèi)有大量淋巴細(xì)胞浸潤,細(xì)支氣管上皮破壞、脫落,管腔內(nèi)有明顯滲出,肺間質(zhì)毛細(xì)血管、支氣管旁小靜脈淤血突出(圖3B)。C組雜交羊表現(xiàn)為中度病變,肺泡間隔增寬較明顯,間隔內(nèi)有較多淋巴細(xì)胞、巨噬細(xì)胞浸潤,肺泡結(jié)構(gòu)部分破壞,細(xì)支氣管上皮增生,小血管周圍淋巴細(xì)胞浸潤(圖3C)。對3組綿羊肺部病理評分后,A組平均分為9.4,B組平均分19.9,C組平均分為12.8,三組評分結(jié)果差異見圖3D,B組評分與A、C組差異顯著(P<0.05、P<0.05)。
圖1 感染前后MO抗體水平檢測Fig.1 Serum anti-MO antibody levels after 2 weeks of infection
圖2 各組肺的肉眼病變觀察Fig.2 Lesion observation of lung in each group
表2 生化鑒定結(jié)果Table 2 Biochemical identification results in the three groups
人工感染前后各組羊的IL-8含量如表3所示,在感染后3個組的IL-8濃度均逐漸升高。在感染后第7天,C組IL-8濃度顯著低于A組(P<0.05);在第14—21天,B組極顯著高于A組(P<0.01)。B組IL-8呈持續(xù)增高,說明了炎癥程度嚴(yán)重,與其對應(yīng)的病理反應(yīng)存在相關(guān)性。
圖3 各組肺組織病變(HE 100×)及病理評分Fig.3 Pathological changes of lung(HE 100×)and histopathological scores in the three groups
表3 注射r BPI蛋白前后各組羊IL-8的濃度(±s)Table 3 Concentration of IL-8 of each group at pre-and post-injecting rBPI pg·mL-1
表3 注射r BPI蛋白前后各組羊IL-8的濃度(±s)Table 3 Concentration of IL-8 of each group at pre-and post-injecting rBPI pg·mL-1
同一行中,不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05);不同大寫字母表示差異極顯著(P<0.01)。下同In the same line,different lowercase letter superscripts indicate significantly different(P<0.05);different uppercase letters indicate the highly significant difference(P<0.01).The same as below
時間Time A組(BS、生理鹽水)Group A(BS,Saline)B組(AHS、生理鹽水)Group B(AHS,Saline)C組(AHS,r BPI蛋白)Group C(AHS,r BPI protein)第0天Day 0 131.14±12.18 124.52±11.04 118.68±7.11第2天Day 2 139.65±34.51 150.85±23.65 137.03±13.71第5天Day 5 184.67±8.38 178.30±14.18 171.68±16.44第7天Day 7 267.11±17.77a 248.22±10.40ab 220.60±13.46b第14天Day 14 218.64±19.33B 283.22±23.99A 250.35±34.69AB第21天Day 21 191.57±30.62B 297.54±23.87A 224.79±30.47B
IL-10含量如表4所示。在感染后第2—5天,3個組的IL-10含量升高;在第5天,C組顯著高于A組(P<0.05),極顯著低于B組(P<0.01);在感染后的第14天,C組IL-10極顯著低于A組(P<0.01),顯著高于B組(P<0.05);在第21天,C組顯著低于A組(P<0.05),極顯著高于B組(P< 0.01)。A、C組后期都趨向正常水平,利于機(jī)體恢復(fù)。
如表5所示,在感染MO后3個組的IFN-γ含量均逐漸升高(除A、C組第21天)。第14天,C組IFN-γ含量顯著高于A組(P<0.05);在第21天,C組顯著低于B組(P<0.05),但極顯著高于A組(P<0.01)。
表4 注射r BPI蛋白前后各組羊IL-10的濃度(±s)Table 4 Concentration of IL-10 of each group at pre-and post-injecting r BPI pg·m L-1
表4 注射r BPI蛋白前后各組羊IL-10的濃度(±s)Table 4 Concentration of IL-10 of each group at pre-and post-injecting r BPI pg·m L-1
時間Time A組(BS、生理鹽水)Group A(BS,Saline)B組(AHS、生理鹽水)Group B(AHS,Saline)C組(AHS,r BPI蛋白)Group C(AHS,rBPI protein)第0天Day 0 325.82±23.24 338.51±14.31 312.25±14.41第2天Day 2 353.05±20.12 348.68±19.98 334.95±26.73第5天Day 5 402.21±21.64Bb 502.41±20.16A 445.21±27.16Ba第7天Day 7 257.60±13.94 267.69±10.78 273.89±15.34第14天Day 14 285.82±14.49A 203.19±17.32Bb 236.96±21.91Ba第21天Day 21 306.15±22.09Aa 168.79±31.27Bc 263.03±29.36 Ab
表5 注射rBPI蛋白前后各組羊IFN-γ的濃度(±s)Table 5 Concentration of IFN-γof each group at pre-and post-injecting r BPI pg·m L-1
表5 注射rBPI蛋白前后各組羊IFN-γ的濃度(±s)Table 5 Concentration of IFN-γof each group at pre-and post-injecting r BPI pg·m L-1
時間Time A組(BS、生理鹽水)Group A(BS,Saline)B組(AHS、生理鹽水)Group B(AHS,Saline)C組(AHS,r BPI蛋白)Group C(AHS,rBPI protein)第0天Day 0 47.31±6.07 54.09±10.90 45.16±5.64第2天Day 2 57.85±3.55 61.11±11.17 56.86±4.24第5天Day 5 87.52±8.50 85.90±14.41 85.71±8.65第7天Day 7 97.34±10.91 105.74±8.60 100.08±10.43第14天Day 14 81.98±10.55b 130.42±13.89a 106.88±15.41a第21天Day 21 65.11±9.93B 136.06±23.32Aa 93.25±13.02Ab
如表6所示,在感染MO后TNF-α含量逐漸升高,在感染第14天,C組TNF-α顯著低于B組(P<0.05),但顯著高于A組(P<0.05);在第21天,C組的TNF-α顯著低于B組(P<0.05),但極顯著高于A組(P<0.01)。B組持續(xù)增高,說明炎癥程度較高,感染嚴(yán)重,相反A、C組后期逐漸降低說明利于機(jī)體恢復(fù)。
表6 注射r BPI蛋白前后各組羊TNF-α的濃度(±s)Table 6 Concentration of TNF-αof each group at pre-and post-injecting rBPI pg·mL-1
表6 注射r BPI蛋白前后各組羊TNF-α的濃度(±s)Table 6 Concentration of TNF-αof each group at pre-and post-injecting rBPI pg·mL-1
時間Time A組(BS、生理鹽水)Group A(BS,Saline)B組(AHS、生理鹽水)Group B(AHS,Saline)C組(AHS,r BPI蛋白)Group C(AHS,r BPI protein)第0天Day 0 152.02±13.53 162.52±8.71 146.19±13.36第2天Day 2 178.60±7.84 177.35±4.31 169.37±6.89第5天Day 5 196.37±11.73 203.96±22.25 194.17±8.51第7天Day 7 239.05±17.80 242.95±8.54 235.60±12.55第14天Day 14 223.13±8.33c 273.55±16.34a 240.52±17.67b第21天Day 21 182.58±6.71B 304.88±23.34Aa 265.29±18.16 Ab
近年來,BPI作為先天免疫中的一種免疫防御分子在感染性疾病中的作用倍受關(guān)注。BPI具有殺滅革蘭陰性菌、結(jié)合內(nèi)毒素,并能形成內(nèi)毒素中和分子和抗革蘭陰性細(xì)菌感染(GNB)的藥物,因此,被譽(yù)為“超級抗生素”[15-16],此外BPI還有促進(jìn)補(bǔ)體活化調(diào)理功能、抑制血管生成、抑制炎性介質(zhì)釋放、抗原蟲等作用[17-18]。前期研究已得到雜交羊和巴什拜羊的BPI序列有差異。為進(jìn)一步研究BPI對綿羊肺炎支原體的作用,本試驗以支原體肺炎的綿羊為疾病模型,選擇對MO不易感的巴什拜羊的r BPI蛋白來注射綿羊,動態(tài)檢測綿羊外周血中4種細(xì)胞因子變化,初步證實BPI對綿羊肺炎支原體有一定的治療作用。
人工感染巴什拜羊和雜交羊的試驗中,均能從3組羊血清中檢測到MO抗體,說明MO人工感染成功。A組巴什拜羊出現(xiàn)體溫一過性升高、咳嗽和流鼻液等較輕癥狀,剖檢癥狀不典型。而B組雜交羊有體溫升高且持續(xù)較久,咳嗽、流漿液性鼻涕、嚴(yán)重呼吸啰音及腹瀉癥狀,剖檢出現(xiàn)出血點(diǎn)、肉變和肝變。兩種羊臨床癥狀嚴(yán)重程度不同,可能是巴什拜羊較雜交羊?qū)O有抗性[8],與姜方配等[6]同時對巴什拜羊和雜交羊攻毒MO的癥狀相符。而這些羊的體溫表現(xiàn)差異較大,這與流行病學(xué)調(diào)查時基層獸醫(yī)反映許多發(fā)病羊在測體溫時體溫不高的情況相一致[19]。
研究表明,肺炎支原體感染后,是通過細(xì)胞因子的誘導(dǎo)作用,激活內(nèi)皮細(xì)胞和粒細(xì)胞,繼而調(diào)節(jié)黏附因子的合成及其在細(xì)胞表面的表達(dá),從而導(dǎo)致炎癥的發(fā)生,并認(rèn)為這些細(xì)胞因子可能是支原體肺炎感染的發(fā)病機(jī)制之一[20]。IL-8作為C-X-C趨化因子家族之一,人肺炎支原體感染時,巨噬細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞及人肺上皮A549細(xì)胞能分泌IL-8,引起胸膜滲出和肺的纖維素病變[4,21]。有研究表明,急性期支原體肺炎患兒的IL-8水平明顯升高,恢復(fù)期則降至正常水平[22]。本試驗中感染MO的雜交羊,在BPI治療后期IL-8有降低趨勢,濃度逐漸趨向正常水平,與其研究結(jié)果相一致。
IFN-γ為TH1型促炎細(xì)胞因子,能抑制病毒復(fù)制、增強(qiáng)巨噬細(xì)胞吞噬作用。在支原體肺炎病人中可以檢測到IFN-γ水平升高[23],我們的研究結(jié)果也與其相一致。在感染初期,3個組IFN-γ濃度都隨時間延長而濃度升高,其中對照組雜交羊(B組)在整個21 d的試驗期內(nèi)都是升高的。BPI治療后,C組雜交羊在第14天后開始有降低趨勢,且與不治療的B組差異極顯著。說明BPI可能調(diào)節(jié)IFN-γ,使其恢復(fù)到正常水平,促使機(jī)體向有利方面發(fā)展,這與高偉[24]觀察到感染支原體肺炎的大鼠在感染初期IFN-γ升高在恢復(fù)期降低的是一致的。
TNF-α是由活化的巨噬細(xì)胞和T細(xì)胞分泌的細(xì)胞因子,有誘導(dǎo)中性粒細(xì)胞的趨化作用和局部浸潤、吞噬和殺傷病原體,從而啟動炎癥反應(yīng)。有研究表明,感染支原體肺炎后TNF-α濃度升高,且與支原體肺炎的嚴(yán)重程度成正相關(guān)[25-27]。本研究結(jié)果表明,感染MO前期巴什拜羊和雜交羊血清中TNF-α濃度都升高,說明疾病發(fā)生嚴(yán)重。在BPI治療后期的雜交羊的TNF-α濃度降低,且明顯低于不治療的雜交羊,暗示治療組雜交羊癥狀減輕。而且治療后的病理評分低于不治療的,也說明治療后的雜交羊處于恢復(fù)期癥狀減輕。
IL-10是抗炎細(xì)胞因子,由TH2型細(xì)胞分泌,可作用于巨噬細(xì)胞抑制其分泌細(xì)胞因子,間接抑制TH1型細(xì)胞因子如IL-6、TNF-α等的過表達(dá)。有研究表明IL-10的分泌缺乏將導(dǎo)致各種炎癥過程,某些情況下其缺乏還將導(dǎo)致炎癥持續(xù)和不可逆的組織損傷[28]。本研究也證明了這點(diǎn),感染MO后三組羊的IL-10含量降低,且B組雜交羊呈現(xiàn)持續(xù)降低趨勢,加上B組的病理評分分?jǐn)?shù)顯著高于其他兩組,表明肺部損傷嚴(yán)重。但是BPI治療后C組雜交羊在14 d之后IL-10逐漸升高,相應(yīng)的病理評分也低于B組,這些數(shù)據(jù)可能暗示機(jī)體將向有利于機(jī)體的方面發(fā)展,這與馬慶慶等[22]在肺炎支原體患兒血清IL-10降低,而在恢復(fù)期雖然升高但仍低于正常值的結(jié)果相似。
注射r BPI蛋白后盤羊雜交羊的細(xì)胞因子水平與未注射的雜交羊相比有明顯差異,說明r BPI蛋白對易感的盤羊雜交羊具有一定的免疫調(diào)節(jié)及治療效果,為綿羊支原體肺炎的臨床治療和新藥的研發(fā)提供新的理論依據(jù)。
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