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    PI3K/Akt抑制劑對(duì)雞朊蛋白過表達(dá)DF-1細(xì)胞增殖、侵襲和凋亡的影響

    2015-03-07 08:05:20萬學(xué)瑞朱曼玲楊潤霞劉桂林
    畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào) 2015年10期
    關(guān)鍵詞:青霉素通路基因

    萬學(xué)瑞,朱曼玲,楊潤霞,劉桂林,劉 磊,吳 潤

    (甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,蘭州730070)

    PI3K/Akt信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路廣泛存在于細(xì)胞中,Akt是此通路中的一個(gè)關(guān)鍵分子,活性主要由PI3K的產(chǎn)物調(diào)控。胞外信號(hào)可以通過激活受體酪氨酸激酶(RTK)或G蛋白偶聯(lián)受體而激活PI3K,其產(chǎn)物使Akt磷酸化,p-Akt可在細(xì)胞質(zhì)或細(xì)胞核內(nèi)磷酸化多種蛋白質(zhì)分子,通過改變下游分子的磷酸化狀態(tài)參與細(xì)胞的生長、增殖和存活。PI3K/Akt信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路是抑制細(xì)胞凋亡,促進(jìn)細(xì)胞生長增殖的重要因素,使細(xì)胞維持周期運(yùn)行[1]。渥曼青霉素(wortmannin,WM)是絲狀真菌繩狀青霉(Penicillium funiculosum)的代謝產(chǎn)物,可特異性、不可逆的抑制PI3K活性,阻斷PI3K/Akt信號(hào)通路。

    細(xì)胞型朊蛋白(cellular prion protein,Pr PC)是由細(xì)胞自身基因編碼,普遍表達(dá)在真核細(xì)胞膜上的GPI錨定蛋白[2]。哺乳動(dòng)物細(xì)胞型朊蛋白錯(cuò)誤折疊形成異常癢病型朊蛋白(scrapie prion protein,Pr PSC)可致傳染性海綿狀腦病,但在非哺乳動(dòng)物體內(nèi)卻未見發(fā)?。?]。多項(xiàng)研究已證明哺乳動(dòng)物細(xì)胞型朊蛋白具有多種生理功能,參與調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化、凋亡、侵襲、黏附、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、銅離子代謝和氧化應(yīng)激等過程[4-10],但具體機(jī)制還不清楚。本課題組前期的研究發(fā)現(xiàn)雞細(xì)胞型朊蛋白(ChPr PC)表達(dá)及分布規(guī)律同哺乳動(dòng)物Pr PC相似[11],通過構(gòu)建雞細(xì)胞型朊蛋白過表達(dá)的雞成纖維(DF-1)穩(wěn)定細(xì)胞系(DF-1-PrP)證實(shí)其可促進(jìn)DF-1細(xì)胞黏附、增殖和侵襲,抑制其凋亡[12],進(jìn)一步應(yīng)用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測發(fā)現(xiàn)雞細(xì)胞型朊蛋白過表達(dá)DF-1細(xì)胞的Akt基因表達(dá)量明顯高于DF-1細(xì)胞,推測雞細(xì)胞型朊蛋白可能參與Akt的激活,進(jìn)而促進(jìn)細(xì)胞生長與抑制細(xì)胞凋亡[13]。為了證實(shí)這一推測,本研究擬利用渥曼青霉素阻斷PI3K/Akt信號(hào)通路,探討其對(duì)雞細(xì)胞型朊蛋白過表達(dá)DF-1細(xì)胞黏附、增殖、侵襲和凋亡的影響及其可能的作用機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 細(xì)胞 DF-1細(xì)胞、DF-1-Pr P細(xì)胞(Ch Pr PC過表達(dá)DF-1細(xì)胞)和DF-1-NC細(xì)胞(導(dǎo)入空表達(dá)載體pCDNA3.1的DF-1細(xì)胞),均由本實(shí)驗(yàn)室保存或構(gòu)建。

    1.1.2 主要試劑 胎牛血清(FBS,Hy Clone公司),鼠尾膠原(杭州生友生物技術(shù)有限公司);G418、DMEM、無血清培養(yǎng)基(GIBCO公司),渥曼青霉素(Alexis公司),噻唑藍(lán)(MTT)、臺(tái)盼藍(lán)(上海酶聯(lián)生化試劑有限公司),Annexin V-FICT/PI雙染細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(上海貝博生物公司),Transwell小室(Costar公司),牛血清白蛋白(BSA,西安依科生物技術(shù)有限公司),其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

    1.1.3 主要儀器 MyCyclerTMThermal Cycler EN-61010 PCR儀(美國BIO-RDA公司),Light Cycler 480Ⅱ熒光定量PCR儀(美國Roche公司);酶標(biāo)儀680(美國BIO-RAD公司),F(xiàn)ACSCalibur flow cytometer(美國BD公司)等。

    1.2 方法

    1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) DF-1-PrP、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞用含10%胎牛血清、青霉素(100 U·m L-1)和鏈霉素(100 U·m L-1)的DMEM培養(yǎng)基置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng),當(dāng)培養(yǎng)瓶中的細(xì)胞覆蓋率達(dá)到80%以上時(shí),0.25%胰蛋白酶消化傳代,傳3代穩(wěn)定后進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。

    1.2.2 黏附試驗(yàn) 將鼠尾膠原用6 mmol·L-1無菌乙酸配制成6.25 mg·L-1的溶液,50 μL·孔-1加入96孔培養(yǎng)板,4℃過夜制備基底膜,吸出孔中殘余液體,加入50μL無血清培養(yǎng)基37℃孵育30 min水化基底膜。將對(duì)數(shù)生長期的DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞,胰蛋白酶消化后,用培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞數(shù)為1×105·m L-1,100 μL·孔-1分別接種于包被鼠尾膠原的孔中,再加入渥曼青霉素使其終濃度分別為0、10、20、50、100、200 nmol·L-1,每組4個(gè)重復(fù),37℃5%CO2環(huán)境下培養(yǎng)細(xì)胞,以包被牛血清白蛋白(BSA)為對(duì)照。細(xì)胞培養(yǎng)1 h后,用PBS溶液小心的洗細(xì)胞3次,按照MTT比色法測定培養(yǎng)板各孔的光吸收值(A值),試驗(yàn)重復(fù)3次。應(yīng)用如下公式分別計(jì)算各組細(xì)胞的黏附率:黏附率(%)=[(處理組A值/BSA對(duì)照組A值)-1]×100%。

    1.2.3 侵襲試驗(yàn) 用6.25 mg·L-1鼠尾膠原溶液包被Transwell小室,4℃過夜風(fēng)干,吸出殘余液體,加入50μL無血清培養(yǎng)基,37℃孵育30 min。用0.25%的胰蛋白酶消化處于對(duì)數(shù)生長期的DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞,無血清培養(yǎng)液重懸細(xì)胞(1×105·m L-1)。在下室中加入400μL按1∶1混合的完全培養(yǎng)液和條件培養(yǎng)液(DF-1細(xì)胞生長至80%以上融合,換無血清培養(yǎng)液培養(yǎng)24 h后收集培養(yǎng)上清液,過濾除菌),上室中加入100μL細(xì)胞懸液,再加入渥曼青霉素使其終濃度分別為0、10、20、50、100、200 nmol·L-1,每組4個(gè)重復(fù),37℃5%的CO2環(huán)境中培養(yǎng)24 h后,棄培養(yǎng)基,擦凈上室細(xì)胞,取出Transwell用PBS洗2次,95%的乙醇溶液固定細(xì)胞15 min,風(fēng)干;加4 g·L-1的臺(tái)盼藍(lán)溶液染色20 min,PBS洗3次,倒置顯微鏡下隨機(jī)計(jì)數(shù)10個(gè)視野的細(xì)胞,取平均數(shù),試驗(yàn)重復(fù)3次。

    1.2.4 MTT法檢測細(xì)胞增殖 取對(duì)數(shù)生長期的DF-1-PrP、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞(1× 105·m L-1),100μL·孔-1接種96孔培養(yǎng)板中,加入渥曼青霉素使其終濃度分別為0、10、20、50、100、200 nmol·L-1,以DMEM培養(yǎng)液為空白對(duì)照,每組3個(gè)重復(fù)。細(xì)胞培養(yǎng)12、24、36、48、60 h后,每孔加入20μL MTT(5 mg·m L-1)溶液,置于CO2培養(yǎng)箱中孵育4 h后吸出孔內(nèi)液體,再加入150μL DMSO振蕩10 min。用酶標(biāo)儀檢測,讀取OD490nm處的吸光值。

    1.2.5 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡 在對(duì)數(shù)生長期的DF-1-PrP、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞中加入渥曼青霉素使其終濃度分別為0、10、20、50、100、200 nmol·L-1,作用24 h后,消化收集細(xì)胞(1× 107·m L-1),按Annexin V-FICT/PI雙染細(xì)胞凋亡檢測試劑盒說明書進(jìn)行操作,冷PBS洗細(xì)胞2次,加入200μL結(jié)合緩沖液重懸細(xì)胞,再加入10 μL Annexin V-FITC和5μL PI,輕搖混勻,孵育15 min;上述溶液中加入300μL結(jié)合緩沖液充分混勻,立即進(jìn)行流式細(xì)胞儀檢測。

    1.2.6 不同渥曼青霉素濃度下PRNP基因的轉(zhuǎn)錄量檢測 在對(duì)數(shù)生長期的DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞中加入渥曼青霉素使其終濃度分別為0、10、20、50、100 nmol·L-1,作用24 h后,收集細(xì)胞提取總RNA。利用本實(shí)驗(yàn)室建立的雞PrPC基因mRNA定量RT-PCR檢測方法,檢測PRNP基因mRNA表達(dá)量[13]。

    1.2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS17.0軟件One-Way分析(Anova)或t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,數(shù)據(jù)以±s表示,P<0.05,P<0.01為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 渥曼青霉素以劑量依賴方式抑制DF-1-PrP細(xì)胞黏附

    細(xì)胞黏附試驗(yàn)結(jié)果如表1所示,渥曼青霉素濃度為0 nmol·L-1時(shí),各細(xì)胞黏附率均最高,且DF-1-Pr P細(xì)胞黏附率比DF-1-NC細(xì)胞和DF-1細(xì)胞分別高26.04%和26.18%,差異極顯著(P<0.01),隨著渥曼青霉素濃度的升高,各細(xì)胞的黏附率均顯著下降。渥曼青霉素濃度10~50 nmol·L-1時(shí),DF-1-Pr P細(xì)胞黏附率極顯著(P<0.01)高于DF-1和DF-1-NC細(xì)胞;100 nmol·L-1時(shí),DF-1-Pr P細(xì)胞黏附率顯著(P<0.05)高于DF-1和DF-1-NC細(xì)胞;渥曼青霉素濃度達(dá)到200 nmol·L-1時(shí),DF-1-PrP、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞的黏附率無顯著差異;當(dāng)渥曼青霉素濃度200 nmol·L-1時(shí),3種細(xì)胞的黏附率分別被抑制了87.46%、72.65%和84.32%。

    2.2 渥曼青霉素以劑量依賴方式抑制DF-1-Pr P細(xì)胞侵襲

    細(xì)胞侵襲試驗(yàn)結(jié)果如表2所示,渥曼青霉素濃度為0 nmol·L-1時(shí),各細(xì)胞的侵襲穿膜細(xì)胞數(shù)最多,其侵襲力最強(qiáng),隨著渥曼青霉素濃度的升高,細(xì)胞的侵襲力顯著下降,但同一渥曼青霉素濃度下DF-1-Pr P細(xì)胞侵襲穿膜細(xì)胞數(shù)顯著高于DF-1-NC和DF-1細(xì)胞(P<0.05或P<0.01)。當(dāng)渥曼青霉素濃度高于100 nmol·L-1時(shí),DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞均不見侵襲穿膜細(xì)胞。

    表1 不同濃度渥曼青霉素對(duì)細(xì)胞黏附率的影響Table 1 Effects of different concentration wortmannin(WM)on cell adhesion rates %

    表2 不同濃度渥曼青霉素對(duì)細(xì)胞侵襲(侵襲細(xì)胞數(shù))的影響Table 2 Effects of different concentration wortmannin on cell invasion(Cell numbers of invasion)

    2.3 渥曼青霉素以劑量和時(shí)間依賴方式抑制DF-1-Pr P細(xì)胞增殖

    應(yīng)用MTT法檢測細(xì)胞的增殖,結(jié)果顯示(圖1),不加渥曼青霉素時(shí),DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞增殖活性均高于其渥曼青霉素處理的增殖活性;隨著渥曼青霉素濃度的增加和作用時(shí)間的延長,增殖抑制作用明顯增強(qiáng),呈現(xiàn)明顯的時(shí)效和量效關(guān)系。同時(shí)在渥曼青霉素濃度低于50 nmol·L-1時(shí),DF-1-Pr P細(xì)胞具有抗渥曼青霉素的能力,與DF-1-NC和DF-1細(xì)胞相比有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.01);而當(dāng)渥曼青霉素濃度大于50 nmol·L-1時(shí)其幾乎完全抑制了各細(xì)胞的增殖。

    圖1 不同渥曼青霉素濃度對(duì)細(xì)胞增殖的影響Fig.1 Effects of different concentration wortmannin on cell proliferation

    2.4 渥曼青霉素以劑量依賴方式促進(jìn)DF-1-Pr P細(xì)胞凋亡

    細(xì)胞經(jīng)Annexin-V-FITC/PI雙染后流式細(xì)胞儀檢測,結(jié)果顯示(圖2),在無渥曼青霉素處理時(shí),DF-1-Pr P細(xì)胞總凋亡率(5.96%)低于DF-1-NC細(xì)胞(10.27%)和DF-1細(xì)胞(13.85%)。隨著渥曼青霉素濃度的增加,各細(xì)胞的總凋亡率均升高,而且呈現(xiàn)一定的劑量效應(yīng)關(guān)系;渥曼青霉素濃度低于20 nmol·L-1以下時(shí),對(duì)各細(xì)胞的凋亡率影響較小,當(dāng)渥曼青霉素濃度高于50 nmo·L-1時(shí),渥曼青霉素濃度對(duì)各細(xì)胞的凋亡率影響非常大。在同一渥曼青霉素濃度下,DF-1-PrP細(xì)胞的凋亡率低于DF-1-NC和DF-1細(xì)胞;尤其渥曼青霉素濃度為100、200 nmol·L-1時(shí),DF-1-NC和DF-1細(xì)胞幾乎全部凋亡,但DF-1-Pr P細(xì)胞仍有56.63%和15.54%的細(xì)胞存活,具有抗渥曼青霉素的能力。

    圖2 不同濃度渥曼青霉素對(duì)細(xì)胞凋亡的影響Fig.2 Effects of different concentration wortmannin on cell apoptosis

    2.5 不同渥曼青霉素濃度下PRNP基因的轉(zhuǎn)錄量分析

    利用本實(shí)驗(yàn)室建立的雞PRNP基因m RNA實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR檢測方法,檢測DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞PRNP基因轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)量,結(jié)果顯示(圖3),加入渥曼青霉素時(shí)各細(xì)胞PRNP基因的mRNA拷貝數(shù)均出現(xiàn)變化;隨著渥曼青霉素濃度的增加,PRNP基因的mRNA拷貝數(shù)呈現(xiàn)出下降的趨勢。在同一渥曼青霉素濃度下,DF-1-PrP細(xì)胞PRNP基因的mRNA拷貝數(shù)均顯著高于DF-1-NC和DF-1細(xì)胞。

    圖3 不同濃度渥曼青霉素對(duì)PRNP基因mRNA拷貝數(shù)的影響Fig.3 Effects of different wortmannin concentration on mRNA copy number of PRNP

    3 討 論

    Akt的活性與抗細(xì)胞凋亡以及細(xì)胞生長、增殖和能量代謝有關(guān)。在腫瘤細(xì)胞中Akt的表達(dá)量較正常細(xì)胞高,有加速白血病細(xì)胞增殖和抑制細(xì)胞程序性死亡的作用[14],激活A(yù)kt還可改變細(xì)胞遷移和侵襲,提高卵巢腫瘤細(xì)胞的侵襲能力[15]。敲除小鼠的PrPC基因可明顯降低p-Akt表達(dá)量,加劇腦缺血后的神經(jīng)損傷[16]。Pr PC和p-Akt在胃癌組織中協(xié)同表達(dá),p-Akt有可能在Pr PC介導(dǎo)的胃癌惡性表型中發(fā)揮作用[17]。但雞細(xì)胞型朊蛋白的生理功能及其機(jī)制還未見報(bào)道,為此作者構(gòu)建了Ch Pr PC過表達(dá)的雞成纖維細(xì)胞系DF-1-Pr P及空載體細(xì)胞系DF-1-NC。本試驗(yàn)中,作者應(yīng)用PI3K/Akt抑制劑渥曼青霉素阻斷該信號(hào)通路,探討其對(duì)Pr PC介導(dǎo)的細(xì)胞增殖、黏附、侵襲和凋亡過程的影響。結(jié)果顯示,渥曼青霉素濃度為0 nmol·L-1時(shí),DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞的增殖、黏附、侵襲能力均最高,總凋亡率均最低;且DF-1-Pr P細(xì)胞增殖、黏附、侵襲能力均高于DF-1-NC細(xì)胞和DF-1細(xì)胞,而總凋亡率卻低于DF-1-NC細(xì)胞和DF-1細(xì)胞,差異顯著(P<0.05),說明ChPrPC的過量表達(dá)可促進(jìn)DF-1-Pr P細(xì)胞增殖、黏附、侵襲,抑制其凋亡,這和PrPC在哺乳動(dòng)物中的功能相似[7]。隨著渥曼青霉素濃度的增加,DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞各自的PRNP基因mRNA表達(dá)量均減少,其增殖、黏附、侵襲能力相應(yīng)下降,而總凋亡率均升高,且呈現(xiàn)一定的劑量效應(yīng)關(guān)系,這證實(shí)了文獻(xiàn)報(bào)道的PI3K/Akt信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路是調(diào)節(jié)細(xì)胞存活最重要的途徑之一[18],ChPrPC至少部分是通過PI3K/Akt信號(hào)通路對(duì)DF-1細(xì)胞的增殖、黏附、侵襲和凋亡進(jìn)行調(diào)節(jié)的。但在低于100 nmol·L-1的同一渥曼青霉素濃度下,DF-1-Pr P細(xì)胞增殖、黏附、侵襲能力始終高于DF-1-NC細(xì)胞和DF-1細(xì)胞,而總凋亡率均低于DF-1-NC細(xì)胞和DF-1細(xì)胞,差異顯著(P<0.05),說明ChPrPC的過量表達(dá)具有抗渥曼青霉素的能力。尤其在流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡的試驗(yàn)中,渥曼青霉素濃度為100和200 nmol·L-1時(shí),DF-1-NC和DF-1細(xì)胞幾乎全部凋亡,但DF-1-Pr P細(xì)胞仍有56.63%和15.54%的細(xì)胞存活,提示ChPrPC還可通過其他途徑調(diào)節(jié)DF-1細(xì)胞的凋亡。

    T.W.Poh等研究渥曼青霉素對(duì)PI3K/Akt信號(hào)通路的作用,結(jié)果表明渥曼青霉素能負(fù)調(diào)控PI3K/Akt信號(hào)通路中的多種分子,包括PI3K和m TOR,使Akt去磷酸化從而下調(diào)Akt激酶活性[18-19]。作者采用實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR法檢測發(fā)現(xiàn),隨著渥曼青霉素濃度的增加,DF-1-Pr P、DF-1-NC和DF-1細(xì)胞中PRNP基因mRNA表達(dá)量均減少,而在同一渥曼青霉素濃度下,DF-1-Pr P細(xì)胞中PRNP基因mRNA表達(dá)量均高于DF-1-NC細(xì)胞和DF-1細(xì)胞,表明Akt基因表達(dá)量與PRNP基因表達(dá)量相關(guān)聯(lián),Akt對(duì)PrPC可能存在反饋調(diào)節(jié),但其機(jī)制尚不明確。

    總之,ChPrPC的過量表達(dá)可促進(jìn)DF-1細(xì)胞增殖、黏附和侵襲,抑制其凋亡;渥曼青霉素以劑量依賴方式抑制DF-1細(xì)胞中PRNP基因mRNA表達(dá)及其細(xì)胞的增殖、黏附和侵襲,誘導(dǎo)其凋亡,表明PI3K/Akt信號(hào)通路可能在Ch Pr PC介導(dǎo)DF-1細(xì)胞增殖、黏附、侵襲和凋亡過程中具有重要的作用。Ch Pr PC的過量表達(dá)可抗渥曼青霉素引起的細(xì)胞凋亡,提示PI3K/Akt信號(hào)通路并不是ChPrPC調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡的唯一途徑。本研究結(jié)果為進(jìn)一步闡明ChPrPC生理功能的分子機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

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