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    獼猴桃藤總黃酮純化工藝研究△

    2015-01-23 10:11:27李雪李棟紅王小平白吉慶
    中國(guó)現(xiàn)代中藥 2015年2期
    關(guān)鍵詞:粗提物聚酰胺項(xiàng)下

    李雪,李棟紅,王小平,白吉慶

    (陜西中醫(yī)學(xué)院,陜西 咸陽(yáng) 712046)

    ·基礎(chǔ)研究·

    獼猴桃藤總黃酮純化工藝研究△

    李雪,李棟紅,王小平*,白吉慶

    (陜西中醫(yī)學(xué)院,陜西 咸陽(yáng) 712046)

    目的:獼猴桃藤中總黃酮純化工藝的優(yōu)選。方法:采用單因素設(shè)計(jì),以總黃酮的含量為評(píng)價(jià)指標(biāo)。結(jié)果:最佳純化條件樣品與聚酰胺的比例為1∶10,10倍量柱體積的60%乙醇洗脫,所純化的總黃酮含量最高,可達(dá)51.8%。結(jié)論:該純化工藝簡(jiǎn)單、可行,可用于獼猴桃藤中總黃酮的純化。

    獼猴桃藤;總黃酮;純化工藝;正交設(shè)計(jì)

    獼猴桃藤為獼猴桃科獼猴桃屬植物獼猴桃ActinidiaChinensisPlanch.的藤[1]。獼猴桃根具有清熱解毒、活血散結(jié)、祛風(fēng)利濕之功能。臨床上用于治療胃癌、乳腺癌、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、淋巴性結(jié)核、跌撲損傷、癰癤等病[2]。我國(guó)為獼猴桃的主要產(chǎn)區(qū),陜西省廣泛栽培,栽植面積占全國(guó)60%以上。近年發(fā)現(xiàn)中華獼猴桃根富含黃酮類(lèi)、生物堿類(lèi)等成分,具有降壓、抗腫瘤等藥理作用[2-5]。獼猴桃根資源相對(duì)匱乏,但其藤因?yàn)楣r(nóng)每年都要修剪,資源非常豐富。前期研究發(fā)現(xiàn)獼猴桃藤富含大量黃酮類(lèi)成分,但對(duì)其總黃酮純化工藝研究報(bào)道較少,因此本文對(duì)其總黃酮的純化工藝進(jìn)行研究,希望為獼猴桃藤總黃酮的開(kāi)發(fā)利用提供參考。

    1 儀器與試劑、試藥

    1.1 儀器

    紫外-分光光度計(jì)(上海美普達(dá)儀器有限公司);德國(guó)IKA RV10旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀;KQ-300VDE型雙頻數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);DZF-6050B真空干燥箱(上海齊欣科學(xué)儀器有限公司);101-2型電熱鼓風(fēng)干燥箱(北京科偉永興儀器有限公司);BT125D電子天平(賽多利斯)。

    1.2 試劑、試藥

    獼猴桃藤,經(jīng)陜西中醫(yī)學(xué)院生藥教研室白吉慶副教授鑒定為獼猴桃科獼猴桃屬植物獼猴桃ActinidiaChinensisPlanch.的藤;蘆丁對(duì)照品(中國(guó)食品藥品檢定研究院提供,批號(hào):100080-200707);聚酰胺(100~200目);亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉、乙醇等均為分析純。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 方法

    2.1.1 粗提物制備 稱取獼猴桃藤藤飲片150 g,用8倍量60%的乙醇提取3次,每次1 h,合并濾液,減壓回收乙醇至稠膏狀,減壓干燥,得粗提物14.64 g。

    2.1.2 對(duì)照品的制備 精密稱取蘆丁對(duì)照品9.93 mg,置10 mL容量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,即得。

    2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

    分別取蘆丁對(duì)照品溶液0.1、0.2、0.4、0.6、0.8 mL于10 mL容量瓶中,精密加入5%的亞硝酸鈉溶液0.4 mL,搖勻,放置6 min;加入10%硝酸鋁溶液0.4 mL,搖勻,放置6 min;加入4.3%的氫氧化鈉試液4 mL,加水至刻度,搖勻,放置15 min,以相應(yīng)試劑為空白,用紫外-可見(jiàn)分光光度法,在500 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸收光度。以總黃酮(蘆丁計(jì))濃度為縱坐標(biāo),吸光度為橫坐標(biāo),進(jìn)行線性回歸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得Y=0.008 73X-0.002 8(r=0.999 9),總黃酮(蘆丁計(jì))在0.01~0.08 mg·mL-1線性關(guān)系好良好[6]。

    2.3 上柱溶液的制備

    稱取粗提物適量置燒瓶中,精密加入10倍量60%的乙醇,稱定重量,超聲20 min,取出,室溫放置,稱重,用60%的乙醇補(bǔ)足減失的重量,過(guò)濾,濾液備用。

    2.4 純化工藝考察

    2.4.1 洗脫量的考察 取供試品2 g(平行3份),精密稱定,按照2.3項(xiàng)下的方法制備上柱溶液,加到已處理好的聚酰胺(10 g)柱上(30 cm×5 cm),分別用6、8、10、12倍量柱體積的60%乙醇洗脫,收集洗脫液,搖勻,精密量取0.3 mL置10 mL容量瓶中,照2.2項(xiàng)下的方法自加入5%的亞硝酸鈉0.4 mL起,依法測(cè)定吸光度。代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算總黃酮的濃度。精密量取洗脫液適量,置干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,水浴蒸干,105 ℃烘3 h,取出,置干燥器中冷至室溫,精密稱重。計(jì)算所得純化物中總黃酮的含量分別為31.6%、40.5%、49.2%、42.8%。

    2.4.2 洗脫濃度的考察 取供試品2 g(平行3份),精密稱定,按照2.3項(xiàng)下的方法制備上柱溶液,加到已處理好的聚酰胺(10 g)柱上(30 cm×5 cm),用10倍量柱體積的50%、60%、70%、80%乙醇洗脫,收集洗脫液,搖勻,精密量取0.3 mL置10 mL容量瓶中,照2.2項(xiàng)下的方法自加入5%的亞硝酸鈉0.4 mL起,依法測(cè)定吸光度。代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算總黃酮的濃度。精密量取洗脫液適量,置干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,水浴蒸干,105 ℃烘3 h,取出,置干燥器中冷至室溫,精密稱重。計(jì)算所得純化物中總黃酮的含量分別為32.4%、48.6%、39.2%、40.6%。

    2.4.3 上樣量的考察 分別取供試品1、2、3 g(平行3份),精密稱定,按照2.3項(xiàng)下的方法制備上柱溶液,加到已處理好的聚酰胺(10 g)柱上(30 cm×5 cm),分別用10倍量柱體積的60%乙醇洗脫,收集洗脫液,搖勻,精密量取0.3 mL置10 mL容量瓶中,照2.2項(xiàng)下的方法自加入5%的亞硝酸鈉0.4 mL起依法測(cè)定吸光度。代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算總黃酮的濃度。精密量取洗脫液適量,置干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,水浴蒸干,105 ℃烘3 h,取出,置干燥器中冷至室溫,精密稱重,計(jì)算所得純化物中總黃酮的含量分別為51.8%、48.5%、46.4%。

    2.5 結(jié)果

    試驗(yàn)結(jié)果表明,最佳純化條件為樣品與聚酰胺的比例為1∶10,10倍量柱體積的60%乙醇洗脫。

    2.6 工藝驗(yàn)證

    取供試品5 g(平行3份),精密稱定,按照2.3項(xiàng)下的方法制備上柱溶液,加到已處理好的聚酰胺(50 g)柱上(30 cm×5 cm),分別用10倍量柱體積的60%乙醇洗脫,收集洗脫液,搖勻,精密量取0.3 mL置10 mL容量瓶中,照2.2項(xiàng)下的方法自加入5%的亞硝酸鈉0.4 mL起,依法測(cè)定吸光度。代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算總黃酮的濃度。精密量取洗脫液適量,置干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,水浴蒸干,105 ℃烘3 h,取出,置干燥器中冷至室溫,精密稱重,計(jì)算所得純化物中總黃酮的含量分別為51.6%,52.5%,50.9%,表明優(yōu)選的純化工藝穩(wěn)定可行。

    3 結(jié)論與意義

    采用薄層色譜法,獼猴桃藤粗提物色譜中在與蘆丁對(duì)照品相應(yīng)的位置出現(xiàn)相同的斑點(diǎn),表明獼猴桃藤粗提物中含有蘆丁,故本文選擇蘆丁作為對(duì)照品測(cè)定獼猴桃藤粗提物純化前后總黃酮的含量。本文采用單因素試驗(yàn),篩選影響獼猴桃藤粗提物中總黃酮純化效果的主要因素,并對(duì)優(yōu)化的純化工藝進(jìn)行放大試驗(yàn)驗(yàn)證,為獼猴桃藤總黃酮工業(yè)化生產(chǎn)及開(kāi)發(fā)利用提供參考。

    本試驗(yàn)以蘆丁為對(duì)照品,用紫外-分光光度法對(duì)總黃酮進(jìn)行含量測(cè)定,通過(guò)聚酰胺柱層析對(duì)獼猴桃藤中總黃酮純化效果進(jìn)行篩選。結(jié)果表明,樣品與聚酰胺的比例為1∶10,洗脫劑為10倍量柱體積60%的乙醇,所得純化物中總黃酮含量最高,可達(dá)51.8%。本試驗(yàn)對(duì)優(yōu)化的工藝進(jìn)行放大試驗(yàn)驗(yàn)證,結(jié)果純化效果較為理想,純化后總黃酮的含量可高達(dá)50%以上,與單因素考察所得的最佳純化效果進(jìn)行比較,無(wú)顯著差異。該純化工藝簡(jiǎn)單、可行,重復(fù)性好,可用于獼猴桃藤中總黃酮的純化。

    [1] 國(guó)家中醫(yī)藥管理局《中華本草》編委會(huì).中華本草:第九卷(第三冊(cè)) [ M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,1999.

    [2] 赫軍,馬秉智,趙鐵.藤梨根的化學(xué)成分研究[J].中國(guó)藥學(xué)雜志.2014,49(3):184-186.

    [3] 邸學(xué),海波,楊欣欣.藤梨根藥材HPLC指紋圖譜及質(zhì)量研究[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志.2013,19(10):135-137.

    [4] 龍凱花,王小平,白吉慶.中藥藤梨根抗腫瘤研究[J].中國(guó)現(xiàn)代中藥,2013,15(10):846-849.

    [5] 邸學(xué),徐洋洋,裴世柱.響應(yīng)面法優(yōu)化藤梨根總生物堿提取工藝[J].遼寧中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào).2013,15(7):58-61.

    [6] 王小平,白吉慶.藤梨根總黃酮提取方法及含量測(cè)定研究[J].陜西中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2008,31(3):65-66.

    Purification Process of total flavonoids in Vine ofActinidiachinensis

    LI Xue,LI Donghong,WANG Xiaoping*,BAI Jiqing

    (Shaanxi University of TCM, Xianyang 712046,Shaanxi,China)

    Objective:To optimize of flavonoids purification process ofActinidiachinensisvine.Methods:The optimized The purification process of the flavonoids was optimized with the total flavonoids as a index.Results:Optimal purification process was as following: The ratio of samples and adsorbent 1∶10, tenfold column volumes of 60% ethanol elute, the content of total flavonoids was 71.8%.Conclusion:The purification process is simple and feasible, and can be used for purification of total flavonoids in vine ofA.chinensis.

    Vine ofActinidiachinens;total flavonoids;purification process;orthogonal design

    10.13313/j.issn.1673-4890.2015.2.010

    2015-01-28)

    陜西省科技資源統(tǒng)籌中藥現(xiàn)代化專項(xiàng)(2012KTCL03-14);陜西省大學(xué)生創(chuàng)新訓(xùn)練項(xiàng)目(1689)

    *

    王小平,副教授,碩士生導(dǎo)師,研究方向:中藥質(zhì)量分析與新藥研究;E-mail:wangxiaoping323@126.com

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