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    海沃德獼猴桃?guī)а壳o段的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)

    2015-01-15 15:52:23于紅梅趙密珍錢亞明王靜夏謹龐夫
    江蘇農(nóng)業(yè)科學 2014年11期
    關(guān)鍵詞:組織培養(yǎng)獼猴桃

    于紅梅+趙密珍+錢亞明+王靜+夏謹+龐夫花

    摘要:以海沃德獼猴桃?guī)а壳o段為外植體直接誘導再生芽,對繼代增殖和生根等培養(yǎng)基進行篩選試驗,建立海沃德獼猴桃組織培養(yǎng)快繁技術(shù)。結(jié)果表明:75%乙醇30s+0.1%氯化汞8min為最佳消毒方法;誘導再生芽培養(yǎng)基為MS+1.0mg/L6-BA+0.1mg/LNAA;繼代增殖培養(yǎng)基為MS+2.0mg/L6-BA+0.1mg/LNAA,其增殖系數(shù)為3.60;生根培養(yǎng)基為1/2MS+0.7mg/LIBA,生根率達100%,平均生根數(shù)達7.8條。

    關(guān)鍵詞:獼猴桃;帶芽莖段;組織培養(yǎng);快繁技術(shù)

    中圖分類號:S663.404+.3文獻標志碼:A文章編號:1002-1302(2014)11-0078-02

    獼猴桃(Actinidiadelikiosa)是20世紀人工馴化栽培野生果樹最有成就的四大果種之一[1]。海沃德獼猴桃是新西蘭選育的美味獼猴桃優(yōu)良品種,其果肉細嫩、香氣濃郁、口感香甜清爽、具有豐富的營養(yǎng)價值和良好的藥用價值,被稱為“果中之王”。因其具有味美、耐貯、貨架期長、較好的豐產(chǎn)性等優(yōu)點而深受果農(nóng)和廣大消費者喜愛,從而成為世界主栽品種。目前,獼猴桃的常規(guī)育苗方法主要為實生苗的嫁接法和成年株的扦插繁殖法。嫁接苗童期生長緩慢,育苗周期長達2年以上,而扦插苗成活率低[2]。近年來,我國獼猴桃產(chǎn)業(yè)效益顯著,栽培面積逐年擴大,傳統(tǒng)育苗方法已不能滿足規(guī)?;a(chǎn)的需求,致使良種推廣受到很大的限制。張海平等以其莖尖為外植體,經(jīng)愈傷組織出芽建立快繁體系[2]。吳秀華等以無菌苗的葉片為外植體,采用一步出芽法對不定芽進行誘導、增殖和生根,從而成功建立離體快繁體系[3]。劉長春等以金富獼猴桃?guī)а壳o段為外植體,誘導腋芽萌發(fā)芽,再通過增殖培養(yǎng)和生根建立了快繁體系[4]。隆前進等以紅陽帶芽莖段為外植體進行出芽誘導,通過不定芽增殖和生根成功建立離體快繁體系[5]。本試驗在前人研究的基礎(chǔ)上,以海沃德獼猴桃?guī)а壳o段為外植體直接誘導再生芽,對繼代增殖和生根等培養(yǎng)基等進行篩選試驗,建立了海沃德獼猴桃組培快繁技術(shù)。

    1材料與方法

    1.1材料的選擇

    海沃德獼猴桃幼嫩新梢的帶芽莖段采自江蘇省農(nóng)業(yè)科學院園藝研究所溧水基地,采集時間是2012年4月。

    1.2消毒方法

    將材料經(jīng)流水沖洗1.5~2.0h,在無菌操凈工作臺上,取1.5cm帶芽莖段先用75%醫(yī)用乙醇消毒30s,接著無菌水沖洗2遍,然后按照以下處理要求分別進行消毒處理:A.0.1%氯化汞6min;B.0.1%氯化汞8min;C.0.1%氯化汞10min;D.10%次氯酸鈉10min;E.10%次氯酸鈉12min;F.10%次氯酸鈉15min;G.10%雙氧水5min;H.10%雙氧水10min;I.10%雙氧水15min,最后每個處理消毒后用無菌水沖洗4~5遍。

    1.3篩選誘導再生芽培養(yǎng)基

    滅菌后切取1.0cm帶芽莖段,接入添加不同激素6-BA(0.5、1.0、2.0mg/L)和NAA濃度(0、0.1、0.2mg/L)組合的MS培養(yǎng)基,共8個處理。MS培養(yǎng)基蔗糖含量為30g/L、瓊脂含量為6.5g/L,pH值為5.8~6.0。每個處理接種帶芽莖段30個,置于溫度(25±2)℃、光照強度約2400lx的條件下光照14~16h/d,15d后統(tǒng)計腋芽萌芽率。

    1.4篩選繼代增殖培養(yǎng)基

    以MS為基本培養(yǎng)基,添加不同激素6-BA(0.5、1.0、2.0mg/L)和NAA濃度(0、0.1、0.2mg/L)組合,共9個處理。選取上述腋芽萌發(fā)長勢一致的健壯海沃德獼猴桃再生芽,接入以上9種pH值為5.8~6.0的繼代增殖培養(yǎng)基中,光照條件同“1.3”,培養(yǎng)20d后調(diào)查增殖效果及有效苗情況。

    1.5篩選生根培養(yǎng)基

    選取長勢一致的健壯海沃德獼猴桃組培苗,接入生根培養(yǎng)基中,共11個處理,不同激素6-BA(0、0.5、0.7、1.0mg/L)和NAA(0、0.1、0.3mg/L)濃度組合配比,其他條件同上。每個處理轉(zhuǎn)接30管,每管1株,培養(yǎng)12d后調(diào)查海沃德獼猴桃苗的生根率和平均生根數(shù)等。平均生根數(shù)=各處理所有根長大于0.5cm根的總數(shù)/30。

    1.6煉苗移栽

    打開生根試管苗保鮮膜,在室內(nèi)放置1~2d,然后取出洗凈培養(yǎng)基,移栽到配制好的基質(zhì)里(進口泥炭∶珍珠巖∶蛭石的體積比為6∶3∶1),保持濕度90%左右,適當遮陰,保持通風,增加光照,3周后調(diào)查苗的成活率。

    2結(jié)果與分析

    2.1不同消毒劑的消毒效果

    選用氯化汞、次氯酸鈉、雙氧水3種表面消毒劑分別對海沃德獼猴桃?guī)а壳o段消毒處理不同時間,10d后調(diào)查消毒效果。結(jié)果表明:氯化汞消毒效果明顯比次氯酸鈉、雙氧水好;次氯酸鈉對外植體切口的損害較重,褐化多,雙氧水對外植體消毒不徹底,污染、褐化較嚴重。處理B消毒效果最佳(表1)。

    2.26-BA和NAA濃度配比對再生芽誘導的影響

    由表2可知,添加NAA的基本培養(yǎng)基都可以萌芽,在0~2.0mg/L6-BA處理下,以1.0mg/L6-BA萌芽率最高,隨6-BA濃度的增大,萌芽率略降低。NAA(0.1~0.2mg/L)處理的萌芽情況取決于6-BA濃度的配比,添加激素的最佳配比為1.0mg/L6-BA+0.1mg/LNAA,萌芽率達93.33%,其次為2.0mg/L6-BA+0.1mg/LNAA,萌芽率達86.67%。

    2.36-BA和NAA濃度配比對繼代增殖的影響

    由表3可見,MS培養(yǎng)基中6-BA濃度為2mg/L的增殖系數(shù)為2.97~3.60,1.0mg/L的增殖系數(shù)為2.73~3.03,0.5mg/L的增殖系數(shù)為2.03~2.67,表明一定濃度范圍內(nèi),6-BA濃度增加有利于芽的增殖,培養(yǎng)基中含NAA多少與芽增殖無線性關(guān)系,但NAA可促進生長。0.1mg/LNAA+2.0mg/L6-BA為海沃德獼猴桃最適的繼代增殖配比濃度。

    2.4不同激素對海沃德獼猴桃生根的影響

    選取長勢一致的健壯獼猴桃組培苗,接到不同激素濃度配比1/2MS培養(yǎng)基中進行生根對比,12d后調(diào)查生根情況,結(jié)果見表4。激素濃度配比對再生芽生根率的影響較明顯,IBA濃度相同時,NAA濃度增加對根的伸長有抑制作用,纖細且短。IBA濃度為0.7mg/L時,不添加NAA,生根率達100%,且根粗壯、發(fā)達,平均生根數(shù)多達7.80條。

    3小結(jié)

    目前,利用現(xiàn)代生物技術(shù)進行組織離體再生培養(yǎng)已在植物的無性繁殖中廣泛應用。培養(yǎng)基中的不同激素濃度配比對獼猴桃誘導愈傷組織、繼代增殖、生根均有很大的影響[6-7]。本試驗在前人研究的基礎(chǔ)上縮小6-BA、NAA和IBA激素的濃度配比梯度,建立海沃德獼猴桃?guī)а壳o段的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)。嘗試應用海沃德獼猴桃?guī)а壳o段跳過愈傷組織誘導不定芽,直接誘導腋芽萌發(fā)再生芽,植株整齊生長快,其再生芽萌發(fā)率達到100%。在繼代增殖過程中,合理使用6-BA、NAA配比濃度,增殖系數(shù)達到3.60,低于吳秀華等的“海沃德平均繁殖系數(shù)為6.38”的結(jié)果[3],但本試驗有效苗率達89.26%,提高了再生芽品質(zhì)。在生根過程中,不定根的生根率達100%,明顯高于張海平等的“海沃德獼猴桃中獲得的生根率為90.0%”的結(jié)果[2],與吳秀華等的海沃德獼猴桃生根率試驗結(jié)果[3]相同。在海沃德獼猴桃移栽時,平均生根數(shù)直接影響組培苗的移栽存活率,張海平等指出選用進口泥炭的成活率達95%,吳秀華等證明普通基質(zhì)移栽成活率92.38%[3],而本試驗在通氣性較好的進口泥炭、珍珠巖、蛭石混合基質(zhì)中,根系能夠得到良好發(fā)育,移栽成活率達到96.7%,本試驗生根時間縮短至12d,同時跳過愈傷組織誘導不定芽,快繁周期大為縮短,利于生產(chǎn)上規(guī)模化快速繁育種苗。

    參考文獻:

    [1]Warring,tonIJ,WestonGC.Kiwifruits:scienceandmanagement[M].Auckland:RayRichardsPublisher,1990.

    [2]張海平,周建峰,任目瑾.海沃德獼猴桃組織培養(yǎng)快速繁育技術(shù)研究[J].陜西林業(yè)科技,2011(2):8-11.

    [3]吳秀華,張艷玲,周月,等.‘海沃德獼猴桃葉片高頻直接再生體系的建立[J].植物生理學報2013,49(8):759-763

    [4]劉長春,陳澤雄,龔雪芹,等.金富獼猴桃離體培養(yǎng)與植株再生的優(yōu)化研究[J].西南師范大學學報:自然科學版,2007,32(5):124-128.

    [5]隆前進,吳延軍,謝鳴.‘紅陽獼猴桃葉片和帶芽莖段的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)[J].浙江農(nóng)業(yè)學報,2010(4):429-432

    [6]姜維梅,李鳳玉.大籽獼猴桃離體再生系統(tǒng)的建立[J].浙江大學學報:農(nóng)業(yè)與生命科學版,200329(3):295-299.

    [7]劉長江,劉國成,趙德英,等.野生軟棗獼猴桃莖尖培養(yǎng)研究[J].中國果樹,2009(2):32-34.

    2.4不同激素對海沃德獼猴桃生根的影響

    選取長勢一致的健壯獼猴桃組培苗,接到不同激素濃度配比1/2MS培養(yǎng)基中進行生根對比,12d后調(diào)查生根情況,結(jié)果見表4。激素濃度配比對再生芽生根率的影響較明顯,IBA濃度相同時,NAA濃度增加對根的伸長有抑制作用,纖細且短。IBA濃度為0.7mg/L時,不添加NAA,生根率達100%,且根粗壯、發(fā)達,平均生根數(shù)多達7.80條。

    3小結(jié)

    目前,利用現(xiàn)代生物技術(shù)進行組織離體再生培養(yǎng)已在植物的無性繁殖中廣泛應用。培養(yǎng)基中的不同激素濃度配比對獼猴桃誘導愈傷組織、繼代增殖、生根均有很大的影響[6-7]。本試驗在前人研究的基礎(chǔ)上縮小6-BA、NAA和IBA激素的濃度配比梯度,建立海沃德獼猴桃?guī)а壳o段的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)。嘗試應用海沃德獼猴桃?guī)а壳o段跳過愈傷組織誘導不定芽,直接誘導腋芽萌發(fā)再生芽,植株整齊生長快,其再生芽萌發(fā)率達到100%。在繼代增殖過程中,合理使用6-BA、NAA配比濃度,增殖系數(shù)達到3.60,低于吳秀華等的“海沃德平均繁殖系數(shù)為6.38”的結(jié)果[3],但本試驗有效苗率達89.26%,提高了再生芽品質(zhì)。在生根過程中,不定根的生根率達100%,明顯高于張海平等的“海沃德獼猴桃中獲得的生根率為90.0%”的結(jié)果[2],與吳秀華等的海沃德獼猴桃生根率試驗結(jié)果[3]相同。在海沃德獼猴桃移栽時,平均生根數(shù)直接影響組培苗的移栽存活率,張海平等指出選用進口泥炭的成活率達95%,吳秀華等證明普通基質(zhì)移栽成活率92.38%[3],而本試驗在通氣性較好的進口泥炭、珍珠巖、蛭石混合基質(zhì)中,根系能夠得到良好發(fā)育,移栽成活率達到96.7%,本試驗生根時間縮短至12d,同時跳過愈傷組織誘導不定芽,快繁周期大為縮短,利于生產(chǎn)上規(guī)模化快速繁育種苗。

    參考文獻:

    [1]Warring,tonIJ,WestonGC.Kiwifruits:scienceandmanagement[M].Auckland:RayRichardsPublisher,1990.

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    [3]吳秀華,張艷玲,周月,等.‘海沃德獼猴桃葉片高頻直接再生體系的建立[J].植物生理學報2013,49(8):759-763

    [4]劉長春,陳澤雄,龔雪芹,等.金富獼猴桃離體培養(yǎng)與植株再生的優(yōu)化研究[J].西南師范大學學報:自然科學版,2007,32(5):124-128.

    [5]隆前進,吳延軍,謝鳴.‘紅陽獼猴桃葉片和帶芽莖段的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)[J].浙江農(nóng)業(yè)學報,2010(4):429-432

    [6]姜維梅,李鳳玉.大籽獼猴桃離體再生系統(tǒng)的建立[J].浙江大學學報:農(nóng)業(yè)與生命科學版,200329(3):295-299.

    [7]劉長江,劉國成,趙德英,等.野生軟棗獼猴桃莖尖培養(yǎng)研究[J].中國果樹,2009(2):32-34.

    2.4不同激素對海沃德獼猴桃生根的影響

    選取長勢一致的健壯獼猴桃組培苗,接到不同激素濃度配比1/2MS培養(yǎng)基中進行生根對比,12d后調(diào)查生根情況,結(jié)果見表4。激素濃度配比對再生芽生根率的影響較明顯,IBA濃度相同時,NAA濃度增加對根的伸長有抑制作用,纖細且短。IBA濃度為0.7mg/L時,不添加NAA,生根率達100%,且根粗壯、發(fā)達,平均生根數(shù)多達7.80條。

    3小結(jié)

    目前,利用現(xiàn)代生物技術(shù)進行組織離體再生培養(yǎng)已在植物的無性繁殖中廣泛應用。培養(yǎng)基中的不同激素濃度配比對獼猴桃誘導愈傷組織、繼代增殖、生根均有很大的影響[6-7]。本試驗在前人研究的基礎(chǔ)上縮小6-BA、NAA和IBA激素的濃度配比梯度,建立海沃德獼猴桃?guī)а壳o段的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)。嘗試應用海沃德獼猴桃?guī)а壳o段跳過愈傷組織誘導不定芽,直接誘導腋芽萌發(fā)再生芽,植株整齊生長快,其再生芽萌發(fā)率達到100%。在繼代增殖過程中,合理使用6-BA、NAA配比濃度,增殖系數(shù)達到3.60,低于吳秀華等的“海沃德平均繁殖系數(shù)為6.38”的結(jié)果[3],但本試驗有效苗率達89.26%,提高了再生芽品質(zhì)。在生根過程中,不定根的生根率達100%,明顯高于張海平等的“海沃德獼猴桃中獲得的生根率為90.0%”的結(jié)果[2],與吳秀華等的海沃德獼猴桃生根率試驗結(jié)果[3]相同。在海沃德獼猴桃移栽時,平均生根數(shù)直接影響組培苗的移栽存活率,張海平等指出選用進口泥炭的成活率達95%,吳秀華等證明普通基質(zhì)移栽成活率92.38%[3],而本試驗在通氣性較好的進口泥炭、珍珠巖、蛭石混合基質(zhì)中,根系能夠得到良好發(fā)育,移栽成活率達到96.7%,本試驗生根時間縮短至12d,同時跳過愈傷組織誘導不定芽,快繁周期大為縮短,利于生產(chǎn)上規(guī)?;焖俜庇N苗。

    參考文獻:

    [1]Warring,tonIJ,WestonGC.Kiwifruits:scienceandmanagement[M].Auckland:RayRichardsPublisher,1990.

    [2]張海平,周建峰,任目瑾.海沃德獼猴桃組織培養(yǎng)快速繁育技術(shù)研究[J].陜西林業(yè)科技,2011(2):8-11.

    [3]吳秀華,張艷玲,周月,等.‘海沃德獼猴桃葉片高頻直接再生體系的建立[J].植物生理學報2013,49(8):759-763

    [4]劉長春,陳澤雄,龔雪芹,等.金富獼猴桃離體培養(yǎng)與植株再生的優(yōu)化研究[J].西南師范大學學報:自然科學版,2007,32(5):124-128.

    [5]隆前進,吳延軍,謝鳴.‘紅陽獼猴桃葉片和帶芽莖段的組織培養(yǎng)快繁技術(shù)[J].浙江農(nóng)業(yè)學報,2010(4):429-432

    [6]姜維梅,李鳳玉.大籽獼猴桃離體再生系統(tǒng)的建立[J].浙江大學學報:農(nóng)業(yè)與生命科學版,200329(3):295-299.

    [7]劉長江,劉國成,趙德英,等.野生軟棗獼猴桃莖尖培養(yǎng)研究[J].中國果樹,2009(2):32-34.

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