程 文,許 偉,邵 榮,*
1常州大學(xué)石油化工學(xué)院,常州 213164;2 鹽城工學(xué)院化學(xué)與生物工程學(xué)院,鹽城 224051
與人工合成色素相比,天然色素因其無(wú)毒、安全性高、色澤自然,且具有很高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和藥理功能而日益受到重視[1]。天然色素一般來(lái)源于資源有限的動(dòng)植物[2-5]。研究表明,微生物也可作為天然色素的來(lái)源[6-8]。微生物生長(zhǎng)繁殖迅速,不受時(shí)間與空間的限制,可大規(guī)模生產(chǎn),克服了動(dòng)植物資源有限的問(wèn)題[6]。色素的穩(wěn)定性是色素在應(yīng)用中的一個(gè)重要指標(biāo),色素穩(wěn)定性的好壞將直接影響著色物質(zhì)的色澤和品質(zhì)[9]。但天然色素的穩(wěn)定性差,從而影響其應(yīng)用[10-12]。本課題組前期從紫球藻共生真菌中篩選獲得一株產(chǎn)天然紫紅色色素的菌株,該菌株通過(guò)液體發(fā)酵、提取、分離后得到紫紅色色素,初步研究表明該色素具有一定的開(kāi)發(fā)與利用價(jià)值。因此,本文對(duì)紫紅色色素的穩(wěn)定性和抗氧化性進(jìn)行了研究,為該色素的進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用提供一定的依據(jù)。
1.1.1 材料
共生真菌,從紫球藻(Porphyridium purpureum)中篩選獲得。該菌株于2013 年9 月保藏于中國(guó)微生物保藏中心(北京),保藏號(hào)為8168,經(jīng)鑒定為刀孢蠟蚧菌(Lecanicillium psalliotae)[13]。采用該菌進(jìn)行液體發(fā)酵,所得發(fā)酵液產(chǎn)物經(jīng)濃縮、提取分離后獲得紫紅色色素。
1.1.2 試劑
乙醇、正丁醇、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、淀粉、抗壞血酸、檸檬酸、亞硫酸鈉、30%雙氧水(均為分析純,購(gòu)自江蘇彤晟化學(xué)試劑有限公司);ABTS[>98%色譜純,購(gòu)自Sigma-aldrich(上海)貿(mào)易有限公司];鄰菲啰啉(分析純,購(gòu)自上海山浦化工有限公司);其它試劑均為分析純,并用蒸餾水配制溶液。
1.1.3 儀器
UV2310II 紫外/可見(jiàn)分光光度計(jì)(上海天美科學(xué)儀器有限公司);DZF-6050 真空干燥箱、DK-BD電熱恒溫水槽(上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備公司);SHZ-IID循環(huán)水式真空泵、RE-2000B 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海雅榮生化設(shè)備儀器有限公司);AUY220 電子天平[島津國(guó)際貿(mào)易(上海)有限公司];TGLL-18K 離心機(jī)(太倉(cāng)市華美生化儀器廠);PHS-3C 精密pH 計(jì)(上海精密科學(xué)儀器有限公司)。
1.2.1 色素的提取
菌株接種在馬鈴薯葡萄糖液體培養(yǎng)基中,于28℃靜置培養(yǎng)7~9 d。將發(fā)酵液抽濾,濾液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),濃縮至原體積的1/5。向濃縮液中加入3 倍體積的無(wú)水乙醇,4 ℃冷藏過(guò)夜,抽濾除去多糖、蛋白等不溶物;將濾液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至原體積的1/10,用2 倍體積的乙酸乙酯進(jìn)行萃取,此過(guò)程重復(fù)三次,將萃取的乙酸乙酯合并,加入無(wú)水硫酸鈉去除水分,過(guò)濾,將濾液真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至干,于真空干燥箱中干燥備用。
1.2.2 光譜掃描
取上述樣品溶于蒸餾水,以蒸餾水為對(duì)照,置于UV2310II 紫外/可見(jiàn)分光光度計(jì)下,在200~800 nm范圍內(nèi)進(jìn)行光譜掃描,檢測(cè)最大吸收波長(zhǎng),測(cè)得結(jié)果為520 nm,將其作為測(cè)定波長(zhǎng)。
1.2.3 溫度對(duì)色素穩(wěn)定性的影響
將色素溶解于蒸餾水中進(jìn)行穩(wěn)定性研究,使對(duì)照組的吸光度在0.4~0.7 之間。
分別取樣品溶液5 mL 置于20、40、60、80、100℃的溫度下恒溫水浴處理1~3 h,每隔1 h 取出樣品,冷卻至室溫,測(cè)定其在520 nm 處的吸光度,計(jì)算色素殘存率,并分析不同溫度對(duì)色素穩(wěn)定性的影響。
1.2.4 pH 對(duì)色素穩(wěn)定性的影響
將樣品溶于pH 為2、4、6、8、10、12 的緩沖溶液中,室溫條件下,每隔1 h 測(cè)定其在520 nm 處的吸光度,計(jì)算色素殘存率,分析不同pH 對(duì)色素穩(wěn)定性的影響。
1.2.5 光照對(duì)色素穩(wěn)定性的影響
分別取樣品溶液5 mL,置于室外日光、室內(nèi)散射光、紫外光及暗室條件下處理,每隔12 h 測(cè)定其在520 nm 處的吸光度,計(jì)算色素殘存率,分析不同光照條件對(duì)色素穩(wěn)定性的影響。
1.2.6 H2O2對(duì)色素穩(wěn)定性的影響
將氧化劑H2O2分別配成終濃度為0.10%、0.25%、0.50%、1.00%的紫紅色色素溶液,以不加H2O2為對(duì)照(0.00%),每隔2 h 測(cè)定其在520 nm處的吸光度,計(jì)算色素殘存率,分析氧化劑對(duì)色素穩(wěn)定性的影響。
1.2.7 Na2SO3對(duì)色素穩(wěn)定性的影響
將還原劑Na2SO3配成終濃度為1.0、2.5、5.0、25.0、50.0 μg/mL 的色素溶液,以不加Na2SO3為對(duì)照,每隔2 h 測(cè)定其在520 nm 處的吸光度,計(jì)算色素殘存率,分析還原劑對(duì)色素穩(wěn)定性的影響。
1.2.8 金屬離子對(duì)色素穩(wěn)定性的影響
分別將金屬離子Na+、Ca2+、Cu2+、Fe2+、Fe3+、Zn2+、Mg2+、K+配成終濃度為1.0、2.5、5.0 mmol/L的色素溶液,并以不添加金屬離子為對(duì)照,觀察色素顏色變化,室溫靜置每隔2 h 測(cè)定其在520 nm 處的吸光度,計(jì)算色素殘存率。
1.2.9 常用食品添加劑對(duì)色素穩(wěn)定性的影響
分別將氯化鈉、氯化鉀、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、淀粉、抗壞血酸、檸檬酸配成濃度為5.0 mmol/L 的色素溶液,并以不添加添加劑為對(duì)照,室溫靜置每隔2 h 測(cè)定其在520 nm 處的吸光度,計(jì)算色素殘存率,分析不同食品添加劑對(duì)色素穩(wěn)定性的影響。
1.2.10 色素對(duì)ABTS 自由基的清除能力
參照Cao 等[14]的方法并作略微修改來(lái)測(cè)定色素對(duì)ABTS 自由基的清除能力。將2.45 mmol/L 的過(guò)硫酸鉀加入到7.00 mmol/L 的ABTS 水溶液中,黑暗處理16 h,形成穩(wěn)定溶液。取適量上述溶液加水,調(diào)節(jié)溶液使其在734 nm 處的吸光度為0.700 ±0.01。取不同濃度的色素提取液150 μL,加入3 mL的ABTS 溶液,室溫下反應(yīng)6 min,測(cè)定734 nm 處的吸光度,以水作對(duì)照。ABTS·清除率的計(jì)算公式如下:
A0是以蒸餾水代替色素的吸光度,A1是加色素的吸光度。
1.2.11 色素對(duì)羥基自由基的清除能力
采用鄰二氮菲法對(duì)色素清除羥基自由基的能力進(jìn)行測(cè)定。1.0 mL 的鄰菲啰啉(2 mmol/L),4.0 mL磷酸鹽緩沖液(pH 6.0,0.2 mol/L),1.0 mL 蒸餾水,1.0 mL 的FeSO4(2 mmol/L),1.0 mL 的H2O2(2 mmol/L,現(xiàn)配現(xiàn)用),振蕩混勻,在37 ℃水浴60 min,記作Bb;以1.0 mL 蒸餾水代替1.0 mL H2O2,其它條件同Bb處理,記作Bc;以1.0 mL 不同濃度的提取液代替1.0 mL 蒸餾水,其它條件同Bb處理,記作Bs。Bb、Bc、Bs的吸光度在510 nm 處測(cè)定。·OH 清除率的計(jì)算公式如下:
上述所有實(shí)驗(yàn)均重復(fù)三次(n=3),并且標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)小于5% 。
天然色素的熱穩(wěn)定性是其在工業(yè)中潛在應(yīng)用的重要指標(biāo)。該色素在20~100 ℃條件下吸光度值的變化如圖1 所示。由圖1 可知,色素在20~60 ℃條件下,溶液吸光度隨著時(shí)間的延長(zhǎng)而略有上升;80~100 ℃下,溶液吸光度值隨著時(shí)間的延長(zhǎng)而降低。加熱3 h 后,在20、30、60、80 ℃條件下?lián)p失低于1.0%,在100 ℃條件下?lián)p失率為8.9%。由此可知,該紫紅色色素具有良好的熱穩(wěn)定性。
圖1 溫度對(duì)紫紅色色素穩(wěn)定性的影響Fig.1 Effect of temperature on the stability of the amaranth pigments
圖2 顯示了在不同pH 溶液中色素吸光度的變化。由結(jié)果可知,中性和弱酸性的條件下,該色素表現(xiàn)出良好的穩(wěn)定性,色素在堿性條件下顏色由紫紅色變?yōu)闇\灰色,殘留率低于50%。該研究結(jié)果為紫紅色色素在食品加工以其他應(yīng)用中提供一定的理論依據(jù)。
圖2 pH 對(duì)紫紅色色素穩(wěn)定性的影響Fig.2 Effect of pH on the stability of the amaranth pigments
如圖3 所示,考察了色素在不同光照條件下的穩(wěn)定性。在室內(nèi)自然光、紫外光和避光條件下色素?fù)p失較小,96 h 后殘留率均高于85.00%;而在室外直射光照射24 h 后,色素有效成分損失顯著,殘留率僅為33.60%,96 h 后色素顏色褪去為無(wú)色。結(jié)果顯示,室內(nèi)散射光、紫外光和避光對(duì)色素穩(wěn)定性無(wú)明顯影響,而太陽(yáng)光對(duì)色素的穩(wěn)定性有顯著影響。因此,該色素在應(yīng)用保存過(guò)程中應(yīng)避免太陽(yáng)光的直射。
圖3 光照對(duì)紫紅色色素穩(wěn)定性的影響Fig.3 Effect of light on the stability of the amaranth pigments
圖4 H2O2對(duì)紫紅色色素穩(wěn)定性的影響Fig.4 Effect of H2O2on the stability of the amaranth pigments
天然色素通常可以被氧化或還原成另一種化學(xué)結(jié)構(gòu)[15]。氧化劑H2O2對(duì)紫紅色色素的影響,結(jié)果如圖4 所示。隨著H2O2濃度的增加,色素的殘存率降低,且在2 h 內(nèi)色素有效成分明顯減少,處理時(shí)間越長(zhǎng),色素殘留量越少。結(jié)果表明,氧化劑H2O2對(duì)色素的穩(wěn)定性有顯著影響。
由圖5 可知,隨著還原劑Na2SO3濃度、反應(yīng)時(shí)間的增加,紫紅色色素吸光度增加。當(dāng)濃度低于10 μg/mL 時(shí),增色作用明顯;濃度高于10 μg/mL 時(shí),增色作用趨于平緩。結(jié)果顯示,還原劑Na2SO3對(duì)色素具有增色作用。
圖5 Na2SO3對(duì)紫紅色色素穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effect of Na2SO3on the stability of the amaranth pigments
表1 金屬離子對(duì)紫紅色素穩(wěn)定性的影響Table 1 Effect of metal ions on the stability of the amaranth pigments
由表1 可知,不同濃度的金屬離子Na+、K+、Ca2+、Mg2+對(duì)紫紅色色素穩(wěn)定性影響不大,而加入Zn2+使色素顏色明顯變淺,Cu2+、Fe3+使色素顏色變?yōu)樽厣?。由結(jié)果可知,該色素對(duì)Zn2+、Cu2+、Fe3+敏感,對(duì)其他多種常見(jiàn)金屬離子穩(wěn)定性良好。
如圖6 所示,在溶液中分別加入氯化鈉、氯化鉀、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖和淀粉,色素吸光度無(wú)明顯變化;而加入檸檬酸或抗壞血酸后,溶液吸光度明顯減小,這可能是因?yàn)榧尤胨嵝晕镔|(zhì)時(shí)溶液酸性增強(qiáng),從而使色素不穩(wěn)定,這與pH 對(duì)色素的影響相一致。結(jié)果表明鹽類(lèi)和糖類(lèi)食品添加劑對(duì)色素具有護(hù)色作用,酸性添加劑不利于色素的穩(wěn)定。
圖6 食品添加劑對(duì)紫紅色素穩(wěn)定性的影響Fig.6 Effect of food additives on the stability of the amaranth pigments
ABTS 試驗(yàn)是基于抗氧化劑清除穩(wěn)定的ABTS自由基能力的測(cè)定。如圖7 所示,隨著色素濃度(0.8~12.5 mg/mL)的增加,清除ABTS 自由基的能力增強(qiáng)。在濃度為12.5 mg/mL 時(shí),色素對(duì)ABTS自由基的清除率達(dá)到99.69%。由此可知,該色素明顯含有抗氧化劑,并顯示了很強(qiáng)的清除ABTS 自由基的能力。
圖7 紫紅色素對(duì)ABTS 自由基的清除能力Fig.7 ABTS radical scavenging activity of the amaranth pigments
如圖8 所示,隨著色素濃度(2.5~12.5 mg/mL)的增加,對(duì)羥基自由基的清除能力增強(qiáng)。當(dāng)達(dá)到12.5 mg/mL 時(shí),其清除率達(dá)到80.95%。結(jié)果顯示,該色素具有一定清除羥基自由基的能力。
圖8 色素對(duì)羥基自由基的清除能力Fig.8 Hydroxyl radical scavenging activity of the amaranth pigments
本文通過(guò)分光光度法考察了紫球藻共生真菌發(fā)酵產(chǎn)物中紫紅色色素的穩(wěn)定性,并進(jìn)一步研究了該色素抗氧化能力。此色素具有一定的耐熱性,可高溫(80 ℃)加熱,色素在中性和弱酸性條件下穩(wěn)定,鹽類(lèi)、糖類(lèi)食品添加劑以及金屬離子K+、Na+、Ca2+、Mg2+對(duì)色素穩(wěn)定性無(wú)明顯影響。而太陽(yáng)光、氧化劑會(huì)使色素褪色,Cu2+、Fe3+使色素變色,影響其穩(wěn)定性,在加工應(yīng)用中應(yīng)避免這些因素。同時(shí),該色素還具有抗氧化能力,色素能顯著地清除ABTS和羥基自由基,清除率分別達(dá)到99.69% 和80.95%。該紫紅色色素含有多種成分,需進(jìn)一步分離、鑒定;另外可對(duì)該菌產(chǎn)色素的條件進(jìn)行優(yōu)化,為該菌應(yīng)用于工業(yè)生產(chǎn)提供依據(jù)。
1 Gunasekaran S,Poorniammal R.Optimization of fermentation conditions for red pigment production from Penicillium sp.under submerged cultivation.Afr J Bio-technol,2008,7:1894-1898.
2 Aberoumand A.A review article on edible pigments properties and sources as natural biocolorants in food stuff and food industry.World J Dairy Food Sci,2011,6:71-78.
3 Buckow R,Kastell A,Terefe NS,et al.Pressure and temperature effects on degradation kinetics and storage stability of total anthocyanins in blueberry juice.J Agric Food Chem,2010,58:10076-10084.
4 Murthy pushpa S,Manjunatha MR,Sulochannama G,et al.Extraction,characterization and bioactivity of coffee anthocyanins.Eu J Biol Sci,2012,4:13-19.
5 Cai ZX,Wu JL,Chen L,et al.Purification and characterization of aquamarine blue pigment from the shells of abalone(Haliotisdiscus hannai Ino).Food Chem,2011,128:129-133.
6 Malik K,Tokkas J,Goyal S.Microbial pigment:A review.Int J Microbial Res Technol,2012,1:361-365.
7 Meinicke RM,Vendruscolo F,Moritz DE,et al.Potential use of glycerol as substrate for the production of red pigments by Monascus ruberin submerged fermentation.Biocat Agric Biochem,2012,1:238-242.
8 Daniel JD,Silvana TS,Plinho FH,et al.Production of extracellular b-glucosidase by Monascus purpureus on different growth substrates.Process Biochem,2007,42:904-908.
9 Tan YL(譚友莉),Ma YT(馬云桐),Yan ZY(嚴(yán)鑄云),et al.Study on the stability of red pigments produced by endophytic fungi in coptis deltoidea C.Y.Cheng et Hsiao.Nat Prod Res Dev(天然產(chǎn)物研究與開(kāi)發(fā)),2013,25:1101-1106.
10 Qiu WF(邱偉芬),Wang HF(汪海峰).Stability of natural lycopene under different conditions.J Food Sci(食品科學(xué)),2004,25(2):56-60.
11 Ouyang J(歐陽(yáng)杰),Zhao JL(趙佳麗),Chen XH(陳旭華).Advances in stabilization technology for natural pigments.Food Sci Tech(食品科技),2006,31:182-184.
12 Lu XH(盧雪華),Cheng J(成堅(jiān)),Bai WD(白衛(wèi)東).Present situation and countermeasures of the food pigment Industry in our country.China Condiment(中國(guó)調(diào)味品),2010,5(35):35-39.
13 Wu X(武俠),Liu AH(劉愛(ài)華),Cao JZ(曹君正),et al.A kind of Lecanicillium psalliotae strains(一種刀孢蠟蚧菌菌株).CN102417886 B,2013-5-22.
14 Cao JG,Xia X,Chen XF,et al.Characterization of flavonoids from Dryopteris erthrosora and evaluation of their antioxidant,anticancer and acetylcholinesterase inhibition activities.Food Chem Toxicol,2013,51:242-250.
15 Kannan P,Ganjewala D.Preliminary characterization of melanin isolated from fruits and seeds of Nyctanthes arbortristis.J Sci Res,2009,1:655-661.