硫酸化發(fā)酵靈芝胞外多糖的組成與結(jié)構(gòu)

張 玨， 沈 潔， 劉昱均， 夏詠梅

（1.江蘇省原子醫(yī)學(xué)研究所，衛(wèi)生部核醫(yī)學(xué)重點實驗室，江蘇 無錫214063；2.食品科學(xué)與技術(shù)國家重點實驗室，江南大學(xué)，江蘇 無錫214122）

硫酸化發(fā)酵靈芝胞外多糖的組成與結(jié)構(gòu)

張 玨1，2， 沈 潔2， 劉昱均2， 夏詠梅2

（1.江蘇省原子醫(yī)學(xué)研究所，衛(wèi)生部核醫(yī)學(xué)重點實驗室，江蘇 無錫214063；2.食品科學(xué)與技術(shù)國家重點實驗室，江南大學(xué)，江蘇 無錫214122）

從靈芝深層發(fā)酵液中獲得的靈芝胞外多糖，經(jīng)硫酸化后其抑癌活性大幅提升。硫酸化后，靈芝胞外多糖的結(jié)構(gòu)和構(gòu)象都發(fā)生一定的變化。經(jīng)單糖組成分析和光譜初步解析，硫酸化靈芝胞外多糖的單糖組成為鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖，其摩爾比為9∶3∶2∶4∶48；其主鏈可能是以α-D-Gal（1→6）為主或混雜有α-D-Gal，Rha，α-D-Glc，α-D-Man以及Ara為側(cè)鏈，其硫酸基團(tuán)可能接在C-3、C-4、C-6位上。硫酸化前靈芝多糖的構(gòu)象主要為單螺旋結(jié)構(gòu)，而修飾后呈三維螺旋結(jié)構(gòu)，x-衍射亦證實其結(jié)構(gòu)的有序變化。

靈芝；多糖；硫酸化；多糖硫酸酯；發(fā)酵

化學(xué)療法、輻射療法等在殺死腫瘤、癌細(xì)胞的同時，也帶來極大的毒副作用。而腫瘤免疫療法主要是通過刺激機體的免疫系統(tǒng)如淋巴系統(tǒng)等使機體免疫力得到恢復(fù)和提高，再由機體本身的抵抗力去殺死腫瘤細(xì)胞，毒副作用小。真菌多糖如靈芝多糖是一類免疫療法的保健品[1-8]，是毒副作用小、安全、療效高的抗腫瘤免疫調(diào)節(jié)劑，在腫瘤免疫治療方面有良好的應(yīng)用前景，但往往活性不高。硫酸化修飾真菌多糖則是提升多糖抑癌作用的重要手段[2-9]。多糖抗腫瘤、提高機體免疫活性的功能與其分子組成、相對分子質(zhì)量、溶解度、支化度、黏度等因素有關(guān)外，還與其立體構(gòu)型密切相關(guān)；因此多糖經(jīng)過硫酸化修飾后，其結(jié)構(gòu)、相對分子質(zhì)量、溶解度會有所變化，進(jìn)而可能引起其生物活性的變化，甚至可以為多糖帶來新的活性和功能。前期實驗表明，從靈芝深層發(fā)酵液中獲得的靈芝胞外多糖，經(jīng)硫酸化后其抑癌活性大幅提升[10]。目前對子實體多糖或其硫酸化衍生物的結(jié)構(gòu)研究較多[11-17]，而子實體多糖本身因其產(chǎn)地不同而差異較大。發(fā)酵靈芝的胞內(nèi)多糖與子實體多糖組成相對較為類似，但是其胞內(nèi)外多糖的組成可控性遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過子實體多糖，因而發(fā)酵靈芝多糖是定向生產(chǎn)靈芝多糖的有效途徑。其中，發(fā)酵靈芝的胞外多糖活性相對較低，更有必要通過硫酸化而改善其生物活性；但目前對硫酸化發(fā)酵靈芝胞外多糖的結(jié)構(gòu)組成還缺乏應(yīng)有的認(rèn)識。

1 材料與方法

1.1 材料

硫酸化發(fā)酵靈芝胞外多糖（GLPs）：作者所在實驗室自制；化學(xué)試劑：均為分析純，購自中國醫(yī)藥集團(tuán)上?；瘜W(xué)試劑公司；透析袋（截流相對分子質(zhì)量3 500）：購自華美生物工程公司上海分公司。

1.2 儀器

紫外光譜儀：HitachiU-3000；紅外光譜儀：ThermoNicoletNexus；核磁共振儀：BrukerARX400；X-衍射儀：BrukerD8AXS。

1.3 方法

1.3.1 硫酸化發(fā)酵靈芝胞外多糖（GLPs）的制備作者所在研究室保藏的靈芝菌種，30℃下150 r/min液體深層二級培養(yǎng)11 d，即得靈芝發(fā)酵液。將靈芝發(fā)酵液離心后取其上清液，適當(dāng)濃縮后在4℃下用4倍體積醇沉，經(jīng)脫蛋白后凍干則得到發(fā)酵靈芝胞外粗多糖。所得多糖用氨基磺酸-吡啶混合試劑進(jìn)行硫酸化，反應(yīng)至取代度不再上升后停止反應(yīng)，經(jīng)碳酸氫鈉溶液中和、醇沉、乙醇洗滌和去離子水透析，凍干得到硫酸化靈芝胞外多糖。改變多糖與氨基磺酸的比例可以得到不同取代度的GLPs。然后，用DEAE纖維素柱（2.6 cm×30 cm）分離上述GLPs水溶液，以H2O和0.2、1.0、1.5 mol/L NaCl溶液進(jìn)行梯度洗脫（洗脫速度48 mL/h，3 mL/管；上樣量為4 mL）。將上述收集到的多糖組分透析，4℃下先用蒸餾水透析48 h，再用超純水透析48 h，中途每8小時換水一次。然后減壓濃縮，再以SephadexG75凝膠柱（2.6 cm×100 cm）進(jìn)行分離，以H2O進(jìn)行洗脫（流速36 mL/h，5 mL/管；上樣量為10 mL）。最后凍干得到GLPs供分析用。

1.3.2 GLPs的單糖組分分析

1）多糖的水解：15 mg多糖溶液中加入2 mol/L的硫酸溶液2 mL，封管，120℃下水解5 h。用碳酸鈉中和水液，過濾，冷凍干燥。蒸干后的殘留物在60℃下真空干燥8 h，然后置干燥瓶中冷卻備用。

2）多糖的衍生化：10 mg多糖的水解物或標(biāo)準(zhǔn)單糖經(jīng)干燥后，置于10 mL反應(yīng)管中，加10 mg鹽酸羥胺和0.5 mg吡啶，在90℃水浴中反應(yīng)30 min，取出冷卻至室溫，再加入0.5 mL醋酸酐，90℃水浴中繼續(xù)反應(yīng)30 min。將反應(yīng)液減壓蒸干，用0.5 mL重蒸氯仿提取，取氯仿層用于氣相色譜分析。

3）氣相色譜分析條件：Shimadzu，彈性石英毛細(xì)管柱 （0 V1701，30 m，I.D.0.32 mm，液膜厚度1.05 μm）；程序升溫，185℃保持3 min，3℃/min至240℃，維持25 min。汽化室溫度260℃，F(xiàn)ID檢測溫度260℃，載氣壓力（N2）0.6 MPa，氫氣0.65 MPa，空氣0.5 MPa，分流比30∶1。

4）相對分子質(zhì)量測定：采用HPLC凝膠過濾法。Water 600 Controller，2410RefractiveIndex檢測器，WatersUltrahydrogelTMLinear7.8 mm×300 mm柱；流動相為0.1 mol/L NaNO3；流速0.9 mL/min，進(jìn)樣量10 μL。

2 結(jié)果與討論

2.1 硫酸化靈芝胞外多糖的分離及其主要組分的相對分子質(zhì)量

靈芝多糖經(jīng)硫酸化修飾后分子中含陰離子基團(tuán)，而未修飾的多糖分子仍呈電中性，經(jīng)過DEAE-纖維素陰離子交換柱后，因彼此的電性不同而被先后洗脫下來，洗脫結(jié)果見圖1、表1。從圖1可知，隨著取代度的提高，水洗脫組分收率降低，鹽組分收率增加，尤其是1.0 mol/L NaCl洗脫組分的收率大大提高，因而使得硫酸化后靈芝多糖的相對分子質(zhì)量分布變窄，見圖2。

圖1 硫酸化GLPs在DEAE上的洗脫曲線Fig.1 ElutioncurvesofsulfatedGLPsonDEAE-cellulosecolumneluted by H2O and saline

收集硫酸化靈芝胞外多糖1.0 mol/L NaCl洗脫組分，對其進(jìn)行透析，濃縮。以SephadexG75凝膠柱對進(jìn)行分離，水洗脫，隔管檢測，有兩個吸收峰，但以其中一個組分為主，收集其主要部分組分進(jìn)行透析、濃縮、冷凍干燥以進(jìn)行后續(xù)的結(jié)構(gòu)分析。所得樣品經(jīng)瓊脂糖電泳、HPLC分析見圖2。結(jié)果表明，其組成相對分布較窄。由于采用的是堿性瓊脂糖電泳系統(tǒng)和甲苯胺藍(lán)顯色劑，只有酸性多糖才能泳動和染色，由此可以說明，靈芝胞外多糖GLP已被硫酸酯化，HPLC凝膠過濾結(jié)果為單一峰。

采用凝膠排阻色譜法，以葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品作標(biāo)準(zhǔn)曲線（R2=0.999 2）。經(jīng)測定發(fā)酵靈芝胞外多糖的相對分子質(zhì)量為10 967，相對分子質(zhì)量分布為16.56，GLPs的相對分子質(zhì)量為18 944，相對分子質(zhì)量分布為4.34。硫酸化后靈芝多糖的相對分子質(zhì)量分布均變窄，發(fā)酵靈芝胞外多糖的相對分子質(zhì)量也接近于子實體多糖[17]。

表1 硫酸化GLPs在DEAE上的分離結(jié)果Table 1 Separation results of sulfated GLPs on DEAE-cellulose

圖2 GLP（左條帶）與硫酸化GLPs（右條帶）瓊脂糖凝膠電泳圖譜及硫酸化GLPsHPLC圖Fig.2 Agaroseelectrophoresis of GLP（left lane）and sulfated GLPs（right lane）and HPLC profile of sulfated GLPs

2.2 硫酸化靈芝胞外多糖的結(jié)構(gòu)分析

靈芝胞外多糖硫酸化后未出現(xiàn)新的紫外吸收（圖3a），而紅外光譜（圖3b）表明，GLPs除了多糖母體特征吸收峰得以保留外，還增加了1 266 cm-1左右S=O的伸縮振動峰；C—O—S的拉伸振動多在810～830 cm-1，多糖母體832.57 cm-1為α-型差向異構(gòu)體的C—H平伏鍵吸收峰（是α-D-甘露吡喃糖、半乳吡喃糖或α-D-葡萄吡喃糖的特征吸收峰），因而GLPs在832.37 cm-1的吸收峰變寬，比多糖母體832.57 cm-1的吸收峰略向低波數(shù)移動。同時，在3 600～3 200 cm-1之間為一組較寬的糖O—H的伸縮振動特征吸收峰，GLP的峰值偏近3 412 cm-1，說明分子間氫鍵數(shù)量較分子內(nèi)氫鍵數(shù)量占優(yōu)勢；而經(jīng)過硫酸酯化修飾后，GLPs在此處的羥基伸縮振動吸收峰偏向高波數(shù)并且峰形變窄，這是因為酯化后，SO的引入使得分子內(nèi)氫鍵數(shù)量增加而分子間氫鍵相應(yīng)減少，所以硫酸化后多糖水溶性得到改善。此外，2 938.58 cm-1和2 929.77 cm-1的亞甲基C-H伸縮振動峰為糖單元C6的特征吸收峰，酯化后其吸收峰減弱；因為C6位上的羥基空間位阻較小，所以一般硫酸酯化容易在C6發(fā)生。

圖3 GLP與硫酸化GLPs紫外和紅外圖譜Fig.3 UV and IR Spectrum of GLP and sulfated GLPs

硫酸化靈芝胞外多糖GLPs的核磁共振碳譜見圖4。由于多步分離，GLPs多糖分子鏈組成比硫酸化前相對簡單。

糖鏈中未發(fā)生取代的C6通常位于δ60～64，若發(fā)生取代則通常移至 δ67～70；GLPs的13C譜在δ69.118左右出現(xiàn)信號，由此進(jìn)一步推測硫酸基在C-6位發(fā)生了取代。通常糖鏈中未取代C-2、C-3和C-4的化學(xué)位移在δ70～77，取代后則共振位移至δ77～85。GLP在此區(qū)域無信號，說明糖鏈中可能以1-6鏈接為主；GLPs出現(xiàn)δ79.475的信號，因而在此三個位置中發(fā)生了硫酸基取代。由于在δ100區(qū)域，異頭碳為一組峰，因而我們推測在C-3、C-4的可能性比較大。

圖4 GLPs（a）與硫酸化GLP（b）核磁共振碳譜Fig.413C NMR spectrum of sulfated GLPs（a）and GLP（b）

2.3 硫酸化靈芝胞外多糖單糖組成

硫酸化靈芝胞外多糖GLPs水解成單糖后的氣相色譜見圖5。GLPs由鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖組成，糖組成比較簡單。經(jīng)計算得出的單糖組成摩爾比為鼠李糖∶阿拉伯糖∶甘露糖∶葡萄糖∶半乳糖=9∶3∶2∶4∶48。

已有文獻(xiàn)報道的靈芝多糖的單糖組成以葡萄糖為主，半乳糖雖然也是發(fā)現(xiàn)的主要單糖組成之一，但其含量一般不高[13，18-20]。本研究的發(fā)酵靈芝胞外多糖組成中半乳糖近半，糖鏈組成以半乳糖為主，這種多糖組成與作者所在實驗室類似研究結(jié)果相近，且為作者所在實驗室首次發(fā)現(xiàn)和報道[21]。這可能是由于靈芝菌有著強大的酶系且酶活力強，可以對纖維、糖類、蛋白質(zhì)等多種物質(zhì)加以利用并產(chǎn)生豐富的次生代謝產(chǎn)物，因此發(fā)酵過程的細(xì)微差異，如靈芝菌株的不同、培養(yǎng)基基質(zhì)的不同、發(fā)酵條件等諸多因素，都會引起多糖產(chǎn)物代謝的不同響應(yīng)。目前，有關(guān)高等真菌多糖合成代謝方面的信息知之甚少，對靈芝多糖的生物合成途徑也是少有研究和報道，對于影響靈芝多糖種類和單糖構(gòu)成的關(guān)鍵酶及這些多糖的單糖糖元的后期聚合途徑仍然不了解，這些都需要今后進(jìn)一步深入研究，以對靈芝多糖定向發(fā)酵調(diào)控提供借鑒。

圖5 硫酸化GLP水解產(chǎn)物氣相色譜Fig.5 GC chromato graphy of hydrolyzed GLP sulfates

根據(jù)其單糖組成分析，結(jié)合紅外光譜分析中多糖母體有832.57 cm-1的吸收峰，此為α-型差向異構(gòu)體的C-H取平伏鍵的吸收峰，是α-D-甘露吡喃糖、α-D-半乳吡喃糖或α-D-葡萄吡喃糖的特征吸收峰[17]，結(jié)合NMR譜的結(jié)果推測：靈芝多糖為雜多糖，其主鏈可能以α-D-Gal（1→6）為主或混雜有α-D-Gal，Rha，α-D-Glc，α-D-Man以及Ara為側(cè)鏈，其硫酸酯中硫酸基團(tuán)可能接在C-6、C-3、C-4位上。

2.4 硫酸化靈芝胞外多糖的構(gòu)象分析

靈芝多糖硫酸化前后與剛果紅形成的復(fù)合物在不同濃度的NaOH溶液中其最大吸收波長的變化見圖6，未修飾的GLP的構(gòu)象為單螺旋結(jié)構(gòu)[21]。

圖6 硫酸化前后GLP與剛果紅復(fù)合物λmax變化Fig.6 Changes in the absorption maximum （λmax）of the Congored-GLP/sulfated GLP complex

GLPs與剛果紅形成的復(fù)合物的最大吸收波長（λmax）在NaOH濃度為0.05～0.15 mol/L時，λmax有一穩(wěn)定區(qū)；當(dāng)NaOH濃度大于0.25 mol/L后，λmax急劇下降到與GLP相同。以上結(jié)果表明，GLPs在中性至弱堿性范圍內(nèi)是一有序的多股螺旋，在中等堿性條件下（0.15～0.3 mol/L NaOH溶液）發(fā)生構(gòu)象轉(zhuǎn)變，在強堿性條件下則有序螺旋結(jié)構(gòu)發(fā)生解體，x-衍射圖見圖7?？梢钥闯?，修飾前后靈芝胞外多糖的糖鏈分子由較為寬泛的松散無定形結(jié)構(gòu)變?yōu)橐欢ǖ挠行蚪Y(jié)構(gòu)。許多糖單位的羥基被—NH2、—SO3等基團(tuán)后，糖環(huán)構(gòu)象可能扭曲或轉(zhuǎn)變并利于形成非共價鍵，而且?guī)噪姾苫鶊F(tuán)間的相互排斥作用導(dǎo)致卷曲構(gòu)象呈伸展和剛性狀態(tài)[22-23]。當(dāng)多糖環(huán)被硫酸基修飾，這些陰離子基團(tuán)間的排斥作用使糖鏈鏈段伸長；而且部分硫酸基可能會和糖環(huán)上的羥基形成氫鍵，因而在糖鏈局部可能形成了螺旋結(jié)構(gòu)，呈有活性的高級構(gòu)象，且有序性增大。

圖7 GLPX-衍射圖Fig.7 X-ray diffraction of GLP and sulfated GLP

3 結(jié)語

目前多糖硫酸化修飾的研究多集中于子實體多糖[24]，對發(fā)酵（靈芝）多糖硫酸化的報道相對較少；硫酸酯化的方法的報道多集中在氯磺酸-吡啶法[25]和三氧化硫-吡啶法[26]。前者反應(yīng)活性大但副反應(yīng)多，后者反應(yīng)較溫和，但試劑的價格過于昂貴；高取代度的硫酸酯化（靈芝）多糖獲取難度大，一般均低于1.5[27-28]，這也是有關(guān)硫酸化（靈芝）多糖的活性和取代度的對應(yīng)關(guān)系報道仍然不多的原因之一；針對氨基磺酸為硫酸酯化試劑的多糖衍生化研究也不多見。作者對采用氨基磺酸法制備的不同取代度的硫酸化靈芝胞外多糖進(jìn)行了分離純化，并對發(fā)酵靈芝胞外多糖經(jīng)修飾后其結(jié)構(gòu)組成、硫酸基團(tuán)引入后的結(jié)構(gòu)及構(gòu)象變化進(jìn)行了研究。結(jié)果發(fā)現(xiàn)，隨著多糖硫酸基取代度的提高，糖鏈分子電性增加，水洗脫的中性多糖回收率下降，鹽洗脫組分的收率上升，其中1.0 mol/L NaCl次脫組分的回收率提高顯著。紅外光譜中亞甲基（—CH2—）的C—H伸縮振動峰減弱，說明硫酸酯化可能在C6發(fā)生取代。硫酸化靈芝胞外多糖單糖組成為鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖，比例為9∶3∶2∶4∶48；其主鏈可能是以α-D-Gal（1→6）為主或混雜有α-D-Gal，Rha，α-D-Glc，α-D-Man以及Ara為側(cè)鏈，其硫酸基團(tuán)可能接在C-6、C-3、C-4位上。比旋光度、構(gòu)象、X-衍射分析結(jié)果表明，經(jīng)硫酸化后，靈芝胞外多糖的一級結(jié)構(gòu)和高級結(jié)構(gòu)都發(fā)生一定變化，修飾前其構(gòu)象為單螺旋結(jié)構(gòu)，修飾后呈三維螺旋結(jié)構(gòu)，由此引起其抗腫瘤活性的增加[10]。

[1]Saltarelli R，Ceccaroli P，Iotti M，et al.Biochemical characterization and antioxidant activity of mycelium of Ganoderma lucidum from central italy[J].Food Chemistry，2009，116（1）：143-151.

[2]Bussing A，Hubner J.Asiatische Heilpilze[J].Der Onkologe，2009，15（5）：519-525.

[3]Sadava D，Still D W，Mudry R R，et al.Effect of Ganoderma on drug-sensitive and multidrug-resistant small-cell lung carcinoma cells[J].Cancer Letters，2009，277（2）：182-189.

[4]Liu Y W，Gao J L，Guan J，et al.Evaluation of antiproliferative activities and action mechanisms of extracts from two species of Ganoderma on tumor cell lines[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2009，57（8）：3087-3093.

[5]Liu J，Shiono J，Shimizu K，et al.Ganoderic acid DM：anti-androgenic osteoclastogenesis inhibitor[J].Bioorganic&Medicinal Chemistry Letters，2009，19（8）：2154-2157.

[6]Chiu J，Yau T，Epstein R.Complications of traditional Chinese/herbal medicines（TCM）-a guide for perplexed oncologists and other cancer caregiver[J].Supportive Carein Cancer，2009，17（3）：231-240.

[7]Harhaji L，Mijatovic S，Maksimov-Ivanic D，et al.Anti-tumor effect of coriolusversicolor methanol extract against mouse B16 melanoma cells：in vitro and in vivo study[J].Foodand Chemical Toxicology，2008，46（5）：1825-1833.

[8]Rubel R，Santa H S D，F(xiàn)ernandes L C，et al.High immunomodulatory and preventive effects againstsarcoma 180 in mice fed with Ling Zhi or Reishi mushroom Ganoderma lucidum（W.Curt.：Fr.）P.Karst.（Aphyllophoro mycetideae）mycelium[J].International Journal of Medicinal Mushrooms，2008，10（1）：37-48.

[9]Ye L B，Zhang J S，Zhou S A，et al.Preparation of a novel sulfated glycopeptide complex and inhibiting L1210 cell lines property in vitro[J].Carbohydrate Polymers，2009，77（2）：276-279.

[10]Zhang J，Liu Y J，Park H S，et al.Antitumor activity of sulfated extracellular polysaccharides of Ganoderma lucidum from the submerged fermentation broth[J].Carbohydrate Polymers，2012，87（2）：1539-1544.

[11]Zhou Z Y，Tang Y P，Xiang J，et al.Neuroprotective effects of water-soluble Ganoderma lucidum polysaccharides on cerebral ischemic injury in rats[J].Journal of Ethnopharmacology，2010，131（1）：154-164.

[12]Liu W，Wang H Y，Yao W B，et al.Effects of sulfation on the physicochemical and functional properties of a water-insoluble polysaccharide preparation from Ganoderma lucidum[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2010，58（6）：3336-3341.

[13]He J Z，Shao P，Ni H D，et al.Study on the structure and constituents of polysaccharide from Ganoderma lucidum[J]. Spectroscopy and Spectral Analysis，2010，30（1）：123-127.

[14]Feng Y L，Li W Q，Wu X Q，et al.Rapid and efficient microwave-assisted sulfate modification of lentinan and its antioxidant and antiproliferative activities in vitro[J].Carbohydrate Polymers，2010，82（3）：605-612.

[15]Chen X Y，Zhang L N，Cheung P C K.Immunopotentiation and anti-tumor activity of carboxymethylated-sulfated beta-（11→3）-d-glucan from Poriacocos[J].International Immunopharmacology，2010，10（4）：398-405.

[16]Wang J G，Zhang L N，Yu Y H，et al.Enhancement of antitumor activities in sulfated and carboxymethylated polysaccharides of Ganoderma lucidum[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2009，57（22）：10565-10572.

[17]張惟杰.糖復(fù)合物生化研究技術(shù)（第二版）[M].杭州：浙江大學(xué)出版社，1994.

[18]孫冬平，潘鋒，史小麗，等.靈芝菌發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化及靈芝胞外多糖的分離[J].中草藥，2000，12（31）：941-943.

SUN Dongping，PAN Feng，SHI Xiaoli，et al.Selection of optimal medium and extraction and purification of Ganoderma lucidum extracellular polysaccharide[J].Chinese Traditional and Herbal Drugs，2000，12（31）：941-943.（in Chinese）

[19]黃靜涵，艾斯卡爾·艾拉提，毛健.靈芝多糖的分離純化及結(jié)構(gòu)鑒定[J].食品科學(xué)，2011，32（12）：301-304.

HUANG Jinghan，Aisikaer-Ailati，MAO Jian.Purification and structural characterization of polysaccharides of Ganoderma lucidum[J].Food Science，2011，32（12）：301-304.（in Chinese）

[20]趙桂梅，張麗霞，于庭敏，等.靈芝孢子粉水溶性多糖分離、純化及結(jié)構(gòu)分析[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā)，2005，17（2）：182-185.

ZHAO Guimei，ZHANG Lixia，YU Tingmin，et al.Chemical study on the water soluble polysaccharide from spores of Ganoderma lucidum[J].Natural Product Research and Development，2005，17（2）：182-185.（in Chinese）

[21]Li Y Q.Study on the fermentation of traditional Chinese medicines by ganodermalucidum and anti-Hepatitis B effects of the fermentation products[J].Doctoral dissertation of Jiangnan University，2004.

[22]Yamamoto I，Takayama K，Honma K，et al.Synthesis，structure and antiviral activity of cellulose and its branched derivatives[J]. Carbohydrate Polymers，1991，14（1）：53-63.

[23]Xu S Q，Xu X J，Zhang L N，et al.Branching structure and chain conformation of water-soluble glucan extracted from Auriculariaauricula-judae[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2012，60（13）：3498-3506.

[24]黃小燕，孔祥峰，王德云.多糖硫酸化修飾和多糖硫酸酯的研究進(jìn)展[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā)，2007，19（2）：328-332.

HUANG Xiaoyan，KONG Xiangfeng，WANG Deyun.Research progress on sulfating modification of polysaccharides and sulfated polysaccharides[J].Natural Product Research and Development，2007，19（2）：328-332.（in Chinese）

[25]Alban S，Schauerte A，F(xiàn)ranz G.Anticoagulant sulfatedpolysaccharides：Part I.Synthesis and structure-activity relationships of new pullulan sulfates[J].Carbohydrate Polymers，2002，47：267-276.

[26]Wu S J，Chun M W，Shin，K H，et al.Chemical sulfonation and anticoagulant activity ofacharan sulfate[J].Thrombosis Research，1998，92：273-281.

[27]Zhu Z Y，Liu Y，Si C L，et al.Sulfated modification of the polysaccharide from Cordyceps gunnii mycelia and its biological activities[J].Carbohydrate Polymers，2013，92（1）：872-876.

[28]Wei D F，Wei Y X，Cheng W D，et al.Sulfated modification，characterization and antitumor activities of Radix hedysari polysaccharide[J].International Journalof Biology Macromolecule，2012，51（4）：471-476.

Constituents and Structures of Sulfated Extracellular Polysaccharides from Ganoderma lucidum Fermentation Broth

ZHANG Jue1，2， SHEN Jie2， LIU Yujun2， XIA Yongmei2
（1.Key Laboratory of Nuclear Medicine of Ministry of Health，Jiangsu Institute of Nuclear Medicine，Wuxi 214063，China；2.State Key Laboratory of Food Science and Technology，Jiangnan University，Wuxi 214122，China）

The sulfation of extracellular polysaccharides of Ganoderma lucidum （GLP）from the submerged fermentation broth can dramatically enhance their antitumor activity.The structure and conformation of GLP might change due to the sulfation.The structure of the sulfated GLP was analysized with glycosyl residual composition analysis，IR，UV and NMR.The polysaccharide consists of rhamnose，arabinose，mannose，glucose and galactose with a molar ratio of 9∶3∶2∶4∶48.The main chain of the polysaccharide may consist of the unit of α-D-Glc（1→6）or the side chain is mixed of α-D-Glc，Rha，α-D-Man，and Ara.The sulfate groups may be connected to C-3，C-4，and C-6 of the sugar unit.Meanwhile，the sulfated polysaccharides present very different conformation comparing to the native polysaccharides.The sulfated polysaccharides possessed a triple helix whereas the native polysaccharide preferred the single helical，which was also confirmed by x-ray diffraction.

Ganoderm lucidum，polysaccharide，sulfation，polysaccharide sulfate，fermentation

O 657.3

A

1673—1689（2015）05—0547—07

2014-03-19

食品科學(xué)與技術(shù)國家重點實驗室自由探索基金資助項目（SKLF-ZZB-201504）。

張 玨（1969—），女，上海人，工學(xué)博士，副研究員，主要從事天然產(chǎn)物活性和免疫學(xué)方面的研究。E-mail：zhangjue@jsinm.org