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    一種適用于林地土壤微生物RAPD體系的建立1)

    2014-12-28 07:54:14賈丹劉玉龍邵英男張鑫炎
    中國林副特產(chǎn) 2014年1期
    關(guān)鍵詞:泳道瓊脂糖條帶

    賈丹,劉玉龍,邵英男,張鑫炎

    (1.黑龍江省森林工程與環(huán)境研究所,哈爾濱 150081;2.森林可持續(xù)經(jīng)營與環(huán)境微生物工程黑龍江省重點實驗室)

    0 前言

    目前,傳統(tǒng)的、針對土壤微生物的研究,大都是基于培養(yǎng)分離的方法。隨著人們對土壤中微生物的原位生存狀態(tài)研究,越來越發(fā)現(xiàn)常規(guī)的分離培養(yǎng)方法很難全面地估價微生物群落多樣性。從土壤中簡單提取和平板培養(yǎng)計數(shù)不能得到土壤微生物在土壤生態(tài)系統(tǒng)中的生活特征和生態(tài)功能的信息。應(yīng)用現(xiàn)代生物化學(xué)和分子生物學(xué)方法,成功克服了傳統(tǒng)微生物生態(tài)學(xué)研究技術(shù)的局限性[1]。

    與傳統(tǒng)培養(yǎng)的方法相比較,分子標記具有許多明顯的優(yōu)越性,表現(xiàn)為:(1)直接以核酸作為研究對象,在生物體的各個組織、各個發(fā)育階段均可檢測到,不受季節(jié)、環(huán)境限制,與發(fā)育時期無關(guān),可用于植物基因型的早期選擇;(2)標記數(shù)量極多,遍布整個基因組,可檢測座位幾乎是無限的;(3)多態(tài)性高,自然界存在許多等位變異,無須專門創(chuàng)造特殊的遺傳材料;(4)許多標記表現(xiàn)為共顯性,能區(qū)別純合基因型和雜合基因型,可提供完整的遺傳信息[2]。

    近年來發(fā)展起來的隨機擴增的多態(tài)性DNA(RAPD,Random Amplified Polymorphic DNA)分子遺傳標記技術(shù)以檢測多態(tài)性DNA為目的,因快速、簡便的特點,其在物種分類和親緣關(guān)系鑒定、基因組分析等方面得到廣泛應(yīng)用,也可用于在DNA水平上反映微生物群落的多樣[3-5]。

    但是RAPD標記也有缺點,對反應(yīng)條件極為敏感,稍有改變就會影響擴增產(chǎn)物的重現(xiàn)[6],有時產(chǎn)生的多態(tài)性DNA電泳圖譜比較復(fù)雜,給樣品的檢測和結(jié)果分析帶來一定的困難。所以,為了實驗的準確性,必須要對退火溫度、Mg2+濃度、Taq酶用量等條件進行優(yōu)化,使其反應(yīng)體系更加穩(wěn)定、可靠[7-10]。

    1 材料與方法

    1.1 土壤材料

    研究區(qū)域為穆棱縣,在實驗區(qū)范圍內(nèi)共取了3種林型,分別為椴樹紅松林、云冷杉紅松林和蒙古櫟紅松林,分別在樣地中取樹木根際土壤,放入冰箱4℃冷藏保存。

    1.2 土壤DNA樣品

    實驗利用Mobio公司生產(chǎn)的強力土壤DNA提取試劑盒(Power SoilTMDNA Islation Kit)對所采集的土壤進行總DNA的提取。所得到的DNA樣品濃度均在600~1000ng/μL。OD260/OD280均在1.8左右。然后經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測發(fā)現(xiàn),主帶清晰且集中,沒有散狀的拖尾現(xiàn)象,膠孔沒有蛋白質(zhì)殘留,膠底部未見RNA污染。故用此方法得到的基因組DNA可用于后續(xù)試驗。

    1.3 PCR產(chǎn)物的檢測

    取8μL PCR產(chǎn)物與6×加樣緩沖液充分混合后,點入TAE為緩沖液的1%的瓊脂糖凝膠中,同時點入DL2000Marker進行電泳,電泳結(jié)束后在凝膠成像系統(tǒng)中檢測PCR結(jié)果。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 RAPD退火溫度的優(yōu)化

    圖1 退火溫度的優(yōu)化

    退火是PCR反應(yīng)中較為重要的一步,退火溫度的選擇也決定著PCR的成敗。由于RAPD反應(yīng)的退火溫度較低,所以本試驗對退火溫度進行了優(yōu)化。分別取35、36、37、38、39℃為退火溫度對相同引物[11-12]、相同模板、統(tǒng)一條件下進行RAPD反應(yīng),得到的結(jié)果經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳進行檢測(見圖1),退火溫度與泳道1~5相對應(yīng)(下同)。

    由電泳圖1中可見泳道1出現(xiàn)輕微的彌散的條帶,無明顯條帶出現(xiàn)。泳道2出現(xiàn)了3~4條較暗的條帶。泳道3至泳道5中均出現(xiàn)了較多的且明亮的特異性條帶。其中泳道5中出現(xiàn)了較亮的幾條特異性的條帶,但條帶數(shù)少于3、4泳道。3與4的條帶數(shù)基本相同,但是泳道4中的條帶特異性好于泳道3。這可能由于35℃與36℃下,溫度過低造成兩條變性鏈重新結(jié)合形成雙鏈或者是溫度低于最適退火溫度,而造成擴增條帶的不特異。而在39℃時,特異性提高,從而造成多態(tài)性降低。所以,選取38℃為退火溫度。

    2.2 Mg2+濃度優(yōu)化

    Mg2+的作用主要是dNTP-Mg2+與核酸骨架相互作用并能影響聚合酶的活性,Mg2+濃度對PCR擴增效率影響很大。本實驗分別選取向20μL反應(yīng)體系中加入0.8、1.0、1.2、1.4、1.6μL濃度為25mmol/L的MgCl2,統(tǒng)一條件下進行RAPD反應(yīng),得到的結(jié)果經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳進行檢測(見圖2)。

    圖2 Mg2+濃度的優(yōu)化

    由圖2可知,泳道1中只有2條較暗的條帶。泳道2~5中均得到了多態(tài)性較好的條帶。其中泳道3中得到的條帶最亮且多態(tài)性最好。這可能是由于泳道1中Mg2+濃度過低則影響PCR擴增產(chǎn)量甚至使PCR擴增失敗而不出擴增條帶。而泳道5的Mg2+濃度過高,抑制目的產(chǎn)物擴增。所以選取向20μL體系中1.2μL MgCl2。

    2.3 Taq酶用量的優(yōu)化

    圖3 Taq酶用量的優(yōu)化

    Taq DNA聚合酶是PCR反應(yīng)中重要的組成部分,決定著PCR反應(yīng)能否進行。本實驗分別選取向20μL反應(yīng)體系中加入0.15、0.2、0.25、0.30、0.35 μL規(guī)格為5U/μL的Taq DNA聚合酶。統(tǒng)一條件下進行RAPD反應(yīng),得到的結(jié)果經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳進行檢測(見圖3)。

    由圖3可知,5個泳道中的擴增效果差異較小,其中泳道3中得到的多態(tài)性較豐富且條帶較亮。故選擇向20μL體系中0.25μL Taq DNA聚合酶。

    3 結(jié)論

    通過對RAPD反應(yīng)體系中3個重要因素的優(yōu)化實驗,可以得到如下結(jié)論:1)退火溫度對RAPD反應(yīng)體系的影響較大,所以在進行RAPD實驗時應(yīng)首先對退火溫度進行優(yōu)化。本實驗得到的最優(yōu)退火溫度為38℃。2)Mg2+濃度對RAPD有一定的影響。3)Taq DNA聚合酶的用量對RAPD反應(yīng)的影響較小。

    利用上述優(yōu)化實驗最終建立適用于林地土壤微生物RAPD體系:在20μL PCR反應(yīng)體系中加入10ng土 壤 微 生 物 DNA 模 板;1.2μL 濃 度 為25mmol/L的 MgCl2;1.25μL 濃度為2.0mmol/L的dNTP;0.8μL濃度為20mmol/L的隨機引物;1.25U的 Taq DNA 聚合酶;2μL 10×PCR Buffer(Mg2+Free);無菌去離子水補足體積。

    PCR擴增反應(yīng)程序如下:94℃預(yù)變性5min,進如40個循環(huán)階段,94℃變性1min,38℃退火1min,循環(huán)結(jié)束后72℃延伸2min。72℃延伸7min,4℃保存。

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