棗皮色素的提取方法研究

張好 李榮貴

(青島大學(xué)醫(yī)學(xué)院 山東青島 266072)

1 實(shí)驗(yàn)方法

1.1 棗皮的預(yù)處理

棗經(jīng)揀選除雜后,去除棗核后稱重,取棗皮200g,加蒸餾水300ml,置于組織搗碎機(jī)進(jìn)行搗碎處理10min,至棗皮呈均勻粉碎狀態(tài)為止。

1.2 NaOH提取時間的確定

表1 乙醇法正交實(shí)驗(yàn)

圖1 時間對NaOH提取的影響

圖2 乙醇濃度對棗皮色素提取的影響

取經(jīng)1.1處理后的棗皮粉碎物10g,加入25ml0.8%的NaOH溶液混勻,測量其在460nm處吸光度A,之后每隔半小時測量一次,持續(xù)測量2小時為止。(結(jié)果見圖1)。

1.2.1 乙醇濃度對棗皮色素提取的影響

取4份10g棗皮粉碎物,分別加入濃度為60%、70%、80%、90%乙醇溶液25ml,攪拌均勻后倒入有塞子的比色管60℃水浴加熱1小時,過濾出濾液后再分別測其460nm吸光度A,篩選得出最適乙醇濃度。(結(jié)果見圖2)。

1.2.2 料液比對棗皮色素提取的影響

圖3 料液比對棗皮色素提取的影響

圖4 時間對棗皮色素提取的影響

表2 乙醇法正交試驗(yàn)結(jié)果

分別5g、10g、15g(料液比分別為1:5;2:5;3:5)棗皮粉碎物,同時加入濃度為80%的乙醇溶液25ml,攪拌均勻后分別倒入有塞子的比色管60℃水浴加熱1小時,過濾出濾液后再分別測其460nm吸光度A。篩選得出最適料液比(結(jié)果見圖3)。

1.2.3 時間對棗皮色素提取的影響

取四份10g棗皮粉碎物分別加入80%乙醇溶液25ml,攪拌均勻后分別倒入有塞子的比色管,置于60℃水浴鍋中水浴加熱30min、60min、90min、120min,過濾出濾液后再分別測其吸光度A,篩選得出最適時間。(結(jié)果見圖4)。

1.2.4 乙醇法正交實(shí)驗(yàn)

以單一因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果為參照,以乙醇濃度、料液比、水浴時間三個影響因素作正交試驗(yàn)。(結(jié)果見表1)

2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果及分析

2.1 NaOH提取時間的確定的實(shí)驗(yàn)結(jié)果

NaOH在不同時間提取棗皮色素460nm吸光度見圖1。

通過圖1可見,常溫下NaOH的吸光度在90min以后趨近不變,故可以此吸光值作為對照標(biāo)準(zhǔn),A=0.450。顏色呈棕色透明,有中度刺激性氣味,與栆的氣味不同。NaOH對于棗皮色素提取率較高,且通常被用作提取棗皮色素的溶液,故取NaOH作為乙醇提取提取的對照組參考。

2.2 乙醇法提取棗皮色素的實(shí)驗(yàn)結(jié)果

2.2.1 乙醇濃度對棗皮色素提取的影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果

乙醇濃度改變而測得的棗皮色素460nm吸光度變化圖見圖2。

通過圖2可見,使用80%的乙醇處理的棗皮色素在460nm處吸光度最大且變化率最大。

2.2.2 料液比例對棗皮色素提取的影響

料液比例改變而測得的棗皮色素460nm吸光度變化表見圖3。

通過圖3可見,10g棗皮色素粉碎物與25ml乙醇溶液初始吸光度中等,吸光度變化率大,故選用料液比2:5(g/ml)。

2.2.3 時間對棗皮色素提取的影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果

時間改變測得的棗皮色素460nm吸光度見圖4。

通過圖4可見,在乙醇濃度、料液比、水浴溫度相同的情況下,水浴90min時吸光度最高。

綜上所述,選取乙醇提取條件為:乙醇濃度80%、料液比2:5(g/ml)、水浴加熱時間90min。

2.2.4 乙醇法正交試驗(yàn)的結(jié)果

以單因素實(shí)驗(yàn)為參照,進(jìn)行正交試驗(yàn)驗(yàn)證乙醇提取法的最佳條件,通過測定棗皮色素在460nm處吸光度而得到的實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。

通過表2可見,溶劑法提取棗皮色素的主次順序依次為料液比>乙醇濃度>水浴時間>水浴溫度。最佳提取水平為2:5(g/ml)、乙醇濃度80%、水浴時間60min。在此條件下測得吸光值為0.411,接近NaOH的吸光值0.450。

3 結(jié)論

實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:(1)本實(shí)驗(yàn)采用乙醇提取法對棗皮色素進(jìn)行提取,確立的棗皮色素提取條件為:使用料液比為2:5(g/ml)的棗皮粉碎物,加入濃度為80%的乙醇溶液,然后放入水浴鍋加熱60min。(2)今后實(shí)驗(yàn)可進(jìn)行更多提高提取率的操作,例如采用超聲波破碎法,通過加入纖維素酶對棗皮進(jìn)行預(yù)處理等方法,以更為安全、高效的方式提取棗皮色素。且對于棗皮色素的濃縮干燥與棗皮色素穩(wěn)定性等方面,也需進(jìn)一步的探究。

[1]孫靈燕.木棗棗皮紅色素的提取工藝及穩(wěn)定性研究[A].陜西師范大學(xué),2005．

[2]付凱卿,曹艷萍.棗皮紅色素的提取及穩(wěn)定性研究[J].農(nóng)牧產(chǎn)品開發(fā),2001,(01).

[3]李曉,趙文恩,田武韜,時國慶,郭朋輝,胡利強(qiáng).棗皮紅色素的成分分離分析研究[J].天津化工,2009.

[4]吳宇寬,劉章武.紅棗紅色素提取方法的優(yōu)化研究[J].現(xiàn)代食品科技,2008.

[5]孫靈霞,陳錦屏,劉鳳英.紅棗紅色素提取工藝的研究[J].食品工業(yè)科技,2005.

[6]常世敏,生吉萍,申琳.冬棗采后紅變及其調(diào)控方法的研究[A].中國農(nóng)業(yè)大學(xué),2005．

[7]王校東.番茄紅色素的提取、分離、純化及產(chǎn)品開發(fā)[A].浙江工商大學(xué),2009.

[8]杜蘇英.食品分析與檢測[J].北京:高等教育出版社,2002,(12):15-21.