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    慢性丙型肝炎患者外周血中CD4+Foxp3+調(diào)節(jié)性T細胞的變化及其臨床意義

    2014-12-16 08:27:48張麗君陜西中醫(yī)學(xué)院免疫教研室咸陽712046通訊作者mailsmilewangping163com
    關(guān)鍵詞:調(diào)節(jié)性丙型肝炎外周血

    王 萍,胥 冰,張麗君(陜西中醫(yī)學(xué)院免疫教研室,咸陽 712046;通訊作者,E-mail:smilewangping@163.com)

    丙型肝炎是一種由丙型肝炎病毒(hepatitis C virus,HCV)感染機體后所引起的傳染性疾病,全世界約2億人為HCV感染者,且其中80%感染者為慢性持續(xù)感染者,慢性丙型肝炎是引起肝硬化、原發(fā)性肝癌重要原因之一。研究證實調(diào)節(jié)性 T細胞(regulatory T cell,Treg)具有免疫無能和免疫抑制兩大功能,在誘導(dǎo)和維持免疫耐受過程中發(fā)揮重要作用[1,2]。國內(nèi)外研究發(fā)現(xiàn) Treg 細胞在 HBV、HCV、HIV等病毒感染性疾病中發(fā)揮一定作用[3]。為進一步研究Treg細胞在慢性丙型肝炎中的作用,本研究擬通過對慢性丙型肝炎患者外周血CD4+Foxp3+Treg細胞、核轉(zhuǎn)錄因子Foxp3及轉(zhuǎn)化生長因子-β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)的檢測,初步探討Treg細胞在慢性丙型肝炎中的變化及其意義。

    1 資料和方法

    1.1 研究對象

    選擇2012-06~2013-03在陜西中醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院住院和門診治療的慢性丙型肝炎患者60例,其中男性36例,女性24例,年齡20-63歲,平均年齡(37.19±14.07)歲。診斷標(biāo)準(zhǔn)符合2000年中華醫(yī)學(xué)會傳染病與寄生蟲學(xué)分會、肝病學(xué)分會聯(lián)合修訂的《病毒性肝炎防治方案》[4],排除標(biāo)準(zhǔn):排除甲、乙、丁、戊型肝炎及其他病毒性疾病、自身免疫性、惡性腫瘤、藥物及酒精性肝炎及嚴重心腎內(nèi)分泌疾病等。同期在陜西中醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院進行體檢的40例健康體檢者作為正常對照組,其中男性22例,女性18 例,年齡18-60 歲,平均年齡(35.67 ±12.39)歲,均排除病毒性疾病、自身免疫性疾病、腫瘤和藥物及酒精性肝炎。兩組研究對象在性別(χ2=0.246,P=0.619)、年齡(t=0.554,P=0.580)上的差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。

    1.2 方法

    1.2.1 CD4+Foxp3+Treg細胞檢測 采用流式細胞術(shù)檢測CD4+Foxp3+Treg細胞,利用人淋巴細胞分離液分離外周血單個核細胞,并調(diào)整細胞濃度為1×106個/ml。500 μl單細胞懸液加入 20 μl FITCCD4抗體,混勻后避光孵育20 min;洗滌離心后分別加入4℃ 1×固定液、37℃ 1×破膜液后洗滌重懸細胞后,加入20 μl PE-Foxp3或同型對照抗體,孵育30 min后洗滌重懸細胞。應(yīng)用FACS Calibur型流式細胞儀進行檢測,通過Cellquest軟件進行收集分析數(shù)據(jù)。

    1.2.2 Foxp3 mRNA表達水平檢測 采用實時定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)檢測Foxp3 mRNA表達水平,取 500 μl單細胞懸液,加入 1.0 ml TRIzol液提取外周血單個核細胞總RNA,利用cDNA第一鏈合成試劑盒進行第一鏈合成,以上操作均嚴格按照試劑盒說明書進行。根據(jù)文獻合成 Foxp3及內(nèi)參GAPDH 引物[5],20 μl PCR 反應(yīng)體系如下:SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ(2 × )10 μl、PCR 上下游引物(2 μmol/L)各 2 μl、cDNA 6 μl。擴增條件為:95 ℃ 10 s預(yù)變性,95 ℃ 5 s,60 ℃ 15 s,72 ℃ 30 s,共45個循環(huán)。擴增結(jié)束采用2-ΔΔCt分析Foxp3 mRNA基因的相對表達。

    1.2.3 血漿中TGF-β1水平檢測 無菌采集靜脈血2.0 ml,1 500 r/min 離心 10 min 分離血漿,采用酶聯(lián)免疫試吸附試劑盒檢測血漿中TGF-β1水平,每個樣本設(shè)置3個復(fù)孔。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)分析

    2 結(jié)果

    2.1 慢性丙型肝炎患者外周血CD4+Foxp3+Treg細胞百分率變化

    流式細胞分析(以CD4+細胞為門)結(jié)果顯示慢性丙型肝炎患者外周血CD4+Foxp3+Treg細胞百分率與正常對照組相比明顯升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.05,見圖 1、表1)。

    圖1 慢性丙型肝炎患者外周血CD4+Foxp3+Treg細胞百分率變化Figure 1 The changes of CD4+Foxp3+Treg cells in the peripheral blood of patients with chronic hepatitis C by flow cytometry

    2.2 慢性丙型肝炎患者外周血Foxp3 mRNA表達水平變化

    熒光定量PCR檢測Foxp3 mRNA表達水平結(jié)果顯示:與正常對照組相比,慢性丙型肝炎患者外周血Foxp3 mRNA表達水平明顯升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.05,見表1)。

    2.3 慢性丙型肝炎患者血漿中TGF-β1濃度變化

    慢性丙型肝炎患者血漿TGF-β1水平明顯高于正常對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05,見表1)。

    表1 兩組研究對象外周血中CD4+Foxp3+Treg細胞、Foxp3 mRNA、TGF-β1水平的比較Table 1 Com parison of the levels of CD4+Foxp3+Treg cells,F(xiàn)oxp3 mRNA and TGF-β1 in the peripheral b lood of patients with chronic hepatitis C between two groups

    3 討論

    HCV 感染機體后可以誘導(dǎo)機體產(chǎn)生體液免疫和細胞免疫應(yīng)答,但體液免疫不能有效地清除病毒。隨著對丙型肝炎發(fā)病機制研究的不斷深入,目前普遍認為丙型肝炎病毒造成的肝臟損傷及轉(zhuǎn)歸與機體細胞免疫功能及免疫耐受密切相關(guān)。機體免疫功能異常,不能清除HCV,導(dǎo)致病毒長期存在形成慢性感染。研究證實慢性丙型肝炎患者體內(nèi)HCV特異的CD8+和CD4+T細胞反應(yīng)活性降低,國內(nèi)外研究顯示調(diào)節(jié)性T細胞在慢性丙型肝炎的進展中起到重要的作用[6-10]。

    自從1995年日本學(xué)者 Sakaguchi等[11]發(fā)現(xiàn)調(diào)節(jié)性T細胞以來,隨著研究深入認為調(diào)節(jié)性T細胞是一群獨立的細胞,Treg細胞在自身免疫性疾病、腫瘤、移植及感染性疾病中發(fā)揮重要作用[1,2]。最近研究證實Treg細胞在HCV感染中也發(fā)揮一定作用[6-10],但研究結(jié)果并不完全一致,可能與每個研究的病例選擇、采樣時間、Treg細胞檢測分選手段不同等因素有關(guān)。目前普遍認為Foxp3是Treg細胞分化過程中關(guān)鍵的轉(zhuǎn)錄激活因子[12],因此我們利用CD4+Foxp3+作為檢測Treg細胞的標(biāo)記。而Treg細胞主要通過分泌 TGF-β1來發(fā)揮作用效應(yīng)[2],我們同時檢測了HCV患者血漿中TGF-β1的水平。實驗結(jié)果顯示慢性丙型肝炎患者CD4+Foxp3+Treg細胞百分率、Foxp3 mRNA及血漿TGF-β1水平與正常對照組相比均明顯升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),這與國內(nèi)外的研究結(jié)果基本一致[5-9]。研究證實Treg細胞具有免疫抑制性和免疫無能性功能,其發(fā)揮抑制作用的靶細胞不區(qū)分CD4+和CD8+T細胞。在慢性丙型肝炎患者體內(nèi)CD4+Foxp3+Treg細胞增多,抑制了HCV特異性CD8+T細胞功能,不能完全清除HCV,使病毒長期存在,造成慢性感染。

    綜上所述,慢性丙型肝炎患者體內(nèi) CD4+Foxp3+Treg細胞及血漿TGF-β1水平增高,發(fā)揮了免疫抑制作用,減弱HCV特異性CD8+T淋巴細胞反應(yīng),病毒無法清除,造成 HCV慢性感染。但CD4+Foxp3+Treg細胞發(fā)揮抑制作用的信號分子及信號傳遞通路尚未完全清楚,深入研究 CD4+Foxp3+Treg細胞與慢性丙型肝炎的關(guān)系,可能為闡明丙型肝炎的慢性化機制及指導(dǎo)其治療提供理論及實驗基礎(chǔ)。

    [1]Gavin MA,Rasmussen JP,F(xiàn)ontenot JD,et al.Foxp3-dependent programme of regulatory T-cell differentiation [J].Nature,2007,445(7129):771-775.

    [2]Piccirillo CA.Regulatory T cells in health and disease[J].Cytokine,2008,43(3):395-401.

    [3]Rouse BT,Sarangi PP,Suvas S.Regulatory T cells in virus infections[J].Immunol Rev,2006,212:272-286.

    [4]中華醫(yī)學(xué)會傳染病與寄生蟲學(xué)會、肝病學(xué)分會.病毒性肝炎防治方案[J].中華內(nèi)科雜志,2001,41(4):62-68.

    [5]王萍,胥冰,張麗君.不同類型 HBV感染者外周血 Treg/Th17細胞的變化及意義[J].中國免疫學(xué)雜志,2013,29(6):618-621.

    [6]Wang JP,Zhang Y,Wei X,et al.Circulating Toll-like receptor(TLR)2,TLR4,and regulatory T cells in patients with chronic hepatitis C[J].APMIS,2010,118(4):261-270.

    [7]陳志剛,左維澤,周迪,等.慢性丙型肝炎患者HCV-RNA含量與CD4+C25+調(diào)節(jié)性T細胞的相關(guān)性研究[J].臨床和實驗醫(yī)學(xué)雜志,2013,12(1):18-19.

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    [9]Yoshizawa K,Abe H,Kubo Y,et al.Expansion of CD4(+)CD25(+)FoxP3(+)regulatory T cells in hepatitis C virus-related chronic hepatitis,cirrhosis and hepatocellular carcinoma[J].Hepatol Res,2010,40(2):179-187.

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    [12]Hori S,Nomura T,Sakaguchi S.Control of regulatory T cell development by the transcription factor Foxp3 [J].Science,2003,299(5609):1057-1061.

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