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    雙水相萃取長魚蛋白酶的工藝研究

    2014-12-16 08:07:48李登超
    食品工業(yè)科技 2014年23期
    關(guān)鍵詞:雙水分子量倍數(shù)

    劉 坤,李登超,陳 輝

    (淮陰師范學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,江蘇淮安223300)

    長魚,又名黃鱔,是一種重要的特種水產(chǎn)經(jīng)濟(jì)動物,其肉味鮮美,營養(yǎng)價(jià)值高,是滋補(bǔ)佳品。長魚作為一種水產(chǎn)品,資源相當(dāng)豐富,尤其在我國的中部及南方,但長魚食用的下腳料常被丟棄,不僅造成資源浪費(fèi),而且造成污染環(huán)境。蛋白酶是一類重要的水解酶類,主要催化蛋白質(zhì)水解為多肽或氨基酸。蛋白酶作為一種生物催化劑在食品、醫(yī)藥、化工和皮革制造等多方面有廣泛應(yīng)用,如洗滌劑、制革、毛皮、明膠以及紡織、醫(yī)藥品、化學(xué)品等的生產(chǎn)[1]。近年來,蛋白酶在啤酒、果酒等的澄清方面也顯示出良好的應(yīng)用前景[2]。該酶來源有限,急需開發(fā)新的蛋白酶源。以長魚下腳料為研究對象,研究開發(fā)新的蛋白酶,來源豐富,價(jià)格低廉,前景廣闊。近年來對長魚蛋白酶類的研究開發(fā)逐漸引起許多學(xué)者關(guān)注,如江信紅等人,對長魚腸道蛋白酶進(jìn)行了分離純化,得到了蛋白酶純品并對該酶的性質(zhì)進(jìn)行了初步研究,結(jié)果表明長魚腸道蛋白酶屬于絲氨酸蛋白酶類,且屬于金屬酶,等電點(diǎn)為 6.2,分子量約為 26ku[3-4]。目前提取蛋白酶的方法很多,包括鹽析法,酸浸提法,等電點(diǎn)沉淀法和有機(jī)溶劑沉淀法等;這些方法往往存在生產(chǎn)周期長,工藝參數(shù)不確定,容易導(dǎo)致酶失活等一系列問題。雙水相萃取技術(shù),是近年來興起的一種新型的萃取技術(shù),和一般的分離技術(shù)相比,雙水相萃取具有分離條件溫和、耗能耗時(shí)低、安全環(huán)保,而且易連續(xù)化批量操作生產(chǎn)等優(yōu)點(diǎn)[5-6]。雙水相萃取技術(shù)同時(shí)保護(hù)酶的活性,很適合萃取分離有生物活性的大分子物質(zhì)[7]。本項(xiàng)目以長魚下腳料中的腸道為研究對象,采用雙水相萃取技術(shù),通過研究不同PEG分子量、不同的鹽種類、鹽濃度、不同pH等因素對長魚蛋白酶萃取效率的影響,確定最佳的萃取工藝條件,為綜合利用開發(fā)長魚蛋白酶提供重要的理論依據(jù),同時(shí)變廢為寶,保護(hù)環(huán)境。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    長魚下腳料 購于淮安市淮陰區(qū)農(nóng)貿(mào)市場;PEG1000進(jìn)口分裝 廣東光華化學(xué)廠有限公司;硫酸銨、硫酸鎂 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;考馬斯亮藍(lán)-G250美國Amresco進(jìn)口分裝 南京匯百侍生物科技有限公司;其余試劑均為市售分析純或生化試劑。

    BS224S、TE612-L電子天平 北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;自動可調(diào)移液器 Eppendorf;TDL-60B離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器;5810R臺式高速冷凍離心機(jī) Beckman Culter;PHS-3D pH計(jì) 上海三信儀表廠;WH-3微型漩渦混合儀 上海滬西分析儀器廠有限公司;HH-S恒溫水浴鍋 金壇市億通電子有限公司;UV757CRT紫外可見分光光度計(jì) 上海精密科學(xué)儀器有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 雙水相體系建立 把(NH4)2SO4和 PEG400、PEG1000、PEG2000分別配制成四種適當(dāng)已知高濃度的母液。用移液器準(zhǔn)確吸取適當(dāng)量的(NH4)2SO4加入50mL離心管中,再滴加適當(dāng)?shù)腜EG溶液,混合,靜置,直至開始出現(xiàn)渾濁為止,記錄加入PEG的量和此時(shí)總體積;然后滴加適當(dāng)量的H2O,直到恰好體系澄清為止,記下H2O的量,再滴加適當(dāng)量的PEG,直至體系再次出現(xiàn)渾濁,重復(fù)以上操作。得到數(shù)據(jù)后計(jì)算每步的(NH4)2SO4和PEG的百分含量,以PEG的百分含量為縱坐標(biāo),(NH4)2SO4的百分含量為橫坐標(biāo)繪制相圖;根據(jù)相圖選擇最理想的萃取配比數(shù)據(jù)。

    1.2.2 長魚蛋白酶粗提取物的制備 在長魚下腳料中挑取腸道,用清水沖洗干凈。然后與預(yù)冷50mmol/L Tris-HCl(pH7.5)按照 1∶2 的配比混合,用高速組織搗碎機(jī),將其制成組織勻漿;均勻分裝到離心管中,進(jìn)行4℃,8000r/min離心30min,棄沉淀,留上清液;加入總體積(上清液體積+正丁醇體積)的25%的預(yù)冷正丁醇,邊緩慢滴加邊攪拌,充分混勻后4℃下低溫萃取4h;用分液漏斗分液得上層丁醇酯相和下層長魚蛋白酶水相。最后將長魚蛋白酶水相分裝到離心管中進(jìn)行離心(4℃,4000r/min,30min),再除去離心管內(nèi)長魚蛋白酶水相中沉淀物和上層少量丁醇相油脂,得到下層水相長魚蛋白酶粗提物。-20℃分批冷凍保藏水相長魚蛋白酶粗提物,待用。

    1.2.3 酶活力測定和蛋白質(zhì)濃度測定

    1.2.3.1 各種條件下的酶活均采用紫外分光光度法[8]具體步驟為:取 50mmol/L Tris-HCl、2%酪蛋白、稀釋適當(dāng)倍數(shù)的酶液、10%TCA(三氯乙酸)37℃下水浴5min,按以上順序分別加入前三種物質(zhì)1mL,繼續(xù)置于37℃水浴5min后加入TCA溶液1mL終止反應(yīng)??瞻捉M加入1mL Tris-HCl緩沖液。3000r/min離心15min,用紫外分光光度計(jì)測多組A280值(裝入離心上清液后,靜置1min),求平均值。定義1min內(nèi)水解酪蛋白釋放出的可溶于三氯乙酸的物質(zhì)讓A280值變化0.001個(gè)吸光度值為一個(gè)酶活單位(U)。

    式中:EA0(U/mL)樣液中長魚蛋白酶活力;A樣液平均A280;A0空白組平均A280;EA(U)樣液中長魚蛋白酶總活力;V(mL)樣液體積;SA(U/mg)樣液中長魚蛋白酶比活力;M(mg)樣液總蛋白;n稀釋倍數(shù);5表示5min。

    1.2.3.2 各種條件下的蛋白質(zhì)含量的測定 均采用考馬斯亮藍(lán)G-250法[9]稱取適量牛血清白蛋白,配制成1mg/mL的BSA溶液。考馬斯亮藍(lán)G-250溶液:精確稱取50mg的考馬斯亮藍(lán)G-250,溶于25mL 95%的CH3CH2OH中,然后加入85%的磷酸50mL,加純水定容至500mL,邊加邊攪拌,4℃靜置一夜,減壓抽濾除雜質(zhì),最后4℃保存?zhèn)溆谩?mL的待測液體和3mL的考馬斯亮藍(lán)G-250均勻混合,在595nm波長處5~40min內(nèi)測定各組A595值,求平均值A(chǔ)。

    式中:Y為A595值;X為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)含量,μg/mL。

    1.2.4 雙水相萃取長魚蛋白酶 根據(jù)相圖和各個(gè)物質(zhì)物理性質(zhì)選擇合適配比,準(zhǔn)確稱取PEG于帶刻度的試管中,加入已計(jì)算得到的母液體積(NH4)2SO4于試管中,然后加水定容至10mL,制成穩(wěn)定的雙水相體系。6℃左右環(huán)境下,向體系中加入適量長魚蛋白酶提取液,充分振蕩,混合均勻,靜置。于37℃水浴反應(yīng)后,2h內(nèi)完成酶活力和蛋白質(zhì)含量測定,并計(jì)算相比(VR)、酶比活力(SA)、純化倍數(shù)(PF)、酶活回收率(η,%)。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 PEG/(NH4)2SO4成相關(guān)系圖

    圖1顯示,隨著(NH4)2SO4質(zhì)量分?jǐn)?shù)逐漸增大,PEG質(zhì)量分?jǐn)?shù)逐漸減小;擬合曲線稱為雙節(jié)線,雙節(jié)線以上的區(qū)域?yàn)閮上鄥^(qū),以下的區(qū)域?yàn)榫鄥^(qū)。在雙節(jié)線的上方易形成雙水相,靠近臨界點(diǎn)的系統(tǒng)形成兩相較難,遠(yuǎn)離臨界點(diǎn)以上的區(qū)域比較容易,但是高聚物使雙水相體系粘度增大,兩相分離時(shí)間延長,PEG和(NH4)2SO4的質(zhì)量分?jǐn)?shù)應(yīng)適中,使相分離時(shí)間盡可能短,為工業(yè)生產(chǎn)節(jié)約時(shí)間。制備相圖時(shí)發(fā)現(xiàn)在PEG/(NH4)2SO4體系中,盡管在雙節(jié)線上方可以形成兩相,但是其成相過程只在一個(gè)較小的范圍內(nèi)才比較穩(wěn)定。(NH4)2SO4質(zhì)量分?jǐn)?shù)15%~22%,PEG質(zhì)量分?jǐn)?shù)為12%~30%的雙水相體系兩相間有穩(wěn)定的電位差,適合建立萃取長魚蛋白酶的雙水相體系[10]。故選擇20%(NH4)2SO4和25%不同分子量PEG建立萃取長魚蛋白酶的雙水相體系,進(jìn)而通過數(shù)據(jù)比對篩選出合適分子量PEG。

    圖1 不同分子量的PEG和(NH4)2SO4體系相圖Fig.1 The phase diagrams of PEG/(NH4)2SO4aqueous two phase extraction

    表1 長魚蛋白酶的粗分離純化結(jié)果Tabel 1 The results of crude separation and purification protease from Monopterus albus

    2.2 長魚蛋白酶二次分離純化

    長魚下腳料經(jīng)離心除沉淀物和正丁醇抽提除酯后,對兩次分離純化得到的蛋白酶液分別測總蛋白含量、總體積、總活力、比活力、酶活回收率和純化倍數(shù),計(jì)算得表1。由表1可知,正丁醇抽提液(輕相)除去約10.2%的脂蛋白,長魚蛋白酶總活力回收率3.6%,幾乎沒有酶活回收率;二次酶液(重相)中總活力高達(dá)30381U,酶活回收率93.1%,故長魚蛋白酶主要富集在重相,為后期雙水相分離純化長魚蛋白酶提供實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

    2.3 不同分子量PEG對萃取效率的影響

    根據(jù)相圖規(guī)律及PEG400、PEG1000、PEG2000的物理性質(zhì),選擇質(zhì)量分?jǐn)?shù)為25%的PEG和20%的(NH4)2SO4建立雙水相體系。并用這些體系萃取長魚蛋白酶,然后測出相比(VR),酶比活力(SA),純化倍數(shù)(PF),酶活回收率(η,%)。表2數(shù)據(jù)顯示,隨著PEG分子量的增加,相比逐漸減小,說明分子內(nèi)親水性減弱,疏水性增強(qiáng)。PEG1000和(NH4)2SO4建立的雙水相上相酶比活力和酶活回收率最佳,分別為921.5U/mg和 89.9%,故選擇 PEG1000 適合萃取長魚蛋白酶。

    表2 不同PEG分子量萃取長魚蛋白酶的影響Tabel 2 Effect of PEG molecular on extraction of protease from Monopterus albus

    2.4 無機(jī)鹽種類及其濃度對萃取效率的影響

    用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為25%的PEG1000和不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的無機(jī)鹽建立雙水相體系。表3數(shù)據(jù)顯示,隨著鹽濃度的增加,相比在減小。主要是由于鹽析作用,使得水有從上相轉(zhuǎn)移下相的趨勢。PEG1000/MgSO4體系上相酶活回收率相對20%(NH4)2SO4較低,且MgSO4的溶解度沒有(NH4)2SO4的溶解度大(6℃左右),低溫成相易有結(jié)晶析出,相比不穩(wěn)定。25%的PEG1000和20%(NH4)2SO4建立的雙水相上相酶比活力和酶活回收率最佳;故選擇20%(NH4)2SO4萃取長魚蛋白酶較佳。

    2.5 不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的PEG1000對萃取效率的影響

    用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為20%的(NH4)2SO4和不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的PEG1000建立雙水相體系。表4數(shù)據(jù)顯示,隨著PEG1000質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增加,相比逐漸增大、純化倍數(shù)和酶活回收率先增大后減小。PEG1000濃度增大,分子內(nèi)親水性增強(qiáng),疏水性減弱,分子表面張力減弱,長魚蛋白酶趨于向上相分配,所以相比增大。另一方面,PEG1000濃度增大,體系粘度增大,分子間阻力增大,阻礙蛋白酶向上相分配,所以純化倍數(shù)和酶活回收率先增大后減小。20%(NH4)2SO4和25%PEG1000建立的雙水相上相酶比活力和酶活回收率最佳,故選擇25%PEG1000比較適合萃取長魚蛋白酶。

    表3 無機(jī)鹽種類及其濃度萃取長魚蛋白酶的影響Tabel 3 Effect of different kinds of inorganic salts and their concentrations on extraction of protease from Monopterus albus

    表4 不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的PEG1000萃取長魚蛋白酶的影響Tabel 4 Effect of PEG1000 concentrations on extraction of protease from Monopterus albus

    2.6 不同pH對萃取效率的影響

    綜合上述所得結(jié)果,選用25%PEG1000和20%(NH4)2SO4建立的雙水相體系萃取長魚蛋白酶,并改變體系的pH。表5數(shù)據(jù)顯示,隨著pH的增大,相比、純化倍數(shù)和酶活回收率先增大后減小。體系pH的變化會改變蛋白酶表面的電荷數(shù),因而改變分配系 數(shù)。pH 為 7.0 的 25% PEG1000 和 20%(NH4)2SO4建立的雙水相體系上相純化倍數(shù)為4.40和酶活回收率為90.5%,故選擇體系pH7.0時(shí)比較適合萃取長魚蛋白酶。

    表5 不同pH對萃取長魚蛋白酶的影響Tabel 5 Effect of pH on extraction of protease from Monopterus albus

    3 結(jié)論

    通過考察影響PEG/鹽雙水相系統(tǒng)分離純化長魚腸道蛋白酶的因素,確定了適宜的雙水相體系為25%PEG1000、20%(NH4)2SO4和 pH7.0。長魚腸道蛋白酶主要富集在上相中,在最佳的雙水相體系中,酶活回收率90.5%,上相純化倍數(shù)為4.40。

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