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    復(fù)PL乳GA法及其改良法制備的干擾素微球載藥釋藥特性的對(duì)比*

    2014-11-24 08:35:28羅宇燕麥海燕金啟星黃小舟張永明
    關(guān)鍵詞:改良法藥量孔洞

    羅宇燕,麥海燕,黎 吶,金啟星,黃小舟,張永明

    (1.中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院,廣東廣州 510630;2.中山大學(xué)藥學(xué)院,廣東廣州 510006)

    干擾素 (interferon,IFN)是一種廣譜抗病毒劑,目前主要用于治療慢性乙肝、丙肝等疾病。作為一種蛋白藥物,其分子量大,半衰期短,體內(nèi)外穩(wěn)定性差,臨床上主要的劑型是溶液型注射劑和凍干粉針。注射給藥后,藥物很快就被清除或降解,為了達(dá)到療效常常需要頻繁、大劑量及長時(shí)間給藥,導(dǎo)致毒副作用及耐受性的產(chǎn)生[1-2]。

    使用高分子材料包載蛋白藥物制成微球制劑,可達(dá)到延長藥物作用時(shí)間、提高藥效的目的。其中,聚乳酸聚乙醇酸 (PLGA)由于具有良好的生物相容性和生物可降解性等特點(diǎn),成為常用的微球載體[3]。目前最常用的制備蛋白微球的方法是復(fù)乳法[4]。而改良法是在復(fù)乳法研究的基礎(chǔ)上提出的新工藝[5-7],在微球制備的復(fù)乳和固化階段,內(nèi)水相的海藻酸鈉 (Sodium alginate,Sa)與外水相中的Ca2+相互滲透螯合成海藻酸鈣凝膠,并與微球骨架同步形成,無需二次包封,操作簡單。本實(shí)驗(yàn)以PLGA為載體,分別采用復(fù)乳法及其改良法制備IFNα-1b緩釋微球,對(duì)比了兩種方法所得微球的理化性質(zhì)、內(nèi)外形態(tài)、表面和及骨架內(nèi)的蛋白分布情況,以及體外釋放特性。

    1 試劑與儀器

    1.1 試劑

    重組人干擾素 α-1b(批號(hào):110301,IFN:1.70 g·L-1,深圳科興有限公司);海藻酸鈉 Protanal LF 200DL(美國FMC公司);聚乳酸聚乙醇酸 (PLGA,LA/GA摩爾比為50∶50,黏度為0.85 dL·g-1,美國伯明翰聚合物公司);micro BCA蛋白定量試劑盒 (美國Pierce公司);FITC-BSA(美國Sigma公司);考馬斯亮藍(lán)染色液G-250(碧云天生物研究所);二氯甲烷 (天津市富宇精細(xì)化學(xué)品有限公司);其余試劑均為分析純。

    1.2 儀器

    FA25勻漿器 (上海弗魯克液體機(jī)械制造有限公司);L-550臺(tái)式低速大容量離心機(jī);GZ強(qiáng)力電動(dòng)攪拌器 (金壇市醫(yī)療儀器廠);ALPHA 1-4 LSC冷凍干燥機(jī) (德國 CHRIST公司);BIO-TEK ELX-800全自動(dòng)酶標(biāo)儀 (美國寶特公司);SHA-B水浴恒溫振蕩器 (江蘇省金壇市宏華制造廠);JSM26700F冷場發(fā)射掃描電鏡 (日本電子公司);EG1160石蠟切片機(jī) (德國徠卡);Leica CM1850冷凍切片機(jī) (德國徠卡);LSM710激光共聚焦顯微鏡 (德國Zeiss公司)。

    2 方法

    2.1 干擾素微球的制備

    采用復(fù)乳法制備IFN-PLGA微球,即將適量的重組IFNα-1b粉末 (理論載藥量為1%)溶解于泊洛沙姆188(F68)溶液中,形成均一的內(nèi)水相,再與一定濃度的PLGA二氯甲烷溶液混合,在冰浴條件下高速勻漿1 min制成初乳 (W/O);將初乳迅速轉(zhuǎn)移至聚乙烯醇 (PVA)水溶液 (外水相1)中,攪拌形成W/O/W型復(fù)乳;最后將復(fù)乳轉(zhuǎn)移至大體積的PVA水溶液 (外水相2)中,低速攪拌3 h使有機(jī)溶劑揮發(fā)、微球固化。用蒸餾水洗滌3次,離心收集微球,凍干得微球粉末。

    使用改良法制備微球時(shí),在F68溶液中加入Sa粉末,使 Sa在內(nèi)水相中的質(zhì)量濃度為12 mg·L-1,外水相1、2中分別加入氯化鈣,使其對(duì)應(yīng)質(zhì)量濃度分別為 30 mg·L-1、5 mg·L-1,其余操作與復(fù)乳法一致。

    2.2 微球包封率、載藥量和產(chǎn)率的測定

    精密稱定載藥微球10 mg,并加入到5.0 mL 0.1 mol·L-1NaOH/5 mg·L-1SDS 溶液中,于 37℃水浴條件下振蕩48 h,使微球完全溶解。離心后取上清液,用BCA法測定蛋白含量。背景吸收值用空白微球裂解后的上清液作校正。

    2.3 微球的表面及內(nèi)部形態(tài)

    2.3.1 微球粒徑的測定量 取適量冷凍干燥后的微球,用蒸餾水分散,在光學(xué)顯微鏡下觀察微球的外觀形態(tài),同時(shí)選擇有代表性的區(qū)域,測定300個(gè)粒子,計(jì)算平均粒徑。

    2.3.2 微球形態(tài)的測定 將冷凍干燥后的微球或經(jīng)石蠟切片后的微球切片固定在導(dǎo)電膠上,置于真空條件下,噴上金粉。然后用掃描電子顯微鏡在電子束強(qiáng)度為10 kV的條件下觀察微球的表面形態(tài)。

    2.3.3 微球表面及截面孔隙率 從每種處方的微球及其切片的掃描電鏡圖片中選取至少6張,使用Image J軟件分析微球及其截面的孔洞數(shù)目、孔洞總面積及微球面積,計(jì)算微球表面及截面孔隙率[8]。

    2.4 蛋白在微球中的分布情況

    2.4.1 微球表面的蛋白染色 分別稱取復(fù)乳法和改良法制備的IFN微球適量于離心管中,各加入適量考馬斯亮藍(lán)G-250染色液浸泡5 min,渦旋使微球粉末分散均勻。離心棄上清液后,加入適量蒸餾水洗滌微球4次,冷凍干燥后拍照。

    2.4.2 蛋白在微球內(nèi)的分布情況 將兩種方法制備的載熒光蛋白FITC-BSA的微球進(jìn)行冷凍切片 (厚度約8 μm),在激光共聚焦顯微鏡下觀察微球截面中蛋白的分布情況。固定吸收波長/激發(fā)波長為488/525 nm,放大倍數(shù)為400倍。

    2.5 微球的體外釋放測定

    精密稱取約50 mg微球置于5 mL離心管中,加入1.5 mL PBS 液 (pH 值為7.4,含有 20 g·L-1的F68),于37℃水浴振蕩器中以100 r/min的振速振蕩,分別于不同時(shí)間點(diǎn)定時(shí)離心過濾,取出上清液,同時(shí)補(bǔ)加新鮮的PBS。采用micro BCA微孔板法測定所取樣品中的蛋白含量,計(jì)算累積釋藥量,繪制體外釋藥曲線。分別采用零級(jí)、一級(jí)方程、Higuchi模型和 Korsmeyer-Peppas方程對(duì)釋藥行為進(jìn)行擬合。其中,Q代表累計(jì)釋放百分比,t代表時(shí)間,r代表相關(guān)系數(shù)。

    3 結(jié)果

    3.1 兩種制備方法所得微球的理化性質(zhì)研究

    經(jīng)過前期實(shí)驗(yàn)的篩選[5-6],得到較優(yōu)的微球制備工藝,分別以復(fù)乳法和改良法制備IFN-PLGA微球,所得微球均為流動(dòng)性良好的白色疏松粉末。其包封率分別為 54.37%,61.85%(P <0.05),載藥量為0.6507%,0.7243%(P <0.05),產(chǎn)率為85.27%,85.03%(P >0.05),平均粒徑為 73.69 μm,71.04 μm(P >0.05)??梢娛褂酶牧挤ㄖ苽涞奈⑶蚓哂休^高的包封率和載藥量,制備工藝對(duì)產(chǎn)率及平均粒徑的影響不顯著。

    3.2 兩種制備方法所得微球的內(nèi)外形態(tài)

    對(duì)于包載親水性大分子藥物的微球,藥物的初期釋放主要是通過孔洞擴(kuò)散,此時(shí)微球的表面孔隙率和內(nèi)部形態(tài)特征起著重要的作用[8]。使用掃描電鏡對(duì)微球表面及截面進(jìn)行觀察 (見圖1),并運(yùn)用軟件分析微球的表面及截面參數(shù)。復(fù)乳法與改良法的表面孔隙率分別為 7.9%,0.48%(P<0.05),表面孔隙個(gè)數(shù)分別為221,35(P <0.05),截面孔隙率分別為 48.9%,48.1%(P >0.05),截面孔隙個(gè)數(shù)分別為320,146(P<0.05)。從外觀而言,復(fù)乳法制備的微球表面孔洞較大且多,而改良法所得微球光滑圓整,表面孔洞較少且孔徑小。截面形態(tài)方面,改良法所得微球內(nèi)部孔洞較大但數(shù)目較少,截面孔隙率與復(fù)乳法相當(dāng)。

    圖1 微球的掃描電鏡圖Fig.1 Scanning electron micrographs of microsphere

    3.3 兩種制備方法所得微球的表面蛋白分布量

    眾所周知,在體內(nèi)外釋放過程中,靠近微球表面的藥物最先擴(kuò)散出來,其中淺表蛋白分布量較多的微球,容易產(chǎn)生突釋[9],有可能導(dǎo)致血藥濃度接近或超過中毒水平,產(chǎn)生明顯的不良反應(yīng)。考馬斯亮藍(lán)G-250染色液可以專屬性地對(duì)蛋白染色,游離的G-250與蛋白結(jié)合形成藍(lán)色復(fù)合物,其顏色的深淺與蛋白質(zhì)含量成正比。從染色微球的表面顏色深淺可得知淺表的蛋白分布量[10],預(yù)測微球的突釋效應(yīng)。分別對(duì)兩種方法制得的IFN微球進(jìn)行染色,從圖2可得改良法所得微球的外觀以淺藍(lán)色為主,帶有少量深藍(lán)色微粒;而復(fù)乳法組微球則均一地呈現(xiàn)深藍(lán)色。說明改良法所得微球的表面蛋白分布量較少。

    3.4 蛋白在微球內(nèi)部的分布情況

    使用激光共聚焦顯微鏡可觀察到樣品中的熒光物質(zhì),從而直觀地得到藥物在制劑中的分布情況[11-12]。以熒光蛋白 FITC-BSA(激發(fā)波長:495 nm;綠色熒光)代替IFN作為模型蛋白制備微球,通過激光共聚焦顯微鏡對(duì)載藥微球的切片進(jìn)行掃描,觀察熒光蛋白在不同制備工藝所得微球中的分布情況 (圖3)。圖中發(fā)亮物質(zhì)為FITC-BSA,亮度越高的地方代表蛋白量越多。可見改良法所得微球的內(nèi)部分布著大小不均一的孔洞,孔洞之間相對(duì)獨(dú)立,蛋白較多地分布在微球中部和內(nèi)部;而復(fù)乳法所得微球內(nèi)部孔洞多,且孔隙連通性高,蛋白幾乎均勻分布于微球孔壁上。

    圖3 FITC-BSA微球切片的激光共聚焦顯微鏡圖Fig.3 Laser scanning confocal microscopy pictures of FITC-BSA microspheres slices

    3.5 兩種制備方法所得微球的體外釋放性能的研究

    考察兩種制備方法所得微球的體外釋藥行為,分別測定不同時(shí)間的釋藥量,以橫坐標(biāo)為釋藥時(shí)間,縱坐標(biāo)為累計(jì)釋藥百分比繪制曲線 (圖4),并對(duì)體外釋放曲線進(jìn)行擬合。結(jié)果可得,復(fù)乳法1 d的突釋百分比 (37%)大于改良法 (30%)。前者7 d內(nèi)累積釋放達(dá)到72%,但此后階段的釋藥量少,30 d僅釋放79%。而改良法所得微球在2~20 d的范圍內(nèi)以均勻速度釋放藥物,緩釋時(shí)間較長,30 d的累積釋放接近70%。兩法所得微球的釋藥曲線均符合 Korsmeyer-Peppas方程 (r>0.97),分別為 Q=40.397 t0.230,Q=30.147 t0.256。方程指數(shù)均小于0.43,提示藥物主要以擴(kuò)散形式釋放。

    圖4 微球的體外釋放圖Fig.4 Effect of microsphere preparation method on the drug release

    4 討論

    本實(shí)驗(yàn)在同等條件下對(duì)比了改良法與復(fù)乳法制備的IFN-PLGA微球的載藥特性,包括微球的理化性質(zhì)、內(nèi)外形態(tài)、微球表面及骨架內(nèi)的蛋白分布情況,以及體外釋放行為。

    改良法是在復(fù)乳法的工藝基礎(chǔ)上,于內(nèi)水相添加了Sa,外水相添加了氯化鈣。該法制備的微球具有較高的包封率和載藥量,其表面的蛋白量少、孔洞較少且孔徑小。主要原因是由于在微球制備的復(fù)乳及固化過程中內(nèi)外水相相互滲透:外水相中的Ca2+與分散于油相中含Sa的內(nèi)水相液滴相互螯合,或者Sa液滴往外水相擴(kuò)散過程中與Ca2+螯合形成海藻酸鈣凝膠,一定程度地填充因溶劑揮發(fā)在微球內(nèi)形成的孔隙,使微球表面更為緊密。此外,海藻酸鈣凝膠的形成,可減緩內(nèi)水相液滴中的蛋白藥物往外水相擴(kuò)散,減少微球表面的藥物分布量,使更多的蛋白包封于微球中。

    從微球截面的掃描電鏡圖可得,改良法所得微球內(nèi)部孔洞較大而數(shù)目較少,孔徑分布不均,總體的截面孔隙率與復(fù)乳法相當(dāng)。這是由于Sa的添加大大增加了內(nèi)水相的黏度[13],從而使微球制備過程中內(nèi)水相液滴大小均勻性下降、液滴更容易破裂融合成更大的液滴,致使干燥后的微球內(nèi)部呈現(xiàn)大小不一的孔洞,孔洞數(shù)目顯著少于復(fù)乳法制備的微球。

    與復(fù)乳法相比,改良法可增加微球表面結(jié)構(gòu)致密性,降低淺表蛋白分布量,使微球突釋率顯著降低,緩釋天數(shù)由7 d提高到20 d以上。釋放過程中溶出介質(zhì)逐漸滲入微球內(nèi)部,分布于骨架中的海藻酸鈣凝膠慢慢吸水膨脹,一定程度地減慢藥物擴(kuò)散,延長藥物釋放時(shí)間,提高后期藥物釋放濃度;但30 d內(nèi)累積釋藥率稍低于復(fù)乳法。除了微球結(jié)構(gòu)緊密、海藻酸鈣延緩釋藥的原因外,可能存在小部分藥物與凝膠或載體結(jié)合緊密,以至釋放緩慢。

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