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    高通量DNA甲基化數(shù)據(jù)的處理和分析方法

    2014-11-14 07:10:42王心宇許穎出劉洪波蘇建忠
    生物信息學(xué) 2014年1期
    關(guān)鍵詞:胞嘧啶堿基高通量

    王心宇,許穎出,劉洪波,王 芳,張 巖,蘇建忠

    (哈爾濱醫(yī)科大學(xué)生物信息科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,黑龍江哈爾濱150080)

    DNA甲基化是重要的表觀遺傳學(xué)修飾之一,以往的研究表明,DNA甲基化在細胞發(fā)育和分化、調(diào)控基因表達、X染色體失活、基因沉默、疾病的發(fā)生等方面扮演著重要的角色[1-3]。在真核生物中,通常是CpG二核苷酸中胞嘧啶的第五個碳原子上發(fā)生了甲基化(5mC),胞嘧啶甲基化也可能會發(fā)生在CHG和CHH(H是除G外的任意一種核苷酸)上。全基因組的甲基化水平呈現(xiàn)雙峰分布,而且低甲基化的區(qū)域多數(shù)是在CpG二核苷酸聚集區(qū)域(CpG島)[4]。以往的研究發(fā)現(xiàn),位于啟動子區(qū)域的高甲基化的CpG島與基因的沉默有關(guān),可能是因為DNA甲基化阻礙轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合而直接抑制了基因轉(zhuǎn)錄。在過去的幾十年里,由于實驗技術(shù)和費用的限制,DNA甲基化的數(shù)據(jù)往往只檢測了基因組的局部區(qū)域,而且是低通量的數(shù)據(jù)。

    二代測序技術(shù)的發(fā)展極大地推動了表觀遺傳調(diào)控機制的研究,基于二代測序技術(shù)發(fā)展起來的DNA甲基化的檢測技術(shù)為DNA甲基化的研究提供了大量的高通量、全基因組的DNA甲基化數(shù)據(jù)。這些高通量數(shù)據(jù)的產(chǎn)生使得DNA甲基化研究的重點由目標基因DNA甲基化的檢測轉(zhuǎn)移到了全基因組DNA甲基化高通量數(shù)據(jù)的檢測、存儲、處理和分析上。近幾年,研究者構(gòu)建了多個DNA甲基化數(shù)據(jù)庫,開發(fā)了大量的DNA甲基化高通量數(shù)據(jù)的處理和分析工具,使得深入的表觀遺傳調(diào)控機制的研究成為可能。

    1 基于二代測序技術(shù)的DNA甲基化檢測技術(shù)

    1.1 DNA甲基化預(yù)處理方法

    甲基化后的胞嘧啶(5 mC)與普通的胞嘧啶(C)在DNA序列上并無差異,如果直接使用DNA測序,將無法區(qū)分測得的胞嘧啶C是C還是5 mC。所以檢測DNA甲基化需要首先對待檢測的DNA序列中胞嘧啶進行預(yù)處理,將非甲基化的胞嘧啶C與甲基化的胞嘧啶5 mC區(qū)分開來,目前的DNA甲基化預(yù)處理方式主要分為三種:

    (1)限制性內(nèi)切酶法(Endonuclease digestion)

    限制性內(nèi)切酶法是指利用甲基化限制性內(nèi)切酶(HpaII,MspI和HhaI等)在各自的識別位點對甲基化的胞嘧啶有不同的敏感性來檢測CpG的甲基化[5]。限制性內(nèi)切酶法結(jié)合二代測序的技術(shù)有MRE-seq,MCA-seq,MSCC 和 HELP-seq。盡管限制性內(nèi)切酶測序法成本低、高效,然而由于檢測的CpG位點局限于酶切位點附近,基因組覆蓋率低,另外還存在CpG偏好性、酶切不完全導(dǎo)致的假陽性等問題,使用這種方法檢測DNA甲基化的研究越來越少。

    (2)親和純化法(Affinity enrichment)

    親和純化是利用甲基化CpG結(jié)合蛋白(MBD)或者對5mC特異的抗體來親和提純甲基化區(qū)域。MeDIP-seq和 MBD-seq是最常用的兩種結(jié)合親和純化和二代測序技術(shù)的DNA甲基化檢測方法?;跍y序的親和純化法能夠快速、低成本地檢測全基因組范圍內(nèi)的甲基化水平,然而它只能獲得區(qū)域的甲基化水平,特別是MeDIP-seq偏向于CpG富集的區(qū)域,分散的低密度的甲基化位點可能被識別成非甲基化區(qū)域,目前還沒有能夠去除掉這種偏性的生物信息學(xué)方法。

    (3)重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)換法(Bisulphite conversion)

    重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)換結(jié)合二代測序技術(shù)是目前最精準的DNA甲基化檢測方法,能夠檢測單堿基水平的甲基化狀態(tài),被稱為DNA甲基化檢測的“金標準”。對基因組中未發(fā)生甲基化的胞嘧啶進行重亞硫酸鹽處理,將其轉(zhuǎn)換成U,經(jīng)PCR擴增后變成T,重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)換對甲基化的胞嘧啶不起作用。通過結(jié)合二代測序,即可繪制出單堿基分辨率的全基因組DNA甲基化圖譜。目前常用的重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)換結(jié)合二代測序技術(shù)的DNA甲基化檢測技術(shù)有BS-seq和RRBS等。

    1.2 二代測序技術(shù)

    在使用DNA甲基化預(yù)處理區(qū)分出未甲基化的胞嘧啶和甲基化的胞嘧啶后,再使用二代測序技術(shù)檢測DNA序列,來獲取胞嘧啶上的甲基化狀態(tài)。

    目前二代測序技術(shù)主要分為三個平臺:Roche、Illumina、SOLiD。其中每種測序平臺又擁有多種系統(tǒng),比如Illumina就有HiSeq、GAIIx等系統(tǒng)。不同的測序技術(shù)在測得的read長度、精確性、通量都有差異,適用于不同的研究目的需要。

    1.3 高通量DNA甲基化檢測技術(shù)進展

    結(jié)合二代測序技術(shù)和DNA甲基化預(yù)處理的DNA甲基化檢測方法,在近幾年獲得了大量的全基因組的DNA甲基化測序數(shù)據(jù)。

    國外很多實驗室產(chǎn)生了大量、精準的高通量DNA甲基化數(shù)據(jù),例如,Lister等人于2008年檢測的擬南芥全基因組甲基化譜和2009年測得的人類全基因組甲基化譜[6-7],Stadler等人于2011年測定了小鼠胚胎干細胞和神經(jīng)前體細胞的全基因組甲基化譜等[8]。國內(nèi)近年來也產(chǎn)生了大量的高通量DNA甲基化數(shù)據(jù),例如,2010年,中科院昆明研究所,華大基因和上海交通大學(xué)癌癥表觀遺傳中心等九家科研機構(gòu)聯(lián)合測定了桑蠶的單堿基水平的DNA甲基化譜,王俊教授課題組測定的人類完全分化的血細胞的全基因組DNA甲基化譜等。這些全基因組水平的DNA甲基化數(shù)據(jù)為表觀遺傳調(diào)控機制的研究提供了數(shù)據(jù)資源。

    2 DNA甲基化數(shù)據(jù)儲存和可視化

    目前研究者構(gòu)建了各種各樣的數(shù)據(jù)庫來存儲世界范圍的各大實驗室和科研機構(gòu)產(chǎn)生的高通量DNA甲基化數(shù)據(jù),便于數(shù)據(jù)的查詢、下載、可視化分析及全球化的資源共享。從第一個DNA甲基化的公共數(shù)據(jù)庫MethDB由Grunau等人于2001年構(gòu)建以來,已有多個和DNA甲基化相關(guān)的數(shù)據(jù)庫被開發(fā),例如,NCBI的存儲表觀遺傳修飾數(shù)據(jù)的Epigenomics,主要包括DNA甲基化、組蛋白修飾和非編碼RNA等數(shù)據(jù)。PubMeth是結(jié)合文本的基因注釋信息的DNA甲基化數(shù)據(jù)庫。DiseaseMeth儲存72種人類疾病相關(guān)的DNA甲基化的數(shù)據(jù)庫,并實現(xiàn)了統(tǒng)計學(xué)分析及可視化[9]。

    3 高通量DNA甲基化數(shù)據(jù)的處理和分析

    結(jié)合二代測序技術(shù)和DNA甲基化預(yù)處理的方法,在近幾年產(chǎn)生了大量的全基因組的DNA甲基化測序數(shù)據(jù)。然而,因為存在多種測序技術(shù)以及多種DNA甲基化預(yù)處理的技術(shù),這些高通量的數(shù)據(jù)的存儲、處理和分析是目前DNA甲基化研究的一個難點和熱點。目前常見的高通量DNA甲基化數(shù)據(jù)檢測,處理和分析的流程如圖1所示。

    圖1 高通量DNA甲基化測序數(shù)據(jù)的檢測,處理和分析的方法及軟件Fig.1 Methods of detection and software packages of analysis for high-throughput sequencing of DNA methylation

    3.1 DNA甲基化序列數(shù)據(jù)處理的挑戰(zhàn)

    3.1.1 甲基化預(yù)處理方法的差異和測序技術(shù)的差異

    MeDIP-seq和 MBD-seq只能檢測某個區(qū)域的甲基化狀態(tài),而BS-Seq、RRBS方法能夠測得單堿基水平的甲基化狀態(tài)。不同的DNA甲基化檢測方法測得的數(shù)據(jù)也存在差異,需要不同的處理和分析方法。

    3.1.2 MBD-Seq、MeDIP-Seq 數(shù)據(jù)處理的挑戰(zhàn)

    MBD-Seq和MeDIP-Seq測得的序列數(shù)據(jù)可以使用Bowtie、SOAP等短序列比對軟件直接比對到參考基因組上,用映射到某個區(qū)域的reads數(shù)目來反應(yīng)這個區(qū)域的甲基化程度[10-11]。然而,這兩種測序方法檢測的區(qū)域偏向CpG密集的甲基化區(qū)域。當某個甲基化區(qū)域的CpG分散時,很有可能被視為非甲基化區(qū)域?;蚪M的不同區(qū)域上CpG密度分布是不均勻的,因而需要開發(fā)新的生物信息學(xué)方法來校正,以獲取基因組范圍內(nèi)準確的甲基化水平。

    3.1.3 BS-Seq、RRBS 數(shù)據(jù)處理的挑戰(zhàn)

    BS-Seq和RRBS可以直接測得單個胞嘧啶的甲基化狀態(tài),準確性很高。然而,因為經(jīng)過重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)換之后,DNA的序列發(fā)生了改變(C變成了T,mC和其他堿基保持不變),不能夠直接比對到參考基因組上。另外,與Illumina直觀的堿基序列不同,SOLiD測序?qū)eads利用顏色空間進行編碼,將每一個堿基與它鄰近的堿基用一種顏色表示。堿基序列比對的工具不適用于SOLiD測序產(chǎn)生的序列。

    3.2 DNA甲基化序列數(shù)據(jù)處理分析的研究現(xiàn)狀

    研究者已經(jīng)開發(fā)的峰度探測軟件包括MACS,USeq,PeakSeq,F(xiàn)indPeaks,BayesPeak 等,其中 MACS是目前最常用的峰值探測工具。然而,目前仍沒有專門處理MBD-seq數(shù)據(jù)的工具或軟件來降低或去除CpG密度對MBD-seq產(chǎn)生數(shù)據(jù)的影響。

    研究者基于短序列匹配算法(Bowtie,SOAP等)開發(fā)了10多種專門處理重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)換后的reads的比對工具和算法,比如 Bismark,MethylCoder,BRAT,BSMAP,BS Seeker,B-SOLADA,SOCS-B,BatMeth,RMAP-BS,F(xiàn)adE 等[12-14]。其中,Bismark是最常用的堿基序列比對工具,F(xiàn)adE,BSOLADA,SOCS-B,BatMeth是可以處理顏色空間編碼的reads。如表1所示。

    表1 2011~2012年BS-Seq分析軟件包比較Table1 Comparison of software packages for BS-Seq analysis from 2011 to 2012

    4 BS-Seq的數(shù)據(jù)處理及分析

    4.1 BS-Seq 的原理

    BS-Seq先利用重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)換將普通的胞嘧啶變?yōu)閁,而甲基化的胞嘧啶保持不變,然后使用PCR擴增使得U變成T。對轉(zhuǎn)換和擴增后的DNA序列進行測序,將得到的DNA序列與參考基因組進行比較。認為C-C配對(參考基因組上在某個位置上是C,測得的reads在該位置上也是C)的就是甲基化的胞嘧啶,C-T配對的是非甲基化的胞嘧啶。如圖2所示。

    圖2 BS-Seq原理Fig.2 BS -Seq protocol

    4.2 BS-Seq數(shù)據(jù)處理流程

    使用BS-Seq測得的序列數(shù)據(jù)通常為fastq或fasta格式。從序列數(shù)據(jù)中獲得單個胞嘧啶的甲基化水平一般包括以下幾個步驟,如圖3所示:

    圖3 BS-Seq數(shù)據(jù)處理流程Fig.3 Recommended workflow for the analysis of BS-Seq data

    (1)序列的質(zhì)量控制。對于真實的數(shù)據(jù),當reads的長度增加時,測序的錯誤率傾向于升高。另外,reads上包含的引物會降低匹配到基因組上的準確率。因此,有時候會對序列數(shù)據(jù)進行堿基質(zhì)量分數(shù)控制、修剪引物等處理。

    (2)序列比對。BS-Seq產(chǎn)生的序列與基因組上的原始序列存在差異(普通C變?yōu)門,互補鏈上的G變成了A),需要使用BS-Seq特有的序列比對軟件(Bismark等),將BS-Seq產(chǎn)生的序列數(shù)據(jù)比對到參考基因組上。

    (3)產(chǎn)生甲基化水平。從reads的基因組位置中獲得每個胞嘧啶的甲基化reads數(shù)和非甲基化reads數(shù)。然后使用公式M/(U+M)計算某個胞嘧啶的甲基化水平,U和M分別是在這個胞嘧啶上的非甲基化reads數(shù)和甲基化reads數(shù)。

    4.3 甲基化水平的后續(xù)分析

    將單個胞嘧啶上的測序信息轉(zhuǎn)換成了[0,1]的DNA甲基化水平后,研究者開發(fā)了一系列的DNA甲基化數(shù)據(jù)分析工具,實現(xiàn)從DNA甲基化水平中尋找甲基化模式和統(tǒng)計學(xué)分析等功能,以方便實驗生物學(xué)家進行進一步的DNA甲基化調(diào)控機制的研究。

    張巖教授課題組于2012年開發(fā)了一個可視化工具CpG_MPs,可以從標準化后的DNA甲基化水平中篩選甲基化區(qū)域和非甲基化區(qū)域[15]。Altuna等人也于2012年開發(fā)了一個R包,實現(xiàn)了對DNA甲基化水平的樣本質(zhì)量可視化、差異甲基化分析、功能注釋等功能[16]。

    5 總結(jié)

    基于二代測序技術(shù)的DNA甲基化檢測方法極大地推動了DNA甲基化的研究。研究者基于這些技術(shù)產(chǎn)生的高通量數(shù)據(jù)開發(fā)了一系列的生物信息學(xué)工具,然而,仍然有許多問題需要解決。目前已經(jīng)開發(fā)了許多種工具可以處理和分析BS-Seq數(shù)據(jù),然而對于MBD-Seq和MeDIP-Seq,雖然也有一些工具,但卻還無法解決CpG密度偏性的問題。對于BS-Seq的數(shù)據(jù),顏色空間編碼的堿基序列比對的精度和效率依然是一項挑戰(zhàn)。

    References)

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    [6] LISTER R,PELIZZOLA M,DOWEN R H,et al.Human DNA methylomes at base resolution show widespread epigenomic differences[J].Nature,2009,462,315-22.

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    [15] SU Jianzhong,YAN Haidan,WEI Yanjun,et al.CpG_MPs: identification ofCpG methylation patternsof genomic regions from high- throughput bisulfite sequencing data[J].Nucleic Acids Res,2012,41,e4.

    [16] AKALIN A,KORMAKSSON M,LI S,et al.methylKit:a comprehensive R package for the analysis of genomewide DNA methylation profiles[J],Genome Biology,2012,13:R87.

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