暢濤,王涵琦,楊成德,王穎,楊小利,薛莉,陳秀蓉,徐長林
(草業(yè)生態(tài)系統(tǒng)教育部重點實驗室 甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)草業(yè)學(xué)院 甘肅省草業(yè)工程實驗室 中-美草地畜牧業(yè)可持續(xù)發(fā)展研究中心,甘肅 蘭州730070)
隨著化學(xué)農(nóng)藥的大量、頻繁使用,造成環(huán)境污染、農(nóng)藥殘留和增加抗性等問題也越來越嚴重,促使人們不斷地倡導(dǎo)綠色農(nóng)業(yè)[1-3]。因此,植物病害的生物防治成為了研究熱點,其中尤以植物內(nèi)生菌作為拮抗菌的研究得到眾多學(xué)者的青睞。植物內(nèi)生細菌是指生活在植物的根、莖、葉、花、果實和種子中,但對植物沒有任何實質(zhì)性傷害的細菌[4]。植物內(nèi)生菌與植物能夠互利互惠,究其原因則是由于植物為內(nèi)生細菌提供生長必需的場所和營養(yǎng)等,而內(nèi)生細菌則通過其固氮、溶磷、抑菌及產(chǎn)生生物活性物質(zhì)等生物功能,增強宿主植物的抗病性、抗蟲性、抗旱性及生長競爭能力等[5-6]。學(xué)者通過研究發(fā)現(xiàn)植物內(nèi)生菌對植物的促生作用體現(xiàn)在產(chǎn)IAA來促進植物種子的發(fā)芽和植株幼苗的生長[7-10]、通過聯(lián)合固氮作用進行生物固氮[11-13]和通過解磷或溶磷作用[14-15]使植物能夠盡可能地得到養(yǎng)分的補充[16-17],從而使植物對生物量進行了積累。同時也有學(xué)者分離得到了具有良好拮抗作用或抑菌作用的內(nèi)生 細 菌。 據(jù) 報 道,已 從 人 參 (Panax ginseng)[18]、棉 花 (Gossypium)[19]、桔 梗 (Platycodon grandiflorum)[20]、向日 葵 (Helianthus annuus)[21]、茄子 (Solanum melongena)[22]、小 麥 (Triticum aestivum)[23]、甜 菜(Beta vulgaris)[24]、水稻(Oryza sativa)[25]和西紅柿(Lycopersicon esculentum)[26]等植物體內(nèi)分離得到內(nèi)生菌可以抑制病原菌對宿主植物進行侵染,從苦參(Sophorae flavescentis)[27]、紅樹(Rhizophoraceae)[28]和珠芽蓼(Polygonum viviparum)[29]等植物體內(nèi)分離得到的內(nèi)生菌可以抑制病原菌對其他植物的侵染。這些內(nèi)生菌主要是通過其核糖體途徑產(chǎn)生某些細菌素和酶類及活性蛋白質(zhì)類來溶解病原菌的細胞壁、抑制菌絲生長和孢子萌發(fā)或造成畸形,也可以通過非核糖體途徑產(chǎn)生的抗菌肽、脂肽物質(zhì)或抗菌素通過鋅離子通道或其他機制作用于病原菌的細胞膜[30-31];從而對植物起到防病作用。由此可見,植物內(nèi)生菌具有眾多的生物學(xué)功能值得挖掘,而高寒草地禾草作為優(yōu)質(zhì)牧草具有重要的應(yīng)用價值,由于其內(nèi)生菌的特殊生境,使內(nèi)生菌具有耐低溫等特性。因此,本試驗以高寒草地禾草內(nèi)生菌B-401為研究對象,對其生防能力和其他生物學(xué)功能進行了測定,并進行了鑒定,以期為植物病害的生物防治和生物菌肥的研發(fā)提供菌種資源,也為高寒草地牧草內(nèi)生細菌資源的開發(fā)提供理論依據(jù)。
1.1.1 供試菌株 供試病原菌:馬鈴薯壞疽病菌(Phoma foveata)、馬鈴薯褐腐病菌(Stysanusstemonitis)、馬鈴薯炭疽病菌(Colletotrichum coccodes)、馬鈴薯枯萎病菌(Fusarium avenaceum)、馬鈴薯干腐病菌(Fusarium oxysporum)、番茄早疫病菌(Alternaria solani)、小麥根腐病菌(Bipolaris sorokiniana)、孜然根腐病菌(Fusarium solani)和黃瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum)。供試拮抗菌:B-401,為高寒草地禾草內(nèi)生菌。
以上供試病原菌和供試拮抗菌均由甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)植物病理實驗室提供。
供試農(nóng)藥:10%氟硅唑(乳油,先正達有限公司);50%嘧菌酯(懸浮劑,先正達有限公司),均為馬鈴薯壞疽病室內(nèi)毒力測定較好的藥劑[32]。
供試植物及品種:馬鈴薯(Solannm tuberosum)新大坪,為來自于重病田的二級種薯。
1.1.2 培養(yǎng)基 供試培養(yǎng)基為NA培養(yǎng)基、NB培養(yǎng)液、LB培養(yǎng)液和PDA培養(yǎng)基,按參考文獻[33]配制。
1.2.1 B-401抑菌能力的測定 采用平板對峙法,指示菌為馬鈴薯壞疽病菌、番茄早疫病菌、馬鈴薯干腐病菌、黃瓜枯萎病菌、孜然根腐病菌、馬鈴薯褐腐病菌、馬鈴薯炭疽病菌、小麥根腐病菌和馬鈴薯枯萎病菌。將活化后的指示菌打成6 mm菌餅置于PDA培養(yǎng)基的中央,與指示菌菌餅相隔2.5 cm的圓周上等距離點接4次B-401,每個處理3次重復(fù),25℃下黑暗培養(yǎng)。采用十字交叉法測量抑菌直徑并計算抑制率。
1.2.2 B-401穩(wěn)定性測定 將B-401培養(yǎng)于NB平板上,連續(xù)轉(zhuǎn)接(每隔3 d轉(zhuǎn)接1次)10代,后測定其對馬鈴薯壞疽病菌的抑菌能力,并利用SPSS 16.0軟件分析其穩(wěn)定性。
1.2.3 B-401對病原菌菌絲生長的影響 采用平板對峙法于接種后9 d觀察病原菌菌絲形態(tài)并顯微拍照。
1.2.4 貯藏期防效試驗 在甘肅省定西市馬鈴薯貯藏庫進行;選擇來自于重病田的200個均勻一致的薯塊,將B-401的發(fā)酵液(CFU=7.83×1012)配制成10倍液噴于薯塊表面,用50%嘧菌酯懸浮劑3000倍液和10%氟硅唑乳油5000倍液作藥劑對照,清水為空白對照,于2010年11月15日噴藥,2011年3月23日檢查發(fā)病率,利用防效結(jié)果來評價B-401的防病能力。
1.3.1 產(chǎn)IAA的定性測定 采用Salkowski比色法,對B-401進行產(chǎn)IAA的測定,3個重復(fù)均變紅為陽性,表示能分泌生長激素IAA,均不變色為陰性,表示不分泌IAA,顏色越深表示分泌數(shù)量越多。
1.3.2 產(chǎn)IAA的定量測定 采用純3-IAA制作標準曲線。配制2組濃度依次為2.5,5.0,7.5,10.0,12.5,15.0,17.5 mg/L和25,50,75,100,125,150,175 mg/L的標準液,分別取4 m L,在1組中加入PC比色液4 m L,另一組中加入S2比色液4 m L,黑暗靜置0.5 h,取出后測定其OD530值,制作標準曲線。將培養(yǎng)12 d的B-401的菌懸浮液和空白對照離心10 min,轉(zhuǎn)速為10000 r/min,取上清液4 m L分別加入等量比色液,黑暗靜置30 min后測定OD530值,以加了比色液的空白為對照。用相應(yīng)的標準曲線計算菌株分泌IAA的量。
1.3.3 溶磷能力的定性測定 將B-401點接于PKO(或蒙金娜)平板培養(yǎng)基上,置于28℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)5 d后,觀察菌株在培養(yǎng)基平板上形成的溶磷圈,有溶磷圈的記為陽性。
1.3.4 固氮能力的定性測定 將B-401用點接法接種在阿須貝培養(yǎng)基上,同時將200μL B-401菌懸液接入阿須貝液體培養(yǎng)基中,重復(fù)3次,以無菌水接種做對照,28℃培養(yǎng),在第3,5,7天目測其生長狀況,在無氮培養(yǎng)基上明顯生長者和能使液體培養(yǎng)基變渾濁的記為陽性,繼代培養(yǎng)3代仍為陽性,則認為具有固氮能力。
1.4.1 培養(yǎng)性狀和形態(tài)特征 B-401活化后分別接種于NA平板、斜面及NB培養(yǎng)液,于28℃下培養(yǎng)5 d后觀察培養(yǎng)性狀。將B-401在NA平板上活化培養(yǎng)18~24 h后進行革蘭氏染色和芽孢染色,觀察菌體和測量菌體的大?。?0個),并顯微拍照。
1.4.2 生理生化測定 具體方法參照《伯杰細菌鑒定手冊》[34]和《常見系統(tǒng)細菌鑒定手冊》[35]進行。
1.4.3 16S r DNA序列分析 按上海生工提供的試劑盒(Ezup柱式基因組DNA抽提試劑盒,批號:82561202)提取DNA并檢測,對具有特異性DNA條帶的保存于-20℃的冰箱備用。
使用引物1(5′-CCGGATCCAGAGTTTGATCATGGCTCAGCA-3′)和引物2(5′-CGGGATCCT ACGGCTA CCTTGTTACGACTT-3′)進行PCR擴增,擴增條件為:94℃預(yù)變性5 min,94℃變性10 s,54℃退火20 s,68℃延伸40 s,35個循環(huán);最后在68℃下延伸7 min,終止反應(yīng)。反應(yīng)體系:10×buffer(含 MgCl2):5μL,d NTP(2.5 mmol/L):1μL。primer 1(10μmol/L):1μL,primer 2(10μmol/L):1μL,Taq poly-merse(2 U/μL):0.4μL,Target DNA(10 ng/μL):1μL,dd H2O:40.6μL,總體積為50μL。經(jīng)檢測,將具特異性條帶的擴增產(chǎn)物送上海生工測序,所測序列與GenBank數(shù)據(jù)庫中已報道的序列進行同源性比較,采用Clustal 1.8軟件和Mega 4.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,確定B-401的系統(tǒng)發(fā)育學(xué)地位。
2.1.1 B-401抑菌譜的測定 禾草內(nèi)生菌B-401對馬鈴薯壞疽病菌、馬鈴薯褐腐病菌、馬鈴薯炭疽病菌、小麥根腐病菌和番茄早疫病菌的抑制效果明顯,分別達74.45%,71.97%,70.05%,64.65%和60.25%;對孜然根腐病菌、馬鈴干腐病菌和馬鈴薯枯萎病菌的抑制效果在45%以上;對黃瓜枯萎病菌具有一定的抑制效果(表1,圖1)。表明B-401對馬鈴薯上多種病原菌及其他病原菌都具有抑制作用,可以一菌多防。
表1 B-401的抑菌能力測定Table 1 The inhibition rate of B-401 against pathogenic fungi
2.1.2 B-401穩(wěn)定性測定 將拮抗菌B-401的10代菌與馬鈴薯壞疽菌對峙培養(yǎng),結(jié)果表明,B-401原菌株與其繼代(10代)培養(yǎng)菌之間抑菌效果差異不顯著(P>0.05),說明該菌株的抑菌效果穩(wěn)定(表2)。
2.1.3 B-401對多種病原菌菌絲生長的影響 馬鈴薯壞疽病菌、馬鈴薯炭疽病菌和馬鈴薯褐腐病菌菌絲被B-401抑制后,有明顯的畸形變化,菌絲斷裂、細胞壁崩解、原生質(zhì)外泄,菌絲產(chǎn)生泡囊、扭曲、變形,導(dǎo)致其原生質(zhì)凝聚和末端膨大(圖2),說明B-401可以通過使菌絲發(fā)生畸形變化來影響病菌菌絲生長。
2.1.4 貯藏期防治試驗 清水對照的發(fā)病率為38.60%,噴霧B-401之后的發(fā)病率為18.26%,其防效為52.67%,比5000倍液10%氟硅唑的防效低34.66%,但和3000倍液嘧菌酯的差異不大(表3),說明B-401具有較好防治效果。
2.2.1 IAA的定性測定 結(jié)果表明,不含色氨酸的培養(yǎng)液顏色變化較為明顯,含100 mg/L色氨酸的培養(yǎng)液在比色反應(yīng)中呈紅色,與對照差異明顯(圖3),說明在King培養(yǎng)基中加入100 mg/L的色氨酸能夠增加B-401合成IAA的量。
圖1 B-401與9種病原菌的對峙照片F(xiàn)ig.1 B-401 confront nine kinds of pathogenic fungi photosA:小麥根腐病菌B.sorokiniana;B:黃瓜枯萎病菌F.solani;C:孜然根腐病菌F.solani;D:馬鈴薯炭疽病菌C.coccodes;E:馬鈴薯枯萎病菌F.avenaceum;F:馬鈴薯干腐病菌F.oxysporum;G:番茄早疫病菌A.solani;H:馬鈴薯褐腐病菌S.stemonitis;I:馬鈴薯壞疽病菌P.foveata.
2.2.2 IAA的定量測定 B-401經(jīng)連續(xù)培養(yǎng)12 d后,用PC和S2兩種比色液測定OD530值,結(jié)果表明,不含色氨酸的King培養(yǎng)液OD530值為PC=0.089和S2=0.073,通過標準曲線分泌IAA的濃度為2.6 mg/L;含100 mg/L色氨酸的King培養(yǎng)液OD530值為PC=0.132和S2=0.077,其分泌IAA的濃度為3.42 mg/L,IAA的合成量與前者相差較大,說明色氨酸的存在能較明顯增加B-401合成IAA的量。可認為外源色氨酸是B-401合成IAA必須前體物質(zhì)。
2.2.3 溶磷能力的定性測定 結(jié)果表明,B-401在PKO無機磷培養(yǎng)基和蒙金娜培養(yǎng)基上(有機磷培養(yǎng)基)分別培養(yǎng)5 d之后,沒有溶磷圈出現(xiàn),說明B-401沒有溶解有機磷和無機磷的能力。
表2 繼代培養(yǎng)菌株對壞疽病菌的抑制結(jié)果Table 2 The inhibition rate of subculture bacteria against P.foveata
圖2 B-401對病原菌菌絲的影響Fig.2 Influence of B-401 against hyphoae of pathogenic fungiA:炭疽處理Inhibit hyphoae of C.coccodes;B:炭疽對照Normal hyphoae of C.coccodes;C束梗孢處理Inhibit hyphoae of S.stemonitis;D:束梗孢對照Normal hyphoae of S.stemonitis;E:壞疽病處理Inhibit hyphoae of P.foveata;F:壞疽病對照Normal hyphoae of P.foveata.
表3 B-401的防治效果Table 3 The control efficacy of B-401 against potato gangrene
2.2.4 固氮能力的定性測定 結(jié)果表明,B-401點接于阿須貝培養(yǎng)基后,在第3天時形成菌落,第5天時形成明顯的菌落;接種于液體培養(yǎng)基后,5 d后培養(yǎng)液變渾濁。連續(xù)培養(yǎng)3代后,B-401在第5天時同樣能形成菌落并能使培養(yǎng)液變渾濁,說明B-401具有固氮能力。
2.3.1 形態(tài)觀察 經(jīng)革蘭氏染色,B-401為G+(圖4A),其芽孢中生(圖4B),菌體大小為2.8~6.0μm×0.8~1.4μm。其在平板培養(yǎng)基上菌落大小約為0.4 cm,中間凸起如凸鏡狀,邊緣平整,黏度較大,硬度小且不透明,呈乳黃色。斜面培養(yǎng)基上,菌苔豐富,光滑,顏色呈乳黃色,邊緣呈刺毛狀。液體培養(yǎng)基中,不形成菌膜,沉淀少,無氣泡,菌液顏色為培養(yǎng)液顏色。
2.3.2 生理生化測定 B-401具有將硝酸鹽還原為亞硝酸鹽的能力,好氧生長,能夠利用葡萄糖、阿拉伯糖、木糖和甘露醇產(chǎn)酸,V-P測定為陽性;能夠水解酪朊、淀粉、明膠、酪氨酸;能夠利用丙酸鹽和檸檬酸鹽;不能產(chǎn)生苯丙氨酸脫氨酶和卵磷脂酶,但能產(chǎn)生接觸酶;能夠形成吲哚,表明該菌對植物具有促生作用;可以在p H 6.8和5.7的營養(yǎng)肉湯中生長,生長時可以不需要NaCl和KCl;能夠在10%的氯化鈉溶液中生長;生長溫度在5~50℃。結(jié)合形態(tài)特征和生理生化測定結(jié)果,初步認為B-401屬于芽孢桿菌屬,種待定。2.3.3 16S r DNA基因鑒定 提取B-401的基因組DNA,在0.8%瓊脂糖凝膠上電泳檢測,條帶清楚,且無非特異性條帶,滿足16S r DNA的要求,可以進行PCR擴增。
16S rDNA的擴增和測序:用16S r DNA引物擴增,產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測,在1500 bp處有一明亮的PCR特異性條帶(圖5)。將PCR產(chǎn)物送往上海生工測序,所得B-401的16S rDNA基因序列堿基長度為1475 bp。
B-401的16S r DNA序列系統(tǒng)發(fā)育分析:用BLAST軟件經(jīng)同源性比較,結(jié)果表明,B-401與已報道的Bacillus atrophaeus(JQ917920.1),Bacillus tequilensis (JF411288.1),Bacillus subtilis (AB542912.1),Bacillus pumilus(EU379272.1)和Bacillus atrophaeus(HF545325.1)等多株芽孢桿菌屬的種相似性在99%以上。將相似序列用Clustal 1.8軟件進行多重序列比較后,再用Mega 4.0軟件鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,B-401與B.atrophaeus同源性最近(圖6),再結(jié)合菌體形態(tài),生理生化特征將B-401確定為芽孢桿菌屬的萎縮芽孢桿菌(Bacillus atrophaeus)。
圖3 B-401比色反應(yīng)Fig.3 B-401 colorimetric reaction
圖4 B-401的革蘭氏染色和芽孢染色Fig.4 Gram staining(A),spore staining(B)of B-401
圖5 B-401的16S r DNA電泳圖Fig.5 16S r DNA PCR electrophoresis map of B-401
圖6 B-401的16S rDNA系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.6 16S rDNA phylogenetic tree of B-401
李振東等[29]分離得到的以色氨酸為合成IAA途徑的內(nèi)生菌Z5在外源色氨酸誘導(dǎo)時分泌IAA的濃度為68.62 mg/L,是不加色氨酸產(chǎn)IAA濃度的13.4倍,B-401無外源色氨酸誘導(dǎo)時分泌IAA的濃度為2.60 mg/L,外源色氨酸誘導(dǎo)分泌IAA的濃度為3.42 mg/L,二者對比較為明顯;說明B-401能夠產(chǎn)IAA,且以色氨酸為前體物合成IAA的途徑是B-401合成IAA多種途徑[36]的其中一條。Forchet
ti等[21]和Zhang等[37]認為生物菌肥應(yīng)針對于具有固氮和分泌IAA能力的植物內(nèi)生菌進行開發(fā),而本研究結(jié)果表明,B-401能夠在阿須貝培養(yǎng)基上生長,且能使無氮培養(yǎng)液變渾濁,連續(xù)培養(yǎng)之后,此結(jié)果差異不顯著,說明B-401不僅具有分泌IAA的能力還具有固氮的能力,證明B-401對植物具有促生作用,但對其固氮酶活性和對盆栽或大田作物的促生作用還需進一步研究。
近年來,學(xué)者對于拮抗菌的抑菌機制進行了深入的研究,明確了拮抗菌可以通過分泌幾丁質(zhì)酶、β-葡聚糖酶和胞外蛋白酶等酶類物質(zhì)及以抗菌肽為主的多肽物質(zhì)來抑制病原菌的生長[30]。甘肅馬鈴薯產(chǎn)業(yè)是農(nóng)民較為重要的經(jīng)濟產(chǎn)業(yè)支柱,但據(jù)報道,甘肅近年來的馬鈴薯發(fā)病嚴重,爛薯率較高,其中尤以檢疫病害馬鈴薯壞疽病最為嚴重[32]。本試驗研究表明,B-401對馬鈴薯壞疽病菌、炭疽病和褐腐病具有較好的抑制作用,抑制率分別達74.45%,70.05%和71.97%,且能使以上病原菌的菌絲斷裂、扭曲和變形,并使病原菌的細胞壁崩解,但不清楚是其分泌物中的哪一種抑菌物質(zhì)在起作用,還需要進一步研究其抑菌機理。經(jīng)測定,B-401的室內(nèi)拮抗能力較好且其10代穩(wěn)定性良好。由于馬鈴薯塊莖貯藏期長,于貯藏庫中不易進行化學(xué)防治,而B-401在貯藏期對馬鈴薯塊莖進行噴霧處理后,其可以定殖在馬鈴薯塊莖表面,且在貯藏期的防效能夠達到52.67%,具有不污染環(huán)境和不造成農(nóng)藥殘留,還能較好地防治馬鈴薯貯藏期的主要病害,克服了化學(xué)防治的缺點。但對B-401的發(fā)酵工藝的優(yōu)化以及在大田中使用的穩(wěn)定性和防治效果等還需要進一步研究。
高寒草地禾草內(nèi)生細菌B-401為G+,其芽孢中生,菌體大小為2.8~6.0μm×0.8~1.4μm。結(jié)合生理生化特征及16S r DNA序列分析將其鑒定為B.atrophaeus。B-401能夠產(chǎn)生IAA,具有固氮能力,無溶磷能力,且抑菌譜較廣,說明該菌株具有防病促生的作用,與何紅等[38]認為植物內(nèi)生菌具有植物保護和促生的生物學(xué)作用觀點一致,因此B-401不僅能用于生物農(nóng)藥的開發(fā),還能用于微生物肥料的研發(fā),應(yīng)用前景廣闊。