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    乙型腦炎病毒可視化分型基因芯片的制備

    2014-10-27 09:04:42薛斐辛舒田宇飛孫文超溫樹波閻富龍盛媛王茂鵬朱羿龍田明堯金寧一
    生物技術(shù)通訊 2014年3期
    關(guān)鍵詞:基因芯片探針分型

    薛斐 ,辛舒,2,田宇飛,孫文超,2,溫樹波,2,閻富龍,2,盛媛,2,王茂鵬,3,朱羿龍,3,田明堯,金寧一

    1.軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 軍事獸醫(yī)研究所,省部共建吉林省人獸共患病預(yù)防與控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,吉林 長春 130122;2.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科技學(xué)院,吉林 長春 130118;3.吉林大學(xué) 畜牧獸醫(yī)學(xué)院,吉林 長春 130062

    乙型腦炎病毒又稱日本腦炎病毒(Japanese en?cephalitis virus,JEV),屬披膜病毒科黃病毒屬,為單股RNA病毒,由其引起的疾病稱為乙型腦炎。乙型腦炎是一種中樞系統(tǒng)人畜共患急性傳染病,以高熱和狂暴、抑郁等神經(jīng)癥狀為特征[1]。三帶喙庫蚊為JEV的主要傳播媒介,豬是主要的傳染源,病毒通常在豬-蚊-蚊或人等動物間循環(huán)[2]。

    基于進(jìn)化樹分析對JEV進(jìn)行分型的方法有2種,一種依據(jù)PrM蛋白基因進(jìn)行分型[3-4],另一種則依據(jù)E蛋白基因進(jìn)行分型[5]。由于PrM基因長度較短,使得分析結(jié)果存在一定程度的可變性,所以根據(jù)E蛋白基因序列進(jìn)行進(jìn)化樹分析已逐漸成為主要的分型方法。依據(jù)E蛋白基因序列,可將JEV分為5種基因型(Ⅰ~Ⅴ)。JEV主要在亞洲流行,我國目前分離到的毒株有Ⅰ、Ⅲ和Ⅴ型[3-4],但主要是Ⅰ型和Ⅲ型。

    目前,乙型腦炎診斷方法主要有血清學(xué)診斷、分離培養(yǎng)和分子生物學(xué)方法[6],一次試驗(yàn)一般只能檢測樣品中的一種基因型,樣品量較大時不能在短時間內(nèi)提供檢測結(jié)果。因此,建立一種具有同步檢測和鑒別診斷功能的快速、靈敏、高效的診斷方法有重要意義。我們擬設(shè)計(jì)JEV型特異性探針,用于對JEV基因的分型檢測,以期為JEV的快速診斷和流行病學(xué)監(jiān)測提供有效的檢測技術(shù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    含JEV-Ⅰ PrM和E基因(GenBank登錄號:AF045551.2)的質(zhì)粒、含基孔肯亞病毒(CHIKV)E基因(GenBank登錄號:FJ95103)的質(zhì)粒、含辛德比斯病毒(SINV)E基因(GenBank登錄號:U38305)的質(zhì)粒均由Blue Heron生物技術(shù)公司合成;含JEV-ⅢPrM和E基因(GenBank登錄號:JN604986.1)的質(zhì)粒由本實(shí)驗(yàn)室保存;2×Taq PCR Master Mix購自天恩生物有限公司;Simply P總RNA提取試劑盒購自BioFlux公司;Axyprep質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒和Axyprep DNA凝膠回收試劑盒均購自Axygen公司;鏈霉親和素標(biāo)記納米金和銀染試劑購自NanoProbes公司;SDS、20×SSC購自Promega公司;點(diǎn)樣緩沖液、光學(xué)級醛基基片、芯片雜交盒、芯片蓋玻片等購自北京博奧生物有限公司;生物素標(biāo)記的特異性引物(上游引物為5'-BIOTIN-AAGCTTyTGATGACCATCA AC-3',下游引物為5'-AAGCTTyTGATGACCATCA AC-3')及氨基修飾寡核苷酸探針(表1)由上海生工生物工程有限公司合成。

    Micro GridⅡ610基因芯片點(diǎn)樣儀(Genomic So?lutions公司);離心濃縮儀(Eppendrof公司);Genepi×personal 4100A掃描儀(Axon公司);TC-512型PCR儀(Techne公司);IF-Ⅲ分子雜交爐(寧波新芝生物科技股份有限公司);HH-1數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市金南儀器制造有限公司)。

    1.2 探針的設(shè)計(jì)

    根據(jù)JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ基因組序列,用BLAST、Accelrys Gene和Array Designer 4.0等生物信息學(xué)軟件,按照探針設(shè)計(jì)基本原則,設(shè)計(jì)1條陽性對照探針和3條用于檢測的18~21 mer Oligo探針(表1),探針終濃度為50 μmol/L,將點(diǎn)樣液與探針等體積混勻,加入384孔板中,-20℃保存。

    1.3 陣列設(shè)計(jì)、打印及玻片處理

    芯片微陣列設(shè)計(jì)為3×3陣列,每個位點(diǎn)包含一種探針的一個4×4陣列(圖1)。用Micro GridⅡ610基因芯片點(diǎn)樣儀將探針有序地打印在玻片上,將醛基玻片放入雜交盒中,于37℃恒溫箱中固定12 h,固定結(jié)束后用37℃預(yù)熱的洗滌液(2 g/L SDS)清洗2 min,在雙蒸水中清洗1 min,最后放在封閉液中封閉5 min,用雙蒸水洗脫,離心甩干。

    1.4 雜交與檢測

    將PCR產(chǎn)物加熱至96℃變性5 min,立即取出并冰浴3 min,每一個樣品取15 μL PCR變性產(chǎn)物,與5 μL上游引物和20 μL雜交緩沖液混勻,將混合物加至芯片陣列孔上,將雜交盒置42℃水浴4 h;雜交結(jié)束后取出芯片,立即放入42℃預(yù)熱的洗液Ⅰ(2×SSC,1 g/L SDS)、洗液Ⅱ(0.1×SSC,1 g/L SDS)、洗液Ⅲ(0.1×SSC),在42℃雜交爐中各清洗2 min,雙蒸水洗脫1 min,離心甩干,置4℃保存;加入鏈霉親和素標(biāo)記的納米金(用1×PBS+5 g/L BSA 1∶400稀釋),40 μL/孔,37℃水浴 25 min,用 1×PBS洗脫 2 min,雙蒸水洗脫1 min,離心甩干;每孔加入銀染A液和銀染B液各20 μL混勻,37℃孵育5 min,雙蒸水洗脫,離心甩干,重復(fù)操作,37℃孵育2 min,雙蒸水洗脫;肉眼觀察可見明顯陽性信號,也可用普通掃描儀或照相機(jī)記錄。

    1.5 芯片特異性試驗(yàn)

    分別提取本實(shí)驗(yàn)室保存的藍(lán)耳病病毒(PRRSV,長春株)、豬新城疫病毒JL01株(由本室2000年分離保存)、H9N2型禽流感病毒(由本室2004年分離保存)雞胚尿囊液的RNA,經(jīng)反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,用已設(shè)計(jì)好的特異性引物進(jìn)行PCR;另外,以含基孔肯亞病毒E基因的質(zhì)粒、含辛德比斯病毒E基因的質(zhì)粒、JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ的含PrM和E基因的質(zhì)粒為模板進(jìn)行PCR。將以上6種PCR產(chǎn)物分別與芯片雜交,進(jìn)行可視化,用普通掃描儀掃描結(jié)果。

    表1 JEV寡核苷酸探針即序列

    圖1 芯片3×3陣列圖

    1.6 芯片靈敏性試驗(yàn)

    測定JEV-Ⅰ、JEV-Ⅲ質(zhì)粒質(zhì)量濃度分別為40.8和 44.2 μg/mL,計(jì)算初始拷貝數(shù)分別為 8.1×1013和7.9×1013拷貝/mL,然后用ddH2O分別將JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ質(zhì)粒進(jìn)行1/10梯度稀釋,以稀釋的質(zhì)粒為模板進(jìn)行PCR,與芯片雜交,實(shí)現(xiàn)可視化。

    1.7 芯片重復(fù)性試驗(yàn)

    分別以JEV-Ⅰ、JEV-Ⅲ的含PrM和E基因的質(zhì)粒為模板進(jìn)行PCR,擴(kuò)增出生物素標(biāo)記的PCR產(chǎn)物,應(yīng)用同批5片芯片、不同批5片芯片分別進(jìn)行雜交,以檢測不同批次芯片制備的重復(fù)性及同一批次芯片的同一性。

    2 結(jié)果

    2.1 芯片雜交試驗(yàn)

    分別以含JEV-Ⅰ或JEV-Ⅲ的PrM和E基因的重組質(zhì)粒為模板,用生物素修飾的特異性引物進(jìn)行PCR,得到460 bp的目的條帶(圖2),與預(yù)期相符。

    預(yù)雜交的芯片滴加5 μL 5'端生物素修飾的上游引物、15 μL生物素修飾的PCR變性產(chǎn)物和20 μL雜交緩沖液混合物,在42℃水浴鍋中雜交4 h,經(jīng)可視化后用普通掃描儀掃描,結(jié)果見圖3,1號陽性坐標(biāo)探針即Ynyxdz探針、2號探針即Yn0b探針處均有陽性信號,JEV-Ⅰ掃描結(jié)果中3號探針即Yn1b探針處有信號,JEV-Ⅲ掃描結(jié)果中4號探針即Yn3a探針處有信號。由此可知,2號探針可用于鑒定JEV,3號和4號探針可用于JEV的分型。

    2.2 特異性試驗(yàn)

    圖2 重組質(zhì)粒PCR擴(kuò)增產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳圖

    圖3 JEV鑒定及分型可視化結(jié)果

    將1.5中描述的6種PCR擴(kuò)增產(chǎn)物與芯片進(jìn)行雜交,可視化后用普通掃描儀掃描芯片。結(jié)果表明,藍(lán)耳病病毒、豬新城疫病毒、禽流感病毒、基孔肯亞病毒、辛德比斯病毒的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物除陽性坐標(biāo)探針有信號外,其他探針均無陽性信號,JEV的2種亞型質(zhì)粒PCR擴(kuò)增產(chǎn)物混合后能同時檢出陽性信號(圖4)。

    2.3 靈敏性試驗(yàn)

    用ddH2O分別將JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ質(zhì)粒按一定比例稀釋后進(jìn)行PCR,當(dāng)質(zhì)粒至105拷貝/mL時,PCR產(chǎn)物電泳條帶難以辨認(rèn),當(dāng)稀釋至104拷貝/mL時已無條帶出現(xiàn)(圖5)。

    以稀釋的質(zhì)粒為模板進(jìn)行PCR,擴(kuò)增產(chǎn)物與芯片進(jìn)行雜交,用掃描儀掃描,結(jié)果見圖6。當(dāng)JEV-Ⅰ稀釋至8.1×105拷貝/mL時有微弱信號,稀釋至8.1×104拷貝/mL或更低時,未檢測到陽性信號。當(dāng)JEV-Ⅲ質(zhì)粒為7.9×105拷貝/mL時,除陽性坐標(biāo)探針有信號外,2號和4號探針仍有微弱信號;當(dāng)稀釋至7.9×104拷貝/mL或更低時,未檢測到陽性信號。

    圖4 PCR(A)與芯片(B)檢測JEV的特異性試驗(yàn)

    圖5 JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ質(zhì)粒梯度稀釋后PCR產(chǎn)物電泳圖

    圖6 芯片檢測JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ質(zhì)粒的靈敏度試驗(yàn)

    2.4 重復(fù)性試驗(yàn)

    分別以JEV-Ⅰ、JEV-Ⅲ含PrM和E基因的2種重組質(zhì)粒為模板進(jìn)行PCR,將擴(kuò)增出的熒光標(biāo)記的PCR產(chǎn)物與芯片雜交。隨機(jī)抽取同一批次制備的芯片5張,在同一條件下進(jìn)行檢測,結(jié)果均為陽性,表明同批制作的芯片具有同一性;隨機(jī)抽取不同批次制備的芯片5張,在相同條件下進(jìn)行檢測,結(jié)果均為陽性,說明不同時間制備的芯片重復(fù)性、穩(wěn)定性好。

    3 討論

    利用基因芯片技術(shù)進(jìn)行人和動物疫病的檢測是未來疾病診斷的一個發(fā)展方向?;蛐酒瑱z測技術(shù)有其獨(dú)特的優(yōu)點(diǎn),可從核酸水平對病原進(jìn)行檢測,而且可將多種不同病原的探針集成到同一張芯片上,對相關(guān)病原同時進(jìn)行檢測,還可以做到對病原體進(jìn)行血清型和毒力的區(qū)分。基因芯片技術(shù)對病原微生物進(jìn)行基因分型最為突出的例子是在肝炎病毒研究方面。目前研究較多的是利用短Oligo基因芯片對流感病毒[7-8]、HIV、人乳頭瘤病毒[9]、輪狀病毒[10]、肝炎病毒[11]等進(jìn)行基因分型。Lin等[12]建立的Oligo基因芯片可檢測9種呼吸道病毒(流感病毒、呼吸道合胞病毒、腺病毒、冠狀病毒、副流感病毒等)和9種其他呼吸道病原體(炭疽桿菌、百日咳桿菌、肺炎衣原體、土拉菌、肺炎支原體、耶爾森菌等),采用多重PCR擴(kuò)增病原體基因,可對臨床標(biāo)本中以上病原體進(jìn)行種及分離株的檢測及分型。

    在本研究中,我們制備了針對Ⅰ型與Ⅲ型JEV的分型及鑒定基因芯片。我們根據(jù)GenBank中的JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ的PrM和E基因序列差異,設(shè)計(jì)出JEV分型引物及寡核苷酸探針,且引物5'端帶有生物素修飾,其中1號探針作為陽性坐標(biāo)探針。實(shí)驗(yàn)證明,探針濃度為50 μmol/L時雜交信號可達(dá)到飽和,效果最佳。通過37℃水浴固定、2 g/L SDS清洗和2.5 g/L NaHB4封閉后,將稀釋的探針固定于醛基化玻片上,分別以含JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ的PrM和E基因的2種重組質(zhì)粒為模板進(jìn)行PCR,將PCR產(chǎn)物與探針在42℃[13]雜交爐中雜交,通過可視化獲得肉眼可見結(jié)果。普通掃描結(jié)果顯示,除陽性坐標(biāo)探針外,共有3條寡核苷酸檢測探針特異地與相應(yīng)的標(biāo)記樣品雜交,芯片上呈現(xiàn)較強(qiáng)的陽性雜交信號,其中2號探針一直能出現(xiàn)信號,說明2號探針可用于鑒定JEV。3、4號探針可分別用于鑒定JEV-Ⅰ和JEV-Ⅲ。通過特異性、靈敏度及重復(fù)性試驗(yàn)的驗(yàn)證,制備的基因芯片具有病毒特異性和可靠的重復(fù)性,靈敏度比PCR高10倍。以上結(jié)果表明,本研究制備的基因芯片可為JEV的檢測及分型提供一種快速、準(zhǔn)確、高通量的方法。

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