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    Ghrelin對乙醇誘導(dǎo)大鼠急性胃黏膜損傷的保護(hù)作用及其機制的研究*

    2014-09-11 06:35:36樊曉明
    胃腸病學(xué) 2014年4期
    關(guān)鍵詞:辣椒素胃潰瘍空白對照

    蔣 淼 樊曉明

    復(fù)旦大學(xué)附屬金山醫(yī)院消化科(200540)

    Ghrelin是由Kojima等[1]發(fā)現(xiàn)的一種腦腸肽,是迄今惟一的生長激素釋放激素受體(GHSR)的天然配體。研究發(fā)現(xiàn)ghrelin不僅具有增加食欲、促進(jìn)胃動力的作用[2],同時還具有強大的胃黏膜保護(hù)作用[3-4],其機制可能與一氧化氮(NO)和內(nèi)臟感覺神經(jīng)有關(guān)。多數(shù)胃感覺神經(jīng)中存在對辣椒素敏感的辣椒素受體,其接受刺激后能釋放降鈣基因相關(guān)肽、速激肽、P物質(zhì)等,從而促使血管內(nèi)皮細(xì)胞和胃黏膜內(nèi)皮細(xì)胞中NO的合成和釋放,增加胃黏膜微循環(huán)[5]。

    本實驗通過乙醇誘導(dǎo)大鼠急性胃黏膜損傷模型,利用辣椒素拮抗劑capsazepine阻斷胃中對辣椒素敏感的辣椒素受體,同時測定eNOS、iNOS mRNA表達(dá)變化,旨在探討ghrelin對胃黏膜保護(hù)作用的可能機制。

    材料與方法

    一、實驗動物和主要試劑

    健康Sprague-Dawley(SD)雌性大鼠64只(上海西普爾-必凱實驗動物有限公司),體質(zhì)量200~250 g。75%乙醇(上海利康消毒高科技有限公司)。Ghrelin(GenScript公司)按10 μg/mL稀釋于注射用水,定容至20 mL。Capsazepine(Sigma公司)4 mg溶于10%乙醇溶液中,定容至10 mL。Trizol試劑、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Invitrogen公司)。PCR試劑盒(Ferments公司)。

    二、研究方法

    1. 大鼠分組和急性胃黏膜損傷模型的建立:64只大鼠隨機分為空白對照組、乙醇模型組、ghrelin組和capsazepine組,每組各16只,實驗前禁食24 h,自由飲水。大鼠腹腔注射0.9% NaCl溶液2 mL/kg 1 h后以1 mL/100 g 75%乙醇灌胃誘導(dǎo)急性胃黏膜損傷模型??瞻讓φ战M腹腔注射0.9% NaCl溶液2 mL/kg;ghrelin組大鼠腹腔注射ghrelin 20 μg/kg; capsazepine組先腹腔注射ghrelin 20 μg/kg,15 min后腹腔注射capsazepine 1 mg/kg。1 h后,空白對照組予0.9% NaCl溶液1 mL/100 g灌胃,其余兩組大鼠均予75%乙醇 1 mL/100 g 灌胃。2 h后麻醉取胃行后續(xù)研究。

    2. 大體觀察:肉眼觀察各組大鼠胃大體標(biāo)本。

    3. 胃潰瘍指數(shù):各組大鼠胃組織以4%甲醛溶液固定,沿胃大彎剪開,顯微鏡下觀察出血性病灶,采用測微尺計算胃黏膜損傷面積,正常胃黏膜記0分,點狀損傷記1分,病損小于1 mm記2分,1~2 mm記3分,2~3 mm記4分,依次類推,如損傷寬度大于2 mm,評分加倍,全胃評分的總和為胃潰瘍指數(shù)[6]。

    4. 組織學(xué)觀察:取大鼠胃竇部組織,石蠟切片,行HE染色,光學(xué)顯微鏡下觀察黏膜損傷程度和炎性細(xì)胞浸潤程度。

    5. RT-PCR法檢測eNOS和iNOS mRNA表達(dá):根據(jù)Genbank數(shù)據(jù)庫的基因序列,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成目的基因序列,eNOS引物序列上游:5′-ACC CCC GGC GCT ACG AAG AA-3′,下游:5′-TGG CAG CCG GAA GGA GGG AG-3′,片段長度320 bp;iNOS引物序列上游:5′-TGG CCA GGC TGG AAG CCG TA-3′,下游:5′-CGG GCA TCT GGT AGC CAG CG-3′,片段長度333 bp;以β-actin為內(nèi)參,上游:5′- CCC ATC TAT GAG GGT TAC GC-3′,下游:5′-TTT AAT GTC ACG CAC GAT TTC-3′,片段長度150 bp。采用Trizol試劑提取全部胃竇黏膜組織的總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。PCR反應(yīng)條件:94 ℃ 5 min;94 ℃ 60 s,63 ℃ 45 s,72 ℃ 60 s,共30個循環(huán);72 ℃終延伸10 min。取PCR反應(yīng)產(chǎn)物,行1%瓊脂糖凝膠電泳,采用GENE凝膠圖像處理系統(tǒng)分析,以eNOS和iNOS基因表達(dá)量與β-actin基因表達(dá)量的比值作為目的基因的表達(dá)。

    三、統(tǒng)計學(xué)分析

    結(jié) 果

    一、大體病理學(xué)改變

    空白對照組大鼠胃黏膜完整,未見明顯糜爛潰瘍和出血。乙醇模型組胃黏膜呈暗紅色,部分甚至呈暗黑色,表面大片黏膜脫落,壞死,觸之易出血。Ghrelin組胃底和胃體上部黏膜部分斑片狀糜爛出血,黏膜基本完整。Capsazepine組胃底和胃體上部黏膜明顯糜爛出血,部分壞死,多處潰瘍;而胃體下部和胃竇黏膜基本完整,少量糜爛潰瘍(見圖1)。

    二、胃潰瘍指數(shù)

    空白對照組、ghrelin組大鼠胃潰瘍指數(shù)顯著低于乙醇模型組(P<0.01);capsazepine組胃潰瘍指數(shù)顯著高于ghrelin組(P<0.01),但仍顯著低于乙醇模型組(P=0.028)(見圖2)。

    三、組織病理學(xué)觀察

    空白對照組大鼠胃黏膜完整,胃小凹結(jié)構(gòu)排列整齊;乙醇模型組胃黏膜結(jié)構(gòu)排列紊亂,部分區(qū)域黏膜上皮層缺失,損傷多累及胃黏膜固有腺體;ghrelin組大部分胃黏膜結(jié)構(gòu)排列完整,部分胃固有腺體破壞,炎性細(xì)胞少見;capsazepine組胃黏膜各層排列尚整齊,但損傷累及胃小凹和胃固有腺體,可見變性壞死細(xì)胞,部分見出血和大量中性粒細(xì)胞、單核細(xì)胞聚集(見圖3)。

    A:空白對照組;B:乙醇模型組;C:ghrelin組;D:capsazepine組

    圖2 各組胃潰瘍指數(shù)比較

    A:空白對照組;B:乙醇模型組;C:ghrelin組;D:capsazepine組

    四、eNOS、iNOS mRNA表達(dá)

    乙醇模型組、ghrelin組、capsazepine組eNOS mRNA表達(dá)均較空白對照組顯著升高(P<0.01),ghrelin組eNOS mRNA表達(dá)較乙醇模型組顯著升高(P<0.01),capsazepine組較ghrelin組顯著降低(P<0.01),但與乙醇模型組無明顯差異(見圖4)。

    乙醇模型組、ghrelin組、capsazepine組iNOS mRNA表達(dá)均較空白對照組顯著升高(P<0.01),ghrelin組iNOS mRNA表達(dá)較乙醇模型組顯著降低(P<0.01),capsazepine組較ghrelin組顯著升高(P<0.01),而與乙醇模型組無明顯差異(見圖5)。

    圖4 各組大鼠eNOS mRNA表達(dá)(RT-PCR法)

    圖5 各組大鼠iNOS mRNA表達(dá)(RT-PCR法)

    討 論

    Ghrelin由28個氨基酸殘基組成[7],主要來源于胃黏膜X/A樣細(xì)胞[8]。國外實驗已證實ghrelin具有胃黏膜保護(hù)作用,且與參與調(diào)控NOS/COXs的表達(dá)活性有關(guān),但其作用機制尚不清楚[3-4]。

    胃黏膜對急性應(yīng)激攻擊的反應(yīng)是由胃感覺神經(jīng)反射完成的,因此胃感覺神經(jīng)在保護(hù)胃黏膜的過程中起有重要作用[5]。脊髓傳入神經(jīng)為胃內(nèi)感覺神經(jīng)來源之一。多數(shù)胃脊髓傳入神經(jīng)纖維上存在辣椒素受體,這類神經(jīng)又稱為辣椒素-敏感感覺神經(jīng)(capsaicin-sensitive sensory neurons, CSSN),其受刺激后能激活與受體直接偶聯(lián)的膜離子通道,引起神經(jīng)元及其纖維釋放降鈣基因相關(guān)肽、速激肽和P物質(zhì),并向軸突末梢運輸這些肽類物質(zhì),促使血管內(nèi)皮細(xì)胞和胃黏膜內(nèi)皮細(xì)胞中NO的合成與釋放,NO進(jìn)一步與前列腺素(PG)相互作用,參與增加胃黏膜血流量、抑制炎癥反應(yīng)和維護(hù)碳酸氫鈉鹽屏障等作用,從而維持胃黏膜完整性和抵抗各種局部刺激。研究表明胃黏膜產(chǎn)生的ghrelin作為腦腸肽,可作用于胃外周神經(jīng)節(jié)細(xì)胞的GHSR然后傳遞信號至中樞,產(chǎn)生各種效應(yīng)。ghrelin的胃黏膜保護(hù)作用也依賴于胃感覺神經(jīng)的完整性[9],故推測ghrelin的胃黏膜保護(hù)作用可能與CSSN存在某種聯(lián)系。

    Capsazepine作為辣椒素的異構(gòu)體能競爭性結(jié)合CSSN上的辣椒素受體,從而起抑制CSSN的作用。本實驗發(fā)現(xiàn),ghrelin組大鼠大體和組織病理學(xué)改變較乙醇模型組明顯改善,胃潰瘍指數(shù)明顯降低;而加入capsazepine后,大鼠胃底和胃體上部黏膜明顯糜爛出血,部分壞死,多處潰瘍,呈暗紅色;病理結(jié)果示黏膜腺體破壞,細(xì)胞變性壞死,部分見出血,中性細(xì)胞聚集;且胃潰瘍指數(shù)明顯升高。說明capsazepine能減弱ghrelin對胃黏膜的保護(hù)作用。

    近年研究表明NOS特異性阻斷劑L-NAME能阻斷ghrelin的胃黏膜保護(hù)作用[10],說明ghrelin可能是通過NO介導(dǎo)產(chǎn)生胃黏膜保護(hù)作用。大量研究表明eNOS產(chǎn)生的NO能舒張血管平滑肌,增加胃黏膜血流,抑制白細(xì)胞移動和減輕黏膜炎癥反應(yīng)。而炎癥誘導(dǎo)的iNOS產(chǎn)生的NO具有細(xì)胞毒性作用,能產(chǎn)生非特異性免疫反應(yīng)介導(dǎo)細(xì)胞損傷。兩者共同參與胃黏膜的保護(hù)和炎癥反應(yīng)。本研究中,乙醇模型組iNOS mRNA表達(dá)較空白對照組顯著增加,表明iNOS表達(dá)增加后,產(chǎn)生大量誘導(dǎo)型NO,明顯加重胃黏膜損傷。Ghrelin組eNOS mRNA表達(dá)較乙醇模型組明顯增加,iNOS mRNA表達(dá)明顯下降,同時組織病理學(xué)和胃潰瘍指數(shù)亦明顯改善,表明ghrelin可能通過上調(diào)eNOS mRNA表達(dá)、抑制iNOS表達(dá)而減輕細(xì)胞損傷。而加入capsazepine后,eNOS mRNA表達(dá)較ghrelin組明顯下降,iNOS mRNA表達(dá)增強,且與乙醇模型組均無明顯差異,結(jié)合ghrelin組大體、組織學(xué)改變和胃潰瘍指數(shù)均明顯優(yōu)于capsazepine組的結(jié)果,說明capsazepine組胃黏膜損傷較ghrelin組嚴(yán)重的原因可能是capsazepine阻斷了ghrelin對NOS的調(diào)節(jié)作用,尤其是阻斷了ghrelin對iNOS的抑制作用。

    總之,本實驗給予大鼠capsazepine抑制辣椒素受體后,ghrelin的胃黏膜保護(hù)作用減弱,血管源性eNOS mRNA表達(dá)較ghrelin組下降,而iNOS mRNA表達(dá)增強,表明ghrelin的胃黏膜保護(hù)作用可能由CSSN上的辣椒素受體介導(dǎo)。但其機制是通過胃脊髓傳入神經(jīng)和迷走神經(jīng)的胃壁內(nèi)短反射,還是通過脊髓傳入神經(jīng)和迷走神經(jīng)傳遞ghrelin信號至中樞下丘腦弓狀核等部位,然后通過神經(jīng)調(diào)節(jié)激活CSSN,目前尚不清楚,仍有待進(jìn)一步研究證實。

    1 Kojima M, Hosoda H, Date Y, et al. Ghrelin is a growth-hormone-releasing acylated peptide from stomach[J]. Nature, 1999, 402 (6762): 656-660.

    2 Papotti M, Ghè C, Cassoni P, et al. Growth hormone secretagogue binding sites in peripheral human tissues[J]. J Clin Endocrinol Metab, 2000, 85 (10): 3803-3807.

    3 Sibilia V, Rindi G, Pagani F, et al. Ghrelin protects against ethanol-induced gastric ulcers in rats: studies on the mechanisms of action[J]. Endocrinology, 2003, 144 (1): 353-359.

    4 Brzozowski T, Konturek PC, Konturek SJ, et al. Exogenous and endogenous ghrelin in gastroprotection against stress-induced gastric damage[J]. Regul Pept, 2004, 120 (1-3): 39-51.

    5 Peskar BM. Neural aspects of prostaglandin involvement in gastric mucosal defense[J]. J Physiol Pharmacol, 2001, 52 (4 Pt 1): 555-568.

    6 徐叔云, 卞如濂, 陳修. 藥理實驗方法學(xué)[M]. 第2版. 北京: 人民衛(wèi)生出版社, 1991: 1158-1162.

    7 Hosoda H, Kojima M, Matsuo H, et al. Ghrelin and des-acyl ghrelin: two major forms of rat ghrelin peptide in gastrointestinal tissue[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2000, 279 (3): 909-913.

    8 Rindi G, Necchi V, Savio A, et al. Characterisation of gastric ghrelin cells in man and other mammals: studies in adult and fetal tissues[J]. Histochem Cell Biol, 2002, 117 (6): 511-519.

    9 Brzozowski T, Konturek PC, Drozdowicz D, et al. Role of central and peripheral ghrelin in the mechanism of gastric mucosal defence[J]. Inflammopharmacology, 2005, 13 (1-3): 45-62.

    10 Sibilia V, Pagani F, Rindi G, et al. Central ghrelin gastroprotection involves nitric oxide/prostaglandin cross-talk[J]. Br J Pharmacol, 2008, 154 (3): 688-697.

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