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    大豆耐鹽基因的預(yù)測與篩選

    2014-07-10 10:42:03
    池州學(xué)院學(xué)報 2014年3期
    關(guān)鍵詞:耐鹽耐鹽性大豆

    原 野

    (復(fù)旦大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,上海 200433)

    大豆耐鹽基因的預(yù)測與篩選

    原 野

    (復(fù)旦大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,上海 200433)

    本研究運用生物信息學(xué)方法和實驗驗證,對大豆的3號染色體上Satt339~Sat304區(qū)間內(nèi)耐鹽相關(guān)基因進行了結(jié)構(gòu)和功能預(yù)測,篩選大豆的耐鹽性狀相關(guān)基因。通過實時熒光PCR技術(shù),定量分析候選基因響應(yīng)于鹽脅迫。

    大豆;耐鹽基因;生物信息學(xué);基因篩選

    作為我國重要的經(jīng)濟作物之一,大豆的耐鹽性較敏感,尤其在我國北方地區(qū),可用耕地多為鹽性土壤,對大豆的生長影響較大。因此,找到耐鹽基因,解決大豆的耐鹽問題是克服土壤鹽漬化的重要前提[1],是我國農(nóng)業(yè)經(jīng)濟可持續(xù)發(fā)展的關(guān)鍵。已有的研究表明,植物的抗鹽性是一個由多基因控制的數(shù)量性狀,其抗性機制是一個十分復(fù)雜的問題[2],涉及植物器官、組織、細胞、細胞器直至分子,既有蛋白質(zhì)、核酸、碳水化合物等結(jié)構(gòu)和能量物質(zhì)的代謝,還有激素合成、抗氧化酶活化、離子調(diào)控與區(qū)域化、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)合成及基因表達[3],許多基因會隨環(huán)境中鹽濃度的改變而改變表達量[4]。而過高的土壤含鹽量會對植株造成包括水分脅迫、離子脅迫、光合作用下降等多方面不利影響[5-12],等。國外文獻中刊載的相關(guān)研究[13-16]是針對農(nóng)作物耐鹽性的研究[12,15,17,18],Mansour(2004)等主要是和對植物耐鹽性狀分子機理的研究。以往的研究中,對于大豆的耐鹽性狀研究尚顯薄弱。正是基于此現(xiàn)狀的啟發(fā),確定以大豆為研究對象,應(yīng)用Softberry的ORF預(yù)測功能和美國國立生物技術(shù)信息中心(NCBI)的BLAST檢索系統(tǒng)獲取大豆基因的基因結(jié)構(gòu)并進行生物信息學(xué)分析,了解基因可能的功能,高效地縮小大豆耐鹽候選基因的范圍。在得到大豆耐鹽候選基因后,通過對大豆植株進行DNA酶切和PCR擴增,驗證候選基因的存在。繼而對大豆植株進行鹽脅迫,通過運用實時熒光PCR技術(shù),定量驗證目的基因響應(yīng)于大豆植株受到的鹽脅迫。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料

    實驗所用合豐39大豆種由上海交通大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院提供。

    1.2 大豆耐鹽基因的篩選

    大豆耐鹽候選基因的篩選即通過生物信息學(xué)方法,分析大豆基因序列,在不少于1.4Mbp的序列內(nèi)分析基因功能,預(yù)測與大豆耐鹽性相關(guān)的基因。通過phytozome網(wǎng)站,得到大豆的全基因組序列,并在標(biāo)記基因JD33前后,在Gm03染色體上標(biāo)記基因Satt339~Sat304之間,選取約1.4Mbp的DNA序列,通過Softberry的FGENESH分析,得到預(yù)測基因序列。

    通過NCBI的BLAST分析 (蛋白質(zhì)序列),將預(yù)測的ORF(開放閱讀框)與基因庫(Gene Bank)的雙子葉植物數(shù)據(jù)庫進行比對,篩選同源序列。根據(jù)序列相似程度(E值、Score值)以及基因組成,對基因進行綜合分析,從而排除不完整的基因片段。

    根據(jù)已注釋的直系同源基因的功能對大豆ORF的功能進行預(yù)測,確定與耐鹽相關(guān)的候選基因。

    1.3 候選基因的PCR驗證

    大豆耐鹽閾值,即當(dāng)外界土壤或水中鹽濃度 (以NaCl計)超過時植株生長開始受到嚴(yán)重影響,如枝葉萎靡、生長驟緩、葉片出現(xiàn)斑點等,是大豆耐鹽性的重要指標(biāo)。測定合豐39大豆耐鹽閾值,即作為植株鹽脅迫實驗的標(biāo)準(zhǔn)濃度。

    選飽滿、色澤亮黃的大豆種,分組置于培養(yǎng)皿中,置于干燥器中,加100ml NaClO溶液(84消毒液)與1.5ml 37%HCl,滅菌24小時。將大豆種置于1.2%水瓊脂培養(yǎng)基上,4℃春化24小時;轉(zhuǎn)入光照培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)3~5天。大豆出芽后,轉(zhuǎn)入50% 霍格蘭氏培養(yǎng)液,光照培養(yǎng)箱中,光照16小時/天,23℃持續(xù)水培。

    配置含鹽霍格蘭氏工作液 (50%濃度),NaCl濃度梯度為 0mmol/L、0mmol/L ( 對 照 組 )、20mmol/L、40mmol/L、60mmol/L、80mmol/L、100mmol/L、120mmol/L、150mmol/L, 共9組,每組9或10株,光照16小時/天,24~25℃,每3日更換含鹽培養(yǎng)液,持續(xù)水培。

    第二周期在前一周期試驗的基礎(chǔ)上,NaCl濃度梯度為0mmol/L(對照組)、40mmol/L、45mmol/L、50mmol/L、55mmol/L、60mmol/L,共六組,其余條件同上。

    鹽脅迫兩周后取樣。隨機抽取每組植株一株,記錄植株生長情況,包括第一、第二對真葉葉長、根長、莖長和植株出現(xiàn)的特殊狀況,如葉上長癍,莖葉萎靡等。觀察分析得到實驗中合豐39大豆的耐鹽閾值。

    通過生物信息學(xué)方法,我們已經(jīng)獲得了大豆耐鹽相關(guān)的候選基因。但其中很有可能仍包括一些不完整的基因片段。于是,我們對候選基因進行實驗驗證。

    在對候選基因的進一步分析、選優(yōu)過程中,我們發(fā)現(xiàn)個別基因過短、保守域在基因中所占比例過大,難以設(shè)計合適的PCR引物的情況。借助計算機軟件Primer Premier 5.0,設(shè)計CG含量介于40%~60%、一對3’~5’和5’~3’引物退火溫度相差不超過5℃、引物長度介于18~25bp之間、PCR產(chǎn)物在300bp以上的對應(yīng)引物,并盡量確保沒有發(fā)卡或回文結(jié)構(gòu)。

    采用合豐39大豆耐鹽閾值濃度50mmol/L NaCl的50%霍格蘭氏培養(yǎng)液,對水培植株進行鹽脅迫12小時,共5株。

    取每棵植株第一片、第二片真葉各一片,一部分根。剪下植株組織后迅速置于10ml離心管中,標(biāo)記后置于液氮中保存。

    使用康為RNA pure Plant Kit試劑盒提植物RNA,將獲得的 RNA溶液10μL, 向其中加入 1μL oligodT(50mmol/L),混勻離心,置于70℃水浴5分鐘。取出后立刻冰浴5分鐘。后向其中加入:

    4μL 5×反轉(zhuǎn)錄酶的 Buffer;1μL反轉(zhuǎn)錄酶;0.5μL RNA酶 抑 制 劑 ;2.4μL Mg離 子 溶 液 (2.5mM);1.1μL dNTPs(2.5mM)混勻后,25℃水浴5分鐘,再置于42℃水浴1小時,得到cDNA。

    使 用 溫度梯度 PCR方 法, 從 51、53、55、56、57℃至59℃,共六個溫度梯度,40個循環(huán),平行進行PCR擴增:

    25μL System:2.5μL dNTPs;2.5μL 10×Taq buffer;0.5μL模板 cDNA;0.25μL正向引物S;0.25μL反向引物A;18.5μL水;0.5μL Taq酶。

    配置1%瓊脂,冷凝后加入樣本、Marker,110V電泳,30分鐘后用EB染色,拍照。根據(jù)Marker條帶,估計PCR產(chǎn)物大小。并根據(jù)樣本條帶亮度,與對照組對比,估算濃度。

    通過實驗,排除未能正常擴增的基因片段或不響應(yīng)與大豆鹽脅迫的基因。

    1.4 實時熒光定量PCR測定預(yù)測基因表達量

    通過普通PCR擴增與瓊脂糖凝膠電泳實驗,可以證明實驗選取的一部分基因是在大豆植株中存在并與耐鹽有關(guān)的。而實時熒光定量PCR實驗可以定量檢測預(yù)測基因在大豆植株中的表達量,并測定其改變量。因此,我們可以分析檢測同一基因在受不同時間鹽脅迫植株中的表達量,確定預(yù)測基因與大豆耐鹽的相關(guān)性。(步驟同驗證候選基因)

    采用合豐39大豆耐鹽閾值濃度,含50mmol/L NaCl的50%霍格蘭氏培養(yǎng)液,對水培大豆植株進行鹽脅迫,分別進行鹽脅迫0小時、3小時、12小時、24小時、3天、5天,共6組,每組5株。按照相應(yīng)脅迫時間進行取樣 (取樣方法同1.3.2)。

    使用康為RNApure Plant Kit提植物RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA。(提取、反轉(zhuǎn)錄方法同步驟同驗證候選基因)PCR退火溫度為57℃,40個循環(huán),每組5個樣品,分別將模板中cDNA濃度稀釋1倍、10倍、100倍、1000倍、10000倍,加入SYBR Green熒光染料,平行進行實時熒光定量PCR擴增。

    最終確定預(yù)測基因的表達式樣與大豆所受鹽脅迫的相關(guān)性。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 大豆耐鹽基因的篩選結(jié)果

    2.1.1 ORF預(yù)測結(jié)果 通過SoftBerry網(wǎng)站的相關(guān)軟件,我們以大豆基因組中1167011bp的DNA序列為基礎(chǔ)。預(yù)測了ORF共211個,其中113個位于正鏈,98個位于負鏈,平均長度1007bp;967個外顯子,平均長度220bp。

    2.1.2 同源基因檢索結(jié)果 通過在NCBI雙子葉植物基因數(shù)據(jù)庫中進行BLAST檢索,211個預(yù)測基因中86個ORF沒有發(fā)現(xiàn)相似的序列,被淘汰;125個ORF與其它雙子葉植物基因有較強的相似性。根據(jù)已注釋的大豆及其它雙子葉植物基因的功能,從125個ORF中篩選出25個可能與大豆耐鹽相關(guān)的抗鹽候選基因。其功能涉及包括離子交換和調(diào)控基因表達等。

    2.2 大豆耐鹽候選基因PCR驗證結(jié)果

    2.2.1 合豐39大豆的耐鹽閾值測定結(jié)果

    表1 第一周期耐鹽范圍測定的實驗結(jié)果

    通過分析表1數(shù)據(jù),鹽濃度在120mmol/L及以上的情況下,植株死亡過半,這種環(huán)境對于植株的脅迫作用相當(dāng)明顯,極大抑制植株的生長。鹽濃度在60mmol/L及以上的情況下,植株的葉子生長情況較差,葉片普遍偏小且下垂、黃萎,這種環(huán)境對于植株生長有比較大的脅迫作用。20mmol/L組共有9株樣品,其中有一株從第一對真葉展開后生長明顯遲緩,而后逐漸黃萎,在培養(yǎng)兩周后枯萎,個體異常造成該組存活率異常。綜合以上結(jié)果,可以分析得到合豐39大豆的耐鹽極限大致在40mmol/L—60mmol/L NaCl。

    表2 第二周期耐鹽范圍測定的實驗結(jié)果

    通過表2我們可以看出,當(dāng)鹽濃度超過50mmol/L后,第一片真葉黃萎、枯死明顯,第二片真葉雖都存活,但植株葉與根的生長都受到一定影響。經(jīng)過第二周期實驗,合豐39型大豆的耐鹽閾值可以確定在50-55mmol/L NaCl。

    2.2.2 候選基因PCR驗證結(jié)果

    通 過 瓊 脂 糖 凝 膠 電 泳 實 驗 ,ORF20、ORF31、ORF33、ORF42、ORF62、ORF63和ORF79,都沒有明顯可見條帶,很有可能是不直接響應(yīng)于大豆鹽脅迫,遂將其排除;其它基因都基本正常擴增,證實它們在植株中能夠正常表達,確定候選基因13個。

    2.3 實時熒光定量PCR結(jié)果

    實驗一共進行了兩組,第一組將13個精篩后的候選基因和Tube、AS,共15個樣品進行實驗操作,繪制擴增曲線,分析DNA溶解溫度,最終確定10個候選基因,)進行第二組定量PCR擴增,精確測定表達量。

    實驗數(shù)據(jù)采用2-ΔΔCt法處理,即以基因在每組脅迫0小時植株的根中的表達量為標(biāo)準(zhǔn)量1,計算相對表達量。實驗結(jié)果按根中的表達量可分為3種:

    (1)單調(diào)增加。ORF179和ORF202在根中的表達量都是隨鹽脅迫時間成線性上升,說明該基因的表達是與植株耐鹽性狀正向相關(guān)的。如ORF179是PHD finger蛋白家族相關(guān)基因,參與到染色體狀態(tài)的調(diào)控和基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控等[9],該基因在鹽脅迫下的表達量增加,很可能是植株克服逆境的重要機制。

    (2)先增高后降低。這些基因可能是植株的某種應(yīng)急機制。在受到鹽脅迫時,植株立即響應(yīng),提高某些基因的表達,對抗不利環(huán)境,隨后在其它基因的陸續(xù)作用,或外界不利條件加劇的影響下,基因表達量再降低。如ORF160是亮氨酸拉鏈相關(guān)基因,是植物基因調(diào)控的重要因子,其在根中表達量上升又下降,很可能是受其他基因的影響,在短時的高表達之后,作用漸漸被其他基因所取代。

    (3)單調(diào)下降。對于鹽脅迫時間長而表達量單調(diào)下降的基因而言,是與鹽脅迫反向相關(guān)。這樣的基因可能是受到鹽脅迫,表達被抑制。

    圖1 實時熒光定量PCR

    3 結(jié)論

    實時熒光定量PCR的結(jié)果顯示,ORF179和ORF202是與大豆所受鹽脅迫成正相關(guān)的。說明其不僅響應(yīng)于大豆植株所受的鹽脅迫,還很有可能調(diào)控大豆其它相關(guān)基因的表達以對抗高鹽濃度對植株造成的損害。

    ORF123等基因在根中的表達量都呈現(xiàn)先增高,后降低的過程。如ORF123,基因功能可能是Na+/H+逆向運輸?shù)鞍紫嚓P(guān)的基因,能降低胞質(zhì)Na+濃度,減輕Na+對酶類和膜系統(tǒng)的傷害,但之后其表達量又有所下降,推測是因為隨著鹽脅迫時間的增長,鹽溶液對植株的毒害作用逐漸增大,對其表達產(chǎn)生了影響;而其它基因功能可能為轉(zhuǎn)錄因子,其先增高后降低的趨勢,可能是一種預(yù)警或應(yīng)激機制,與耐鹽性狀并非直接相關(guān)。

    ORF61在根中的表達量隨著鹽脅迫時間的增長而下降,屬于與鹽脅迫反向相關(guān)。

    綜上所述,與鹽脅迫正向相關(guān)的基因ORF179 PHD finger transcription factor-like protein,位于大豆基因負鏈上;ORF202 ccaat-binding transcription factor subunit A,位于大豆基因正鏈上,是兩個調(diào)控基因。預(yù)測基因功能與離子轉(zhuǎn)運有關(guān)的基因ORF123 Na+/H+antiporter-like protein,位于大豆基因正鏈上,是結(jié)構(gòu)基因。根據(jù)多步實驗的逐級驗證,這三個基因在大豆植株中與其耐鹽性狀相關(guān)。

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    [責(zé)任編輯:錢立武]

    Q344

    A

    1674-1104(2014)03-0158-03

    10.13420/j.cnki.jczu.2014.03.050

    2014-03-14

    原野(1992-),男,山西黎城人,復(fù)旦大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院學(xué)生,研究方向為植物生理及生物進化。

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