謝晶磊,曹小妹,尋 艷,陳 丹,何婧琳,曹 忠*
(1.長沙理工大學(xué)化學(xué)與生物工程學(xué)院,電力與交通材料保護(hù)湖南省重點實驗室,湖南長沙410004)
(2.湖南師范大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,湖南長沙410081)
萊克多巴胺(Ractopamine,RAC)是一種β-腎上腺素興奮劑,臨床上常用于治療支氣管哮喘、支氣管痙攣和肺氣腫[1]。20世紀(jì)80年代,科學(xué)研究發(fā)現(xiàn)使用RAC可以有效提高動物胴體的瘦肉率[2~3],因而被非法應(yīng)用于畜牧飼養(yǎng)中。然而,RAC在動物體內(nèi)的殘留期較長,且具有一定的毒性,攝入后會對人體的心血管和中樞神經(jīng)系統(tǒng)具有潛在危害[4~6]。RAC的濫用,不僅對人們的健康和生命安全造成了嚴(yán)重威脅,同時也影響了我國禽畜產(chǎn)品的出口貿(mào)易。因此,包括中國在內(nèi)的多國都嚴(yán)禁在動物性飼料中添加RAC,并對RAC在動物組織中的最大殘留限量(Maximal residue limits,MRL)做出了明確規(guī)定。其中,世界衛(wèi)生組織食品添加劑專家聯(lián)席委員會(JECFA)規(guī)定RAC在肝臟和肌肉中的MRL分別為40和10 μg/kg[7]。由此可見,研究和開發(fā)檢測動物組織中殘留的RAC的技術(shù)和方法對維護(hù)食品安全和國家經(jīng)濟(jì)建設(shè)具有極其重要的意義。
到目前為止,檢測動物組織中殘留的RAC的方法技術(shù)主要有:高效液相色譜[8]、液相色譜儀-質(zhì)譜聯(lián)用[9~10]、氣相色譜[11]、免疫法[12~13]和毛細(xì)管電泳[14]。這些方法雖然具有高準(zhǔn)確性和高靈敏度,但是這些方法需要大型分析儀器、操作過程復(fù)雜且檢測周期過長,無法滿足大量樣品的現(xiàn)場檢測。因此,有必要建立一種簡單和高效的方法來檢測RAC。其中,簡單高效的電化學(xué)分析法對檢測RAC更具優(yōu)勢,目前已有不少國內(nèi)外研究者進(jìn)行這方面的研究[15~17]。然而,單組份納米材料修飾電極對RAC的響應(yīng)靈敏度不高,還存在抗干擾能力較弱以及重現(xiàn)性差等缺點。
因此,為了建立一種更為快速靈敏的RAC電化學(xué)傳感器,該文將氧化石墨烯摻雜雙壁碳納米管并以Nafion為分散劑,成功地制備出均一且穩(wěn)定的GO/DWCNT-Nafion復(fù)合材料修飾電極。該復(fù)合材料修飾電極對RAC表現(xiàn)出了極強的電催化氧化效應(yīng),氧化峰電流明顯增強。該方法操作簡單、靈敏度高、選擇性好,在食品安全檢測領(lǐng)域具有應(yīng)用價值。
CHI760B型電化學(xué)工作站(上海辰華儀器有限公司),BS124S電子天平 (北京賽多利斯儀器有限公司),KQ3200B超聲波清洗器(昆山市超聲儀器公司),95-2型磁力攪拌器(上海司樂儀器有限公司),CZ-500L-W型超純水制備儀 (北京國之源有限公司)。
鹽酸萊克多巴胺(C18H22NO3·HCl,RAC)購自于德國Ehrenstrorfer博士醫(yī)藥股份有限公司,氧化石墨烯(GO)、雙壁碳納米管(DWCNT)購買于南京吉倉納米科技有限公司,無水乙醇、氯化鋇、硫酸鋅、硝酸鋁、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、尿酸、抗壞血酸、葡萄糖、精氨酸、亮氨酸、半胱氨酸、丙氨酸及酪氨酸購自于上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,實驗用水為超純水,所用試劑均為分析純。
稱取30 mg雙壁碳納米管,加入到盛有15mL濃HNO3溶液的圓底燒瓶中,油浴加熱并攪拌回流7 h后,冷卻至室溫并離心,去除上清液。將所得產(chǎn)物加入到10mL濃HCl中,超聲1 h后離心,去除上清液后用去離子水洗滌產(chǎn)物至中性。最后在100℃下真空干燥10 h,得到酸化的雙壁碳納米管,備用。取3 mg處理后的雙壁碳納米管與3 mg氧化石墨烯加入到12mL Nafion(0.1%)的無水乙醇溶液中,超聲分散,直至得到均一深棕色GO/DWCNT-Nafion分散液。移取5 μL GO/DWCNT-Nafion分散液,滴加在處理好的玻碳電極表面,待溶劑自然揮發(fā)干燥,用超純水沖洗電極表面去除結(jié)合不牢固的修飾物,制得GO/DWCNT-Nafion修飾電極。
使用電化學(xué)工作站,以GO/DWCNT-Nafion修飾的玻碳電極為工作電極,Ag/AgCl電極為參比電極,鉑絲電極為對電極構(gòu)建常規(guī)的三電極體系,使用差分脈沖伏安法(DPV),在 pH=7.0 的PBS緩沖液中于-0.3 V下富集120 s后對不同濃度的 RAC 溶液 (1.0×10-8,5.0×10-8,1.0×10-7,2.5×10-7,5.0×10-7,7.5×10-7,1.0×10-6mol/L)進(jìn)行檢測,記錄其氧化峰電流值。每次檢測前,將GO/DWCNT-Nafion修飾電極置于PBS緩沖液中在0~1.2 V的范圍內(nèi)掃描循環(huán)伏安至穩(wěn)定。
通過掃描電子顯微鏡(SEM)對裸玻碳電極(GCE)、氧化石墨烯-Nafion修飾電極 (GONafion/GCE)、氧化石墨烯/雙壁碳納米管-Nafion修飾電極(GO/DWCNT-Nafion/GCE)的表面形貌進(jìn)行了表征,結(jié)果如圖1所示。從圖1中可以看到裸玻碳電極(圖1A)的表面十分光滑平整;當(dāng)氧化石墨烯-Nafion修飾到電極上時,可以很直觀地觀察到氧化石墨烯的褶皺狀結(jié)構(gòu) (圖1B);而在將氧化石墨烯與雙壁碳納米管參雜后,氧化石墨烯和雙壁碳納米管均勻分散在電極表面(圖1C)。氧化石墨烯與雙壁碳納米管的這種交疊結(jié)構(gòu)使得氧化石墨烯/雙壁碳納米管-Nafion修飾電極具有更大的比表面積,有利于增加萊克多巴胺分子的吸附量。
圖1 裸玻碳電極(A),GO-Nafion修飾電極(B),GO/DWCNT-Nafion修飾電極(C)的掃描電鏡圖Fig.1 SEM images of bare GCE(A),GO-Nafion/GCE(B),GO/DWCNT-Nafion/GCE(C)
將GO-Nafion修飾電極、DWCNT-Nafion修飾電極和GO/DWCNT-Nafion修飾電極分別對5.0×10-7mol/L的萊克多巴胺溶液進(jìn)行差分脈沖伏安實驗,結(jié)果如圖2所示。由圖2曲線a、b、c可知,GO/DWCNT-Nafion修飾電極對萊克多巴胺的氧化峰電流要明顯強于GO-Nafion修飾電極和DWCNT-Nafion修飾電極,說明GO/DWCNT-Nafion復(fù)合材料對萊克多巴胺氧化作用具有更強的電催化氧化效應(yīng),這是由于GO和DWCNT之間更緊湊的空間結(jié)構(gòu)導(dǎo)致電極表面在擁有更多的具有電化學(xué)活性區(qū)域以及更大的比表面積[18],協(xié)同增強萊克多巴胺的電催化氧化。
pH直接影響著萊克多巴胺在GO/DWCNTNafion修飾電極上的電化學(xué)行為。在pH值為2.0~9.0 的 PBS 緩沖液(0.01 mol/L)中,萊克多巴胺(2.0×10-7mol/L)的氧化峰電流和氧化峰電位隨pH值的變化關(guān)系如圖3所示。當(dāng)PBS緩沖液的pH值由2.0增加到7.0時,萊克多巴胺的氧化峰電流逐漸增大:當(dāng)緩沖液的pH=7.0時,萊克多巴胺的氧化峰電流達(dá)到最大值;而當(dāng)緩沖液的pH值超過7.0之后,氧化峰電流開始降低。因此,選擇pH=7.0的PBS緩沖體系檢測萊克多巴胺。
圖2 不同修飾電極在5.0×10-7mol/L的萊克多巴胺溶液中的差分脈沖伏安圖Fig.2 DPV curves of GO-Nafion/GCE(a),DWCNTNafion/GCE(b)and GO/DWCNT-Nafion/GCE(c)in phosphate buffer solution(0.1 mol/L,pH=7.0)containing 5.0×10-7mol/L RAC
在pH=7.0的PBS緩沖液中于-0.3 V下富集120 s后,使用GO/DWCNT-Nafion修飾電極檢測不 同 濃 度 的 萊 克 多 巴 胺 (1.0×10-8,5.0×10-8,1.0×10-7,2.5×10-7,5.0×10-7,7.5×10-7,1.0×10-6mol/L),結(jié)果如圖4所示。萊克多巴胺的電信號隨著其濃度的增長而逐漸增強,峰電流與萊克多巴胺濃度在 1.0×10-8mol/L~1.0×10-6mol/L 范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系,其線性方程為ip(μA)=9.319c(μmol/L)+0.147,相關(guān)系數(shù) r=0.998 1,檢測限為 5.4×10-9mol/L(S/N=3)。 這說明該電化學(xué)傳感器對于萊克多巴胺具有較好的電催化氧化響應(yīng)。
圖3 不同pH對檢測2.0×10-7mol/L萊克多巴胺的影響Fig.3 Effects of pH on the detection of 2.0×10-7mol/L RAC
圖4 GO/DWCNT-Nafion修飾電極對不同濃度萊克多巴胺的差分脈沖伏安圖(A)及其響應(yīng)電流與萊克多巴胺濃度的校正曲線(B)Fig.4 Typical DPV curves(A)of different concentrations of RAC and corresponding calibration curve(B)
為了考察該方法對RAC檢測的選擇性,以常見生物體內(nèi)的常見分子和結(jié)構(gòu)相似的化合物干擾物進(jìn)行差分脈沖伏安測試(圖5)。固定萊克多巴胺的濃度為2.0×10-7mol/L,含有1 000倍濃度的 Ba2+、Zn2+、Al3+,100 倍濃度的尿酸、 抗壞血酸、葡萄糖、精氨酸、亮氨酸、丙氨酸和半胱氨酸的共存均對萊克多巴胺的檢測無干擾;同倍濃度的克倫特羅對萊克多巴胺的檢測有較小的干擾,響應(yīng)電流上升了約9.1%;100倍濃度的酪氨酸有一定的干擾性,響應(yīng)電流提高了75.3%,當(dāng)酪氨酸的濃度降到25倍時,對萊克多巴胺的檢測無影響。
該文將雙壁碳納米管和氧化石墨烯超聲分散于Nafion溶液中,成功的制備了均一的GO/DWCNT-Nafion復(fù)合納米材料修飾玻碳電極。與GO-Nafion修飾電極和DWCNT-Nafion修飾電極相比,GO/DWCNT-Nafion修飾電極對萊克多巴胺表現(xiàn)出了強的催化氧化效應(yīng),響應(yīng)電流明顯增強。在pH=7.0的PBS緩沖液中于-0.3 V下富集120 s后,GO/DWCNT-Nafion修飾電極對萊克多巴胺在 1.0×10-8~1.0×10-6mol/L 的范圍內(nèi)有著良好的線性響應(yīng),檢測限為 5.4×10-9mol/L,且選擇性好,表明該傳感器在食品安全檢測領(lǐng)域中具有實際應(yīng)用價值。
圖5 干擾物效應(yīng)柱狀圖.萊克多巴胺的濃度為 2.0×10-7mol/L,Ba2+、Zn2+、Al3+的濃度為 2.0×10-4mol/L,尿酸、抗壞血酸、葡萄糖、精氨酸、亮氨酸、丙氨酸和半胱氨酸的濃度為2.0×10-5mol/L,克倫特羅濃度為2.0×10-7mol/LFig.5 Effect of interfering substance on the modified electrode.The concentration of RAC is 2.0×10-7mol/L,and Ba2+,Zn2+,and Al3+are 2.0×10-4mol/L,uric acid,ascorbic acid,glucose,L-leucine,L-cysteine,L-alanine,and L-tyrosine are 2.0×10-5mol/L,and CLB is 2.0×10-7mol/L
[1]Johnson S E,Stelzleni A M,Thrift T A,et al.Effect of ractopamine-HCl supplementation for 28 days on carcass characteristics,muscle fiber morphometrics,and whole muscle yields of six distinct muscles of the loin and round[J].Meat.Sci.,2010,85:379~384.
[2]Dong J X,Li Z F,Lei H T,et al.Development of a singlechain variable fragment-alkaline phosphatase fusion protein and a sensitive direct competitive chemiluminescent enzyme immunoassay for detection of ractopamine in pork[J].Anal.Chim.Acta,2012,736:85~91.
[3]Eshaq S,Chai S C,Jamokha S,et al.Determination of ractopamine in animal tissues by liquid chromatographyfluorescence and liquid chromatography/tandem mass spectrometry[J].Anal.Chim.Acta,2003,483:137~145.
[4]Bolera D D,Shrecka A L,Faulknera D B,et al.Effect of ractopamine hydrochloride(Optaflexx)dose on live animal performance,carcass characteristics and tenderness in early weaned beef steers[J].Meat Sci.,2012,92:458~463.
[5]Vale A.β2-Agonists[J].Medicine,2007,35:597.
[6]Halsey C H C,Weber P S,Reiter S S,et al.The effect of ractopamine hydrochloride on gene expression in adipose tissues of finishing pigs[J].J.Ani.Sci.,2011,89:1 011~1 019.
[7]Residues of Some Veterinary Drugs in Animals and Foods[M].FAO Food and Nutrition paper 41/14,2004,16:90.
[8]Turberg M P,Rodewald J M,Coleman M R.Determination of ractopamine in monkey plasma and swine serum by high-performance liquid chromatography with electrochemical detection[J].J.Chromatogr.B,1996,675:279~285.
[9]Dong Y C,Xia X,Wang X,et al.Validation of an ultraperformance liquid chromatography-tandem mass spectrometry method for determination of ractopamine:Application to residue depletion study in swine[J].Food Chem.,2011,127:327~332.
[10]Li C,Wu Y L,Yang T,et al.Simultaneous determination of clenbuterol,salbutamol and ractopamine in milk by reversed-phase liquid chromatography tandem mass spectrometry with isotope dilution[J].J.Chromatogr.A,2010,1217:7 873~7 877.
[11]He L M,Su Y J,Zeng Z L,et al.Determination of ractopamine and clenbuterol in feeds by gas chromatography–mass spectrometry[J].Ani.Feed Sci.Technol.,2007,132:316~323.
[12]Liu M,Ning B A,Qu L J,et al.Development of indirect competitive immunoassay for highly sensitive determination of ractopamine in pork liver samples based on surface Plasmon resonance sensor[J].Sens.Actuators,B,2012,161(1):124~130.
[13]Dong J X,Li Z F,Lei H T,et al.Development of a singlechain variable fragment-alkaline phosphatase fusion protein and a sensitive direct competitive chemiluminescent enzyme immunoassay for detection of ractopamine in pork[J].Anal.Chim.Acta,2012,736:85~91.
[14]Wang W Y,Zhang Y L,Wang J Y,et al.Determination of β-agonists in pig feed,pig urine and pig liver using capillary electrophoresis with electrochemical detection[J].Meat Sci.,2010,85:302~305.
[15]Liu Z,Zhou Y K,Wang Y Y,et al.Enhanced oxidation and detection of toxic ractopamine using carbon nanotube film-modified electrode[J].Electrochim.Acta,2012,74:139~144.
[16]Wu C,Sun D,Li Q,et al.Electrochemical sensor for toxic ractopamine and clenbuterol based on the enhancement effect of graphene oxide[J].Sens.Actuators,B,2012,168:178~184.
[17]Duan J H,He D W,Wang W S,et al.The fabrication of nanochain structure of gold nanoparticles and its application in ractopamine sensing[J].Talanta,2013,115:992~998.
[18]Wang S C,Yang J,Zhou X Y,et al.Electrochemical properties of carbon nanotube/graphene oxide hybrid electrodes fabricated via layer-by-layer self-assembly[J].J.Electroanal.Chem.,2014,722-723:141~147.