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(1.云南農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)業(yè)生物多樣性研究中心,云南 昆明 650201;2.宣威市農(nóng)業(yè)局農(nóng)技推廣中心,云南 宣威 655400)
過去的研究中,微生物多樣性的數(shù)據(jù)采集方法主要包括:Biolog ECO[1]、變性梯度凝膠電泳(DGGE)[2-3]、磷脂脂肪酸(PLFA)[4]、宏基因組(Metagenome)[5]、隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA標(biāo)記(RAPD)[6]、擴(kuò)增片段長度多態(tài)性(AFLP)[7]等技術(shù)。其中,Biolog ECO和DGGE是微生物研究的重要工具。微生物多樣性的數(shù)據(jù)是多元變量,目前,多元變量分析方法有無監(jiān)督分析方法及有監(jiān)督的分析方法2種。無監(jiān)督分析方法中的主成分(PCA)常用于不同環(huán)境條件下微生物多樣性差異的研究,但是無監(jiān)督分析方法存在以下問題:無法建立模型及進(jìn)行可靠性檢測;無法進(jìn)行分類,無法識(shí)別樣本間微小差異,目標(biāo)性弱,結(jié)果分散,效率低;臨界值的判定依賴PCs的得分系數(shù),目前無統(tǒng)一的臨界值。有監(jiān)督的分析方法有最小二乘法(PLS)[8]、正交最小二乘法(OPLS)[9-10]、kernel 函數(shù)正交最小二乘法(K-OPLS)[11]、最小二乘法判別法(PLS-DA)[12]、最小二乘法增強(qiáng)判別法(PLS-EDA)、正交最小二乘法判別法(OPLS-DA)[13]、kernel函數(shù)正交最小二乘法判別法(K-OPLS-DA)[14]等。有監(jiān)督的分析方法克服無監(jiān)督分析方法的弱點(diǎn),可對微生物數(shù)據(jù)進(jìn)行分組、分類,結(jié)果直觀,目標(biāo)性強(qiáng),采用VIP(Variable important)≥1.00作為臨界值。目前,有監(jiān)督的分析方法僅有最小二乘法(PLS)[8]用于微生物多樣性的研究。
為更好地解釋不同環(huán)境對土壤微生物的碳源代謝及物種多樣性影響,研究通過比較PCA、PLS-DA、PLS-EDA及PLS、OPLS分析法,來實(shí)現(xiàn)微生物在不同環(huán)境中差異及差異代謝碳源的鑒定及物種的鑒定。
于2011年,分別在昭通靖安及魯?shù)椤⒗ッ鲗さ槿∮衩着c馬鈴薯間作(種植模式2∶2)收獲時(shí)期的土壤樣品,每個(gè)點(diǎn)取3~5份。用于Biolog ECO分析的土壤樣品以最快速度置于4℃冰箱保存,用于DGGE分析的土壤樣品用1.5 ml離心管裝好置于-80℃冰箱保存。
采用Biolog ECO(Biolog .Inc.CA)平板作為基質(zhì),平板培養(yǎng)及數(shù)據(jù)讀取參照文獻(xiàn)進(jìn)行[1],獲得的數(shù)據(jù)選擇120 h進(jìn)行多元變量分析。
土壤DNA采用百泰克(E.Z.N.A.?Soil DNA Kit)按照說明書提取。
1.3.1PCR。選取細(xì)菌16SrRNA V6-V9高變區(qū)引物:F-968-GC (5’-CGC CCG GGG CGC GCC CCG GGCGGG GCG GGG GCA CGG GGG GAA CGC GAA GAA CCT TAC-3’)和R-1401(5’-CGG TGT GTA CAA GAC CC-3’),PCR產(chǎn)物的片段為500 bp,PCR方法采用TD-PCR,94℃ 8 min,94℃ 1 min,60℃-50℃ 1 min,72℃ 1 min 10個(gè)循環(huán),94℃ 1 min,50℃ 1 min,72℃ 1 min 25個(gè)循環(huán),72℃ 7 min,4℃保存,反應(yīng)結(jié)束后置于-20℃冰箱儲(chǔ)存?zhèn)溆?。反?yīng)體系:2×Master Mix 25 μL,dd H2O 21.50 μL,BSA 0.5 μL,F(xiàn)-968-GC 1 μL,R-1401 1 μL,模板1 μL,采用1.2%瓊脂糖電泳確認(rèn)PCR產(chǎn)物。
1.3.2DGGE。100 μL PCR產(chǎn)物用Bio-Rad旋蒸儀濃縮5~6倍,The Dcode Universal Mutation Detection Delivery System(Bio-Rad )用于灌制30% ~ 65%梯度膠。具體過程為:各取15 mL30%和65%的變性膠,加340 μL的溴酚藍(lán)染液到65%高濃度膠中,混勻。然后,分別在30%和65%的變性膠加入170 μL過硫酸銨(10%)和17 μL TEMED,快速灌膠,聚合1 h ~ 2 h。將1×TAE在Bio-Rad Dcode Mutant detect system電泳槽中預(yù)熱到60℃,濃縮樣品與等體積的Loading buffer混合后,取20 μL上樣到聚丙烯酰胺變性凝膠6% 梯度為30%~65%膠孔中,150 V,電泳8 h,1/10000 EB染色10 min,1×TAE脫色15 min,紫外光成像系統(tǒng)Gensnap拍照獲取圖譜。
Simca-p 11.5(umertric)用于PLS 及OPLS及潛在標(biāo)記的發(fā)現(xiàn);采用MultiBase進(jìn)行PCA、PLS-DA、PLS-EDA分析。選取Biolog ECO培養(yǎng)120,在590 nm條件下,31種碳源吸光度經(jīng)消除空白后作為分析的原始數(shù)據(jù);采用Quantity one 4.6.2軟件對DGGE圖譜數(shù)據(jù)化,統(tǒng)計(jì)條帶數(shù)、亮度、位置。采用Microsoft office Excel 2010對條帶按位置進(jìn)行對齊處理,采用亮度作為分析的原始數(shù)據(jù)。DGGE和 Biolog ECO數(shù)據(jù)分析過程如下,首先在Microsoft office Excel 2010加載MultiBase 2014的宏,選中要分析的數(shù)據(jù)設(shè)置變量及處理,對數(shù)據(jù)進(jìn)行分類,最后進(jìn)行計(jì)算導(dǎo)出圖形。
圖1為DGGE結(jié)果圖,左邊5條泳道表示昭通魯?shù)?個(gè)取樣點(diǎn);右邊5條泳道表示昭通靖安5個(gè)取樣點(diǎn)。DGGE數(shù)據(jù)分析(圖2-圖4)表明:PCA的PC1為27.1%,有2個(gè)樣品無法區(qū)分;PLS-DA的PC1為33%,有1個(gè)樣品無法區(qū)分;PLS-EDA把昭通的2個(gè)試驗(yàn)點(diǎn)樣品完全分開,PC1為16.8%。Biolog ECO數(shù)據(jù)分析(圖5-圖7)表明:PCA的PC1為35.1%,有6個(gè)樣品無法區(qū)分;PLS-DA的PC1為36.3%,有4個(gè)樣品無法區(qū)分;PLS-EDA把昭通的2個(gè)試驗(yàn)點(diǎn)和尋甸樣品完全分開,PC1為25.5%。
圖1 變性梯度凝膠電泳(DGGE) 圖Fig.1 DGGE profile注:L,J表示昭通魯?shù)楹途赴苍囼?yàn)點(diǎn)。
圖2 變性梯度凝膠電泳(DGGE)數(shù)據(jù)的主成分分析(PCA)Fig.2 PCA analysis of DGGE data 注:a,b表示昭通兩個(gè)不同的試驗(yàn)點(diǎn),圖3、圖4同。
圖3 變性梯度凝膠電泳(DGGE) 數(shù)據(jù)的最小二乘法判別法分析(PLS-DA)Fig.3 PLS-DA analysis of DGGE data
圖4 變性梯度凝膠電泳(DGGE) 數(shù)據(jù)的最小二乘法增強(qiáng)判別法分析(PLS-EDA)Fig.4 PLS-EDA analysis of DGGE data
采用PLS和OPLS篩選VIP≥1.00的條帶和碳源作為潛在生物標(biāo)記,見表1,篩選發(fā)現(xiàn)DGGE PLS 和OPLS篩選差異較大,PLS篩選出19個(gè)帶型作為標(biāo)記,OPLS篩選出11個(gè)帶型作為標(biāo)記;Biolog差異較小,OPLS與PLS相比多2種碳源,應(yīng)綜合考慮PLS和OPLS的篩選結(jié)果。DGGE考慮到后續(xù)克隆條帶進(jìn)行微生物種類鑒定,因此,可選PLS的VIP≥1.00的條帶作為潛在生物標(biāo)記。
表1 DGGE 和Biolog微生物候選標(biāo)記Tab.1 Candidate for microbial makers in DGGE and Biolog
注:1-4、24-26、15、17-18、34-35、48、50-56、59、84、86 表示DGGE圖譜分析結(jié)果;C2、D1、A8、D7、D5、D2、D4、D8、C4、C6、B6、C8、B4、A4表示Biolog ECO碳源種類。
圖5 Biolog ECO數(shù)據(jù)的主成分分析(PCA)Fig.5 PCA analysis of Biolog ECO data注:a、b、c分別表示尋甸及昭通3個(gè)不同的試驗(yàn)點(diǎn),圖6、圖7同。
圖6 Biolog ECO 數(shù)據(jù)的最小二乘法判別法分析(PLS-DA)Fig.6 PLS-DA analysis of Biolog ECO data
圖7 Biolog ECO數(shù)據(jù)的最小二乘法增強(qiáng)判別法分析(PLS-EDA)Fig.7 PLS-EDA analysis of Biolog ECO data
土壤微生物Biolog ECO和DGGE數(shù)據(jù)分析多采用PCA[15-16],該方法區(qū)分不同環(huán)境樣品依賴PCs得分系數(shù),但是樣品離散程度大,無法直觀看出環(huán)境對土壤微生物多樣性的影響,也有研究使用DCCA(Detrended canonical correspondence analysis)及CCA(Canonical correspondence analysis)方法反應(yīng)環(huán)境對土壤微生物多樣性的影響[17-19],但是目前CANCOCO是收費(fèi)軟件,操作復(fù)雜,況且DCCA及CCA方法還有無法克服的問題。也有較少的研究者采用PLS[8],PLS是一種有監(jiān)督的分析方法,對環(huán)境數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸分析,建立可解釋變量的模型,但是需對模型的可靠性進(jìn)行判定,才能確定是否合乎邏輯與事實(shí)。因此,PCA及PLS不能有效的解釋環(huán)境變異與微生物多樣性的關(guān)系[20-21]。
PLS-DA、PLS-EDA在代謝組學(xué)數(shù)據(jù)分析中有強(qiáng)大的優(yōu)勢,尤其是分析環(huán)境條件與代謝物的關(guān)系[13,22-23]。土壤微生物多樣性的數(shù)據(jù)和代謝組數(shù)據(jù)具有相似性,都屬于多元變量。因此,研究認(rèn)為,該方法同樣適用于微生物多樣性與環(huán)境關(guān)系的研究。研究中采用PCA、PLS-DA、PLS-EDA 3種方法對Biolog ECO和DGGE數(shù)據(jù)分析作對比,發(fā)現(xiàn)PLS-EDA能夠?qū)⒉煌h(huán)境的樣品區(qū)分開來,PLS-DA能夠區(qū)分出大多數(shù)樣品,PCA無法區(qū)分不同環(huán)境的樣品。因此,PLS-DA、PLS-EDA可作為分析微生物多樣性數(shù)據(jù)的新方法。
已有的研究認(rèn)為PCA 可從Biolog ECO和DGGE數(shù)據(jù)中能夠確定哪些碳源或哪些條帶對微生物群落結(jié)構(gòu)變化起到主導(dǎo)作用,但是PCA結(jié)果過于籠統(tǒng)和模糊,依賴于碳源和帶型在PCs上的荷載大小,但目前無統(tǒng)一荷載大小臨界點(diǎn)值作為特征碳源或帶型,一些研究中采取荷載篩選與多元方差分析結(jié)合,對特征碳源或帶型進(jìn)行顯著性檢測[15-16],此方法比較繁瑣,因此,很難篩選出有價(jià)值的碳源和物種。研究采用PLS 和 OPLS兩種方法篩選微生物標(biāo)記,參照代謝組學(xué)特異物篩選方法,規(guī)定VIP≥1.00的碳源和物種作為環(huán)境潛在代謝和物種標(biāo)記[24]。篩選結(jié)果表明:OPLS及PLS都可選出一批在不同環(huán)境中的土壤微生物潛在代謝和物種標(biāo)記,能為進(jìn)一步分析微生物的生態(tài)功能提供有價(jià)值的信息。此方法為研究不同環(huán)境下土壤微生物多樣性的特征標(biāo)記物進(jìn)行規(guī)范化鑒定。
近年來,多元變量分析廣泛使用于生物統(tǒng)計(jì)中,大量分析軟件的出現(xiàn),不僅提高了數(shù)據(jù)分析效率,而且結(jié)果更直觀易懂[24]。在復(fù)雜樣本及復(fù)雜環(huán)境數(shù)據(jù)分析中,多元變量分析為挖掘重要信息提供無以倫比的優(yōu)勢。PLS-EDA、OPLS、PLS作為近年來發(fā)展出的新方法,同樣可作為土壤微生物多樣性數(shù)據(jù)分析最有效、最重要的方法。
參考文獻(xiàn):
[1] Choi K,Dobbs F C.Comparison of two kinds of Biolog microplates (GN and ECO) in their ability to distinguish among aquatic microbial communities[J].Journal of Microbiological Methods,1999,36(3): 203-213.
[2] Muyzer G,Smalla K.Application of denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and temperature gradient gel electrophoresis (TGGE) in microbial ecology[J].Antonie van Leeuwenhoek,1998,73(1): 127-141.
[3] Muyzer G,Brinkhoff T,Nübel U,et al.Denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) in microbial ecology[M].In: Akkermans ADL,van Elsas J D,de Bruijn F J,eds.Molecular Microbial Ecology Manual.Dordrecht:Kluwer Academic Publishers,1997.
[4] Green C T,Scow K M.Analysis of phospholipid fatty acids (PLFA) to characterize microbial communities in aquifers[J].Hydrogeology Journal,2000,8(1): 126-141.
[5] Rondon M R,August P R,Bettermann A D,et al.Cloning the soil metagenome: a strategy for accessing the genetic and functional diversity of uncultured microorganisms[J].Applied and environmental microbiology,2000,66(6): 2541-2547.
[6] Borneman J,Skroch P W,O'Sullivan K M,et al.Molecular microbial diversity of an agricultural soil in Wisconsin[J].Applied and Environmental Microbiology,1996,62(6): 1935-1943.
[7] LIU B R,JI G M,Chen J,et al.A review of methods for studying microbial diversity in soils[J].Pedosphere,2006,16(1): 18-24.
[8] Frosteg?rd ?,B??th E,Tunlio A,et al.Shifts in the structure of soil microbial communities in limed forests as revealed by phospholipid fatty acid analysis[J].Soil Biology and Biochemistry,1993,25(6): 723-730.
[9] Booth S C,Workentine M L,Wen J,et al.Differences in metabolism between the biofilm and planktonic response to metal stress[J].Journal of proteome research,2011,10(7): 3190-3199.
[10] Verron T,Sabatier R,Joffre R.Some theoretical properties of the O‐PLS method[J].Journal of chemometrics,2004,18(2):62-68.
[11] Stenlund H,Gorzsás A,Persson P,et al.Orthogonal projections to latent structures discriminant analysis modeling on in situ FT-IR spectral imaging of liver tissue for identifying sources of variability[J].Analytical chemistry,2008,80(18): 6898-6906.
[12] Chevallier S,Bertrand D,Kohler A,et al.Application of PLS‐DA in multivariate image analysis[J].Journal of Chemometrics,2006,20(5): 221-229.
[13] Qiu Y P,Cai G X,Su M M,et al.Serum metabolite profiling of human colorectal cancer using GC-TOFMS and UPLC-QTOFMS[J].Journal of proteome research,2009,8(10): 4844-4850.
[14] Tugizimana F,Piater L,Dubery I.Plant metabolomics: A new frontier in phytochemical analysis[J].South African Journal of Science,2013,109(5-6): 1-11..
[15] Cavigelli M A,Robertson G P,Klug M J,et al.Fatty acid methyl ester (FAME) profiles as measures of soil microbial community structure[J].Plant and soil,1995,170(1): 99-113.
[16] Kirk J L,Beaudette L A,Hart M,et al.Methods of studying soil microbial diversity[J].Journal of microbiological methods,2004,58(2): 169-188.
[17] 王 強(qiáng),戴九蘭,吳大千,等.微生物生態(tài)研究中基于 BIOLOG 方法的數(shù)據(jù)分析[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2010,30(3): 817-823.
[18] 邢德峰,任南琪.應(yīng)用 DGGE 研究微生物群落時(shí)的常見問題分析[J].微生物學(xué)報(bào),2006,46(2): 331-335.
[19] 辛 亮,武傳東,曲 東.長期施肥對旱地土壤中氨氧化微生物豐度和分布的影響[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2012,21(6): 41-46.
[20] Pietik?inen J,Fritze H.Clear-cutting and prescribed burning in coniferous forest: comparison of effects on soil fungal and total microbial biomass,respiration activity and nitrification[J].Soil Biology and Biochemistry,1995,27(1): 101-109.
[21] Frosteg?rd ?,Tunlid A,B??th E,et al.Phospholipid fatty acid composition,biomass,and activity of microbial communities from two soil types experimentally exposed to different heavy metals[J].Applied and Environmental Microbiology,1993,59(11): 3605-3617.
[22] Weckwerth W.Metabolomics in systems biology[J].Annual review of plant biology,2003,54(1): 669-689.
[23] Bundy J G,Davey M P,Viant M R,et al.Environmental metabolomics: a critical review and future perspectives[J].Metabolomics,2009,5(1): 3-21.
[24] Xia J G,Mandal R,Sinelnikov I V,et al.MetaboAnalyst 2.0—a comprehensive server for metabolomic data analysis[J].Nucleic acids research,2012,40(W1): W127-W133.