張坤,梁秀麗
(中國兵器工業(yè)集團(tuán)第五三研究所,濟(jì)南 250031)
動態(tài)超聲輔助萃取與HPLC聯(lián)用測定淫羊藿中黃酮類化合物
張坤,梁秀麗
(中國兵器工業(yè)集團(tuán)第五三研究所,濟(jì)南 250031)
建立了動態(tài)超聲輔助萃取與高效液相色譜在線聯(lián)用系統(tǒng),用于測量淫羊藿中黃酮類化合物。萃取過程在一個(gè)循環(huán)體系中完成,萃取完成后,通過采樣環(huán)采集20 μL萃取液,萃取液被流動相載入色譜系統(tǒng)進(jìn)行分離檢測。4種黃酮類化合物用HPLC-MS區(qū)分,通過比較色譜峰面積選擇優(yōu)化萃取條件。選擇50℃的水浴溫度,50%的乙醇作為萃取劑,萃取劑流速為1.5 mL/min,萃取時(shí)間為8 min,樣品量為15 mg。用該法測量淫羊藿樣品中4種黃酮類化合物,日內(nèi)、日間精密度分別為1.05%~2.05%,0.30%~3.63%(n=6)。淫羊藿中的主要化合物淫羊藿苷的加標(biāo)回收率為95.2%。該方法可用于測量淫羊藿中的黃酮類化合物。
在線動態(tài)超聲輔助萃取;高效液相色譜;淫羊藿;黃酮
淫羊藿( Epimedium Kor eamum Nakai)別名仙靈脾,為小檗科淫羊藿屬(family berberidaceae)植物[1],是中國傳統(tǒng)的益補(bǔ)中藥,性溫,味甘辛,歸肝、腎經(jīng),臨床上常用于陽痿遺精,筋骨酸軟,風(fēng)濕痹痛,麻木拘攣以及慢性氣管炎、神經(jīng)衰弱和心腦血管疾病等癥[2-3]?,F(xiàn)代研究表明其有效成分主要為淫羊藿苷、總黃酮及多糖。文獻(xiàn)報(bào)道淫羊藿總黃酮、淫羊藿苷的萃取工藝有回流法[4-7]、索氏提取法[8],這兩種方法所需樣品及萃取溶劑量較大,且需要較長的萃取時(shí)間。目前,一些新的方法被引用到淫羊藿的萃取中。Liu[9]等用高壓密閉微波法、常壓微波法、超聲法、回流法萃取淫羊藿中黃酮類化合物,其中高壓密閉法得到的萃取率最高,但是有些化合物在高溫、高壓條件下易降解。姜寧[10]等采用加速溶劑萃取系統(tǒng)進(jìn)行淫羊藿中淫羊藿苷的快速萃取及測定,萃取時(shí)間為20 min,萃取率為93.15%。
動態(tài)萃取是最近才提出的一種嶄新的方法,這種技術(shù)是基于流動的萃取溶液連續(xù)地通過固體基質(zhì)將目標(biāo)物質(zhì)萃取出來,動態(tài)萃取最早應(yīng)用于沉積物和土壤樣品中重金屬的萃取。近年來,動態(tài)萃取技術(shù)正逐步引起人們的重視。陳立鋼[11]等采用動態(tài)微波輔助萃取的方法萃取淫羊藿中的黃酮類化合物,其產(chǎn)率高于索氏萃取和回流萃取。
筆者采用動態(tài)超聲輔助萃取與高效液相色譜聯(lián)用的方法測定淫羊藿中4種黃酮類化合物,具有分析時(shí)間短、樣品用量小等優(yōu)點(diǎn),而且在線過濾及在線測量系統(tǒng)的設(shè)計(jì)減少了萃取劑的用量,降低了萃取劑對環(huán)境的危害,也降低了實(shí)驗(yàn)人員與萃取劑接觸的可能性。該方法可用于測定淫羊藿中的淫羊藿苷及朝藿苷A,B,C的含量。
1.1 主要儀器與試劑
高效液相色譜儀:Ailgent 1100型,美國Agilent公司;
萃取池:玻璃制品,為自行設(shè)計(jì)加工,長度為60.0 mm,內(nèi)徑為3.0 mm;
超聲波清洗器:KQ-800KDE型,功率為100 W,昆山超聲儀器有限公司;
蠕動泵:FI-2100型,北京海光儀器公司;
紫外分光光度計(jì):GBC Cintra 10e型,澳大利亞GBC科學(xué)儀器公司;
質(zhì)譜儀:ABI Q-Trap型,電噴霧離子源,Analyst 1.4 數(shù)據(jù)記錄系統(tǒng),美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司;
淫羊藿苷標(biāo)準(zhǔn)品:中國藥品生物制品檢驗(yàn)所;
淫羊藿苷標(biāo)準(zhǔn)儲備液:準(zhǔn)確稱取淫羊藿苷標(biāo)準(zhǔn)品4.0 mg,用甲醇定容于10 mL容量瓶中,得到0.4 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,然后用甲醇稀釋至不同濃度,保存于冰箱中;
淫羊藿樣品:市售,用粉碎機(jī)粉碎,過0.38 mm(40目)篩后備用。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 動態(tài)超聲輔助萃?。―UAE)
自行組裝動態(tài)超聲輔助萃取裝置。準(zhǔn)確稱取一定量的淫羊藿樣品置于玻璃制成的萃取池中,樣品兩端用玻璃棉堵住,然后用塞子密封,將萃取池固定在超聲清洗器中,量取5 mL乙醇溶液于儲存瓶中,開啟蠕動泵,儲存瓶中的萃取液被蠕動泵泵出,流經(jīng)萃取池,打開超聲清洗器,萃取劑在管路中循環(huán)流動。與此同時(shí),開啟液相色譜的高壓泵,建立色譜基線。萃取經(jīng)過一定的循環(huán)次數(shù)后,轉(zhuǎn)換六通閥,萃取劑通過在線過濾被蠕動泵泵到液相色譜20 μL的取樣環(huán)中,之后轉(zhuǎn)換進(jìn)樣閥,取樣環(huán)中的萃取液被流動相載入色譜柱進(jìn)行分離。
1.2.2 靜態(tài)超聲輔助萃?。║AE)
準(zhǔn)確稱取0.5 g淫羊藿樣品于錐形瓶中,加入50 mL 50%乙醇溶液,標(biāo)記刻度,將錐形瓶放在超聲清洗器中超聲萃取1 h,然后向錐形瓶中加50%乙醇溶液至標(biāo)線,過濾萃取液,取3 mL溶液,用50%乙醇定容于10 mL容量瓶中,過0.45 μm濾膜,進(jìn)樣量20 μL,用HPLC分析。
1.3 儀器工作條件
1.3.1 色譜條件
1.3.2 質(zhì)譜條件
氣簾氣和霧化氣:均為N2,壓力為0.21 MPa(30 psi);噴霧電壓:5 000 V;解簇電壓:120 V;入口電壓:10 V;碰撞能量:10 eV。
1.4 總黃酮量的測定
用紫外可見分光光度計(jì)測定淫羊藿中總黃酮的含量,檢測波長為270 nm,以不同濃度的淫羊藿甘標(biāo)準(zhǔn)品溶液對應(yīng)的紫外吸收峰峰面積作標(biāo)準(zhǔn)曲線,線性范圍為1.24~9.92 μg/mL,線性回歸方程為Y=0.055 66X-0.013 7,相關(guān)系數(shù)r=0.999 3。每次實(shí)驗(yàn)測定均取1 mL 萃取液,用萃取溶劑稀釋至10 mL,得到適當(dāng)?shù)淖贤馕舛取?/p>
2.1 HPLC/MS分離鑒別4種黃酮類化合物
淫羊藿萃取物的色譜圖如圖1所示,對應(yīng)的質(zhì)譜數(shù)據(jù)列于表1。根據(jù)得到的質(zhì)譜數(shù)據(jù)和相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道[9,11]可判定,液相色譜圖上的4個(gè)色譜峰對應(yīng)的化合物分別是朝藿苷A、朝藿苷B、朝藿苷C、淫羊藿苷。
圖1 淫羊藿萃取物的色譜圖
2.2 萃取條件的優(yōu)化
基于現(xiàn)場實(shí)際條件,山路崎嶇不平,路段狹窄,不適合板狀天線的推進(jìn),因此選擇適應(yīng)山坡路段的蛇形軟質(zhì)天線,即超強(qiáng)地面耦合天線(RTA50 MHz)執(zhí)行本次勘探任務(wù)。雷達(dá)測線按垂直于坡體等高線方向單向布置,測線方向由坡腳向坡頂行進(jìn),測線覆蓋整個(gè)滑坡區(qū)域,在測線的起始處沿測線方向均向外延伸5~10 m,以便進(jìn)行比對分析。在滑坡后壁處,測線向后壁上方繼續(xù)行進(jìn)5~10 m,以便對滑坡整體機(jī)制做出合理推測和解釋。本文在所有探測結(jié)果中,主要選擇一條有代表性的探測剖面進(jìn)行分析解譯。測線布置圖如上圖2所示。
2.2.1 萃取劑的選擇
將乙醇配成不同濃度的溶液作為萃取劑,體積分?jǐn)?shù)范圍為30%~70%,梯度為10%。稱取10 mg淫羊藿樣品,設(shè)定超聲清洗器水浴溫度為30℃,萃取劑流量為1.0 mL/min,萃取時(shí)間為10 min。在低濃度時(shí),乙醇濃度與4種黃酮類化合物的萃取率成正比;乙醇濃度越高,萃取率越大;當(dāng)乙醇濃度達(dá)到50%時(shí),萃取率最大,隨后萃取率下降。實(shí)驗(yàn)選擇50%的乙醇作為萃取劑。
表1 淫羊藿萃取物中4種黃酮類化合物的質(zhì)譜碎片
2.2.2 超聲萃取水浴溫度的影響
稱取10 mg淫羊藿樣品,改變水浴溫度,溫度范圍為20~80℃,溫度梯度為10℃,以50%的乙醇作為萃取劑,萃取劑流量為1.0 mL/min ,萃取時(shí)間為10 min。水浴溫度對4種黃酮類化合物的萃取率影響不大,當(dāng)水浴溫度高于60℃時(shí),朝藿苷C 的萃取率略有下降。實(shí)驗(yàn)選擇50℃的水浴溫度。
2.2.3 萃取劑流量的選擇
稱取10 mg淫羊藿樣品,以50%的乙醇作為萃取劑,在超聲萃取的水浴溫度為50℃,萃取時(shí)間為10 min的條件下進(jìn)行萃取,考察萃取劑流速對4種黃酮類化合物色譜峰面積的影響,流量范圍為1.0~3.0 mL/min,梯度為0.5 mL/min,萃取劑流速對4種黃酮類化合物的產(chǎn)率影響不大。實(shí)驗(yàn)選擇萃取劑流量為1.5 mL/min。
2.2.4 萃取時(shí)間的選擇
稱取10 mg淫羊藿樣品,以50%乙醇作萃取劑,超聲水浴溫度為50℃,萃取劑流量為1.5 mL/min。改變萃取時(shí)間,考察萃取時(shí)間對萃取率的影響,萃取時(shí)間由1~12 min,每隔1 min試驗(yàn)一次。結(jié)果表明待測物的萃取率隨著超聲萃取時(shí)間的增大而增大,當(dāng)萃取時(shí)間達(dá)6 min時(shí),萃取率不再發(fā)生明顯變化。實(shí)驗(yàn)選擇樣品萃取時(shí)間為8 min,以保證待測物的完全萃取。
2.2.5 樣品量的影響
改變樣品量,以50%的乙醇作為萃取劑,超聲水浴溫度為50℃,萃取劑流量為1.5 mL/min,萃取時(shí)間8 min,測得4種黃酮類化合物的峰面積列于表2。由表2可知,在動態(tài)超聲輔助萃取中,樣品量的大小對待測物萃取率的影響較小。實(shí)驗(yàn)選擇樣品量為15 mg。
表2 不同樣品量4種黃酮類化合物的色譜峰面積
2.3 標(biāo)準(zhǔn)工作曲線
取不同濃度的淫羊藿苷標(biāo)準(zhǔn)品溶液,依次進(jìn)樣,在選定的HPLC條件下,以溶液的質(zhì)量濃度c(mg/mL)為橫坐標(biāo)、峰面積A為縱坐標(biāo)作線性回歸,標(biāo)準(zhǔn)品溶液質(zhì)量濃度在1.6~20 μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,線性回歸方程為A=31.3c-15.19,相關(guān)系數(shù)r=0.999 1。
測定淫羊藿中總黃酮的含量,以不同濃度的淫羊藿苷標(biāo)準(zhǔn)品溶液對應(yīng)的紫外吸收峰峰面積作標(biāo)準(zhǔn)曲線,線性范圍為1.24~9.92 μg/mL,線性回歸方程為A=0.055 66c-0.013 68,相關(guān)系數(shù)r=0.999 3。表明在線性范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.4 精密度和準(zhǔn)確度
在1 d內(nèi)連續(xù)分析6個(gè)淫羊藿樣品,朝藿苷A、朝藿苷B、朝藿苷C、淫羊藿苷色譜峰面積測定數(shù)據(jù)見表3。由表3可知,朝藿苷A、朝藿苷B、朝藿苷C、淫羊藿苷色譜峰面積的日內(nèi)精密度分別為1.05%,1.75%,2.05%,1.85%。每天分析一個(gè)樣品,連續(xù)分析6 d,朝藿苷A、朝藿苷B、朝藿苷C、淫羊藿苷色譜峰面積測定數(shù)據(jù)見表4。由表4可知,朝藿苷A、朝藿苷B、朝藿苷C、淫羊藿苷日間精密度分別為0.97%,0.30%,2.78%,3.63%。
表3 日內(nèi)精密度試驗(yàn)結(jié)果
表4 日間精密度試驗(yàn)結(jié)果
精密稱取淫羊藿樣品15 mg 3份,分別加入1.0mL質(zhì)量濃度為20 μg/mL淫羊藿苷標(biāo)準(zhǔn)品儲備液,室溫下放置24 h后,按1.2實(shí)驗(yàn)方法萃取樣品,淫羊藿苷回收試驗(yàn)結(jié)果列于表5。由表5可知,淫羊藿苷加標(biāo)回收率為95.2%。
表5 淫羊藿苷加標(biāo)回收試驗(yàn)結(jié)果
2.5 比對試驗(yàn)
取不同產(chǎn)地的淫羊藿樣品(樣品1、樣品2、樣品3的產(chǎn)地分別為吉林、安徽、河北),分別用動態(tài)超聲輔助萃?。―UAE)法和藥典方法(UAE)比較,結(jié)果見表6。由表6可知,動態(tài)超聲輔助萃取法和藥典方法萃取率相當(dāng),但動態(tài)超聲輔助萃取法耗時(shí)短,樣品和萃取劑用量少,操作簡單。
表6 比對試驗(yàn)色譜峰面積 pA·s
2.6 淫羊藿苷和總黃酮的含量
對淫羊藿質(zhì)量的評價(jià)大多以淫羊藿苷或總黃酮含量為指標(biāo),分別用動態(tài)超聲輔助萃取法和藥典方法對不同產(chǎn)地的淫羊藿樣品進(jìn)行萃取處理,然后測定樣品中淫羊藿苷和總黃酮的含量,測定結(jié)果見表7。
由表7數(shù)據(jù)可知,不同產(chǎn)地的淫羊藿中淫羊藿苷的含量明顯不同,總黃酮含量則相差不多。
表7 不同產(chǎn)地淫羊藿中淫羊藿苷和總黃酮的含量 mg/g
用動態(tài)超聲輔助萃取法萃取淫羊藿中朝霍苷A、朝霍苷B、朝霍苷C和淫羊藿苷,與藥典中規(guī)定的方法得到了相似的萃取率,而本方法使用的萃取劑用量少,耗時(shí)短。該法與高效液相色譜在線聯(lián)用,實(shí)現(xiàn)了對淫羊藿的在線萃取、分離和檢測,減少了樣品損失,簡化了整個(gè)分析過程。
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內(nèi)蒙廢止18項(xiàng)食品安全地方標(biāo)準(zhǔn)
4月10日,內(nèi)蒙古自治區(qū)衛(wèi)生計(jì)生委發(fā)布2014年第6號公告稱,決定對18個(gè)食品安全地方標(biāo)準(zhǔn)予以廢止,2個(gè)食品地方標(biāo)準(zhǔn)保留并進(jìn)行修訂。
18個(gè)廢止的食品安全地方標(biāo)準(zhǔn)名稱是:鮮綠蘆筍,牛奶蒸餾酒,沙棘籽油中亞油酸與亞麻酸的測定(氣相色譜法),內(nèi)蒙古優(yōu)質(zhì)無公害大米,發(fā)酵性奶酒,食用沙棘籽油,食用沙棘果汁油,蒸制類面食品,非發(fā)酵豆制品,蕎麥米(仁)檢驗(yàn)規(guī)程,混糖月餅,乳及乳制品中土霉素、四環(huán)素、金霉素、強(qiáng)力霉素殘留量的測定(高效液相色譜法),乳及乳制品中黃曲霉毒素M1含量的測定(高效液相色譜法),脫水胡蘿卜片(粒)檢驗(yàn)規(guī)程,鹽漬寶塔菜檢驗(yàn)規(guī)程,糜、黃(大黃米)米,線麻籽油、蓖麻籽油,奶片。2個(gè)保留修訂的食品地方標(biāo)準(zhǔn)名稱是炒米、風(fēng)干牛肉。
(儀器信息網(wǎng))
Determination of Flavonoids in Epimedium Koreamum Nakai by Dynamic Ultrasonic-assisted Extraction System Coupled with HPLC
Zhang Kun, Liang Xiuli
(CNGC Institue 53, Jinan 250031, China)
The dynamic ultrasonic-assisted extraction (DUAE) system coupled with HPLC was used for determination of four flavonoids in epimedium koreamum nakai. The extraction was performed in a recirculating system. When the extraction was completed, the extract (20 μL) was driven to the analytical column by mobile phase and measured by a UV detector. The four flavonoids were identified by HPLC-MS. The extraction parameters of the procedure were optimized by comparison with the peak areas of HPLC. The extraction temperature was 50℃in water bath, the extract solvent was 50% ethanol, the extractant flow rate was 1.5 mL/min, the extraction time was 8 min, and the quantity of the sample was 15 mg. Four flavonoids were measured by the method, the RSD of intra-day and inter-day were 1.05%-2.05% and 0.30%-3.63% (n=6), respectively. The method was applied to determine icariin which was major component in the herb, and the added recovery was 95.2%. The method was successfully applied to the determination of flavonoids in epimedium koreamum nakai.
on-line dynamic ultrasonic-assisted extraction; HPLC; epimedium koreamum naka; flavonoids
O657.7
A
1008-6145(2014)03-0053-04
10.3969/j.issn.1008-6145.2014.03.015
聯(lián)系人:張坤;E-mail: zhangkun8185@163.com
2014-04-10