王洪志,喬曉莉,劉 勇,李婉晴
(天津市南開醫(yī)院,天津300100)
實(shí)驗(yàn)研究
兩種溶劑提取大黃蒽醌類成分的變化*
王洪志,喬曉莉,劉 勇,李婉晴
(天津市南開醫(yī)院,天津300100)
目的:考查以熱水(100℃,即水煎煮后下)和乙醇為提取溶劑對(duì)大黃蒽醌類成分提取的影響。方法:采用高效液相色譜法,以蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚、大黃素甲醚5種成分含量之和為指標(biāo),考查不同時(shí)間熱水和不同濃度乙醇煎煮大黃蒽醌類成分的變化。結(jié)果:以熱水提取時(shí),煎煮25 min大黃游離型蒽醌和總蒽醌含量最高;乙醇提取時(shí),50%乙醇煎煮35 min總蒽醌和結(jié)合型蒽醌含量最高。結(jié)論:大黃熱水煎煮以25 min為宜,而醇提以50%乙醇提取35 min為宜,總蒽醌轉(zhuǎn)移率分別達(dá)到38%和48%。
大黃,蒽醌類成分,水提,醇提
大黃為蓼科植物掌葉大黃(Rheum palmatum L)、唐古特大黃(Rheum tanguticum Maxim ex Balf)或藥用大黃(Rheum officinale Baill)的干燥根及根莖[1],主要有效成分為幾種葡萄糖苷和苷元,含量約3%~5%,苷元主要是蒽醌類衍生物,包括大黃酚(chrysophanol或chrysophanic acid,C15H10O4)、大黃素(emodin或rheum emodin,C15H10O5)、蘆薈大黃素(Aloe-emodin,C15H10O5)、大黃酸(Rhein,C15H8O6)和大黃素甲醚(physcion或parietin、rheochrysidin,C16H12O5)[2,3]。其中游離蒽醌難溶或不溶于水,可溶于乙醇、氯仿等有機(jī)溶劑,而結(jié)合蒽醌及苷親水性強(qiáng),易溶于水、乙醇,難溶于乙醚、氯仿及其他有機(jī)溶劑,文獻(xiàn)報(bào)道常采用水或乙醇為溶劑對(duì)大黃藥材進(jìn)行提?。?,5]。由于大黃致瀉的主要成分為結(jié)合型蒽醌類化合物,游離型蒽醌瀉下作用較弱,臨床作為瀉下藥時(shí)須注明后下(在群藥煎好以前5~15 min加入煎煮)。本實(shí)驗(yàn)以熱水(100℃)煎煮模仿水煎煮后下,以熱水和乙醇為溶劑,考查兩種溶劑對(duì)大黃蒽醌類成分提取的影響,以期闡明臨床煎煮大黃的最佳時(shí)間以及大成產(chǎn)過程中大黃的最佳提取時(shí)間,從而對(duì)大黃的應(yīng)用和生產(chǎn)提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 儀器LC-10A型高效液相色譜儀,島津SPD-10A紫外檢測(cè)器,AUTO SCIENCE AT-330柱溫箱; KQ 3200超聲波清洗器(昆山市超聲波儀器廠);RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠)。
1.2 試藥大黃(天津市中藥飲片廠有限公司,產(chǎn)地:甘肅,批號(hào)1206038)。對(duì)照品購自中國(guó)藥品生物制品檢定所,蘆薈大黃素(批號(hào)110795-200605)、大黃酸(批號(hào)0757-200206)、大黃素(批號(hào)110756-200110)、大黃酚(批號(hào)110796-201017)、大黃素甲醚(批號(hào)110758-200610)。鹽酸(分析純,天津化學(xué)試劑三廠)、磷酸(分析純,天津江天化學(xué)技術(shù)有限公司)、三氯甲烷(分析純,天津江天化學(xué)技術(shù)有限公司)、甲醇(色譜純,天津基準(zhǔn)化學(xué)試劑有限公司),水為娃哈哈飲用純凈水。
2.1 色譜條件色譜柱:AGT C18色譜柱(4.6 mm× 250 mm,5 μm);流動(dòng)相:甲醇-0.1%磷酸(85∶15);檢測(cè)波長(zhǎng):254 nm;流速:1.0 ml/min;柱溫:40℃。
2.2 樣品處理
2.2.1 加熱水不同煎煮時(shí)間樣品的制備分別取大黃飲片5份,每份5 g,置于500 ml燒瓶中,加熱水(水煮沸至100℃)加熱回流3次,每次100 ml,每份3煎煎煮時(shí)間均相同,分別為15、20、25、30和35 min,合并3煎煎液,減壓濃縮至50 ml,即得。
2.2.2 不同濃度乙醇煎煮樣品的制備分別取大黃飲片4份,每份5 g,置于500 ml燒瓶中,加不同濃度乙醇(室溫)加熱回流3次,每次100 ml,每煎25 min,4份乙醇濃度分別為30%、50%、70%和95%,合并3煎煎液,減壓濃縮至50 ml,即得。
2.2.3 50%乙醇不同煎煮時(shí)間樣品的制備分別取大黃飲片5份,每份5 g,置于500 ml燒瓶中,加50%乙醇(室溫)加熱回流3次,每次100 ml,每份3煎煎煮時(shí)間均相同,分別為15、20、25、30和35 min,合并3煎煎液,減壓濃縮至50 ml,即得。
2.3 溶液制備
2.3.1 對(duì)照品溶液的制備精密稱取蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚和大黃素甲醚對(duì)照品,加甲醇制備混合對(duì)照品溶液(每1 ml中含蘆薈大黃素14 μg、大黃酸12 μg、大黃素10 μg、大黃酚11 μg、大黃素甲醚20 μg)。
2.3.2 游離蒽醌樣品溶液的制備精密量取大黃煎煮樣品2 ml于100 ml圓底燒瓶中,減壓濃縮至干,加甲醇25 ml,加熱回流1 h,放冷,濾過,用少量甲醇洗滌容器,收集濾液,減壓濃縮并定容至10 ml,即得。
2.3.3 總蒽醌樣品溶液的制備精密量取大黃煎煮樣品2 ml于100 ml圓底燒瓶中,減壓濃縮至干,加甲醇25 ml,加熱回流1 h,放冷,濾過,用甲醇適量洗滌容器,收集濾液,減壓濃縮至干,加8%鹽酸10 ml,超聲處理2 min,再加三氯甲烷10 ml,加熱回流1 h,放冷,置分液漏斗中,用少量三氯甲烷洗滌容器,并入分液漏斗中,分取三氯甲烷層,酸液再用三氯甲烷提取3次,每次10 ml,合并三氯甲烷液,減壓回收溶劑至干,殘?jiān)蛹状既芙獠⒍ㄈ葜?0 ml,即得。
結(jié)合型蒽醌含量=總蒽醌含量-游離型蒽醌含量,色譜圖見圖1。
2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備精密稱取對(duì)照品適量,加甲醇溶解并定容,得到蘆薈大黃素濃度為3.5、7、14、28和56 μg/ml,大黃酸濃度為2、4、12、24和48 μg/ml,大黃素濃度為2、5、10、20和40 μg/ml,大黃酚濃度為1.1、3.3、11、22和44 μg/ml,大黃素甲醚濃度為2、5、20、40和80 μg/ml的對(duì)照品溶液的系列溶液。將上述溶液按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)行測(cè)定,以對(duì)照品峰面積值(Y)對(duì)其相應(yīng)濃度(X)做線性回歸,得回歸方程見表1,結(jié)果表明蘆薈大黃素在3.5~56 μg/ml范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,大黃酸在2~48 μg/ml范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,大黃素在2~40 μg/ml范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,大黃酚在1.1~55 μg/ml范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,大黃素甲醚在2~80 μg/ml范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
圖1 對(duì)照品(A)游離蒽醌樣品(B)總蒽醌樣品(C)HPLC色譜圖
表1 各成分回歸方程
2.5 精密度試驗(yàn)取混合對(duì)照品溶液(蘆薈大黃素14 μg/ml、大黃酸12 μg/ml、大黃素10 μg/ml、大黃酚11 μg/ml、大黃素甲醚20 μg/ml),按“2.1”項(xiàng)下色譜條件連續(xù)進(jìn)樣5次,測(cè)定峰面積值,得蘆薈大黃素峰面積RSD為1.33%,大黃酸峰面積RSD為1.55%,大黃素峰面積RSD為1.25%,大黃酚峰面積RSD為1.38%,大黃素甲醚峰面積RSD為1.06%。
2.6 穩(wěn)定性試驗(yàn)取同一供試品溶液,分別于0、2、4、6和8 h按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)行測(cè)定,得蘆薈大黃素峰面積RSD為1.03%,大黃酸峰面積RSD為1.34%,大黃素峰面積RSD為1.14%,大黃酚峰面積RSD為1.08%,大黃素甲醚峰面積RSD為1.27%,表明樣品在8 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。
2.7 回收率試驗(yàn)取同一份樣品,精密量取1 ml,共6份,精密稱定,置圓底燒瓶中,加入一定量的對(duì)照品,按“2.3.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)行測(cè)定,計(jì)算回收率。結(jié)果蘆薈大黃素平均回收率為99.49%,RSD為0.32%;大黃酸平均回收率為99.32%,RSD為0.56%;大黃素平均回收率為99.31%,RSD為0.44%;大黃酚平均回收率為99.59%,RSD為0.22%;大黃素甲醚平均回收率為99.27%,RSD為0.16%。結(jié)果見表2。
2.8 樣品的測(cè)定按“2.2”項(xiàng)下樣品處理方法制備樣品,按“2.3.2”和“2.3.3”項(xiàng)下溶液制備方法制備樣品溶液,“2.1”項(xiàng)下色譜條件測(cè)定含量,結(jié)果(以蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚和大黃素甲醚之和計(jì))見表3-5和圖2。
2.9 總蒽醌的含量及轉(zhuǎn)移率根據(jù)“2.8”項(xiàng)下樣品測(cè)定結(jié)果,取大黃藥材,按“2.2”項(xiàng)下樣品處理方法制備大黃熱水提取樣品(3煎,每煎25 min)以及大黃醇提取樣品(50%乙醇3煎,每煎35 min)。另取大黃粉末(過四號(hào)篩)0.15 g,按“2.3.3”項(xiàng)下方法制備樣品溶液,測(cè)定以上三種樣品中總蒽醌含量,并計(jì)算轉(zhuǎn)移率,結(jié)果見表6。
表2 回收率試驗(yàn)(n=6)
表3 加熱水不同煎煮時(shí)間樣品中蒽醌類成分的含量(n=3)
表4 不同濃度乙醇煎煮樣品中蒽醌類成分的含量(n=3)
表5 50%乙醇不同煎煮時(shí)間樣品中蒽醌類成分的含量(n=3)
表6 樣品中總蒽醌的含量及轉(zhuǎn)移率(n=2)
圖2 兩種溶劑提取大黃蒽醌類成分的變化
熱水(100℃)提取時(shí),煎煮35 min結(jié)合蒽醌含量(0.449 2%)稍高于煎煮25 min(0.429 3%),而煎煮25 min大黃總蒽醌和游離蒽醌含量最高(總蒽醌0.787 0%,游離蒽醌0.361 2%),因此將25 min作為煎煮時(shí)間考查不同濃度乙醇提取時(shí)大黃蒽醌類成分的含量變化,結(jié)果提取時(shí)間相同(25 min)條件下,50%乙醇提取游離蒽醌(0.479 8%)低于70%乙醇提取(0.512 8%),總蒽醌和結(jié)合蒽醌含量最高(總蒽醌0.873 9%,結(jié)合型蒽醌0.394 1%),繼續(xù)考查相同濃度乙醇(50%)不同提取時(shí)間大黃蒽醌類成分的含量變化,結(jié)果煎煮35 min游離蒽醌(0.536 1%)低于煎煮30 min(0.611 1%),但總蒽醌和結(jié)合蒽醌在煎煮30 min時(shí)含量最高(總蒽醌0.978 1%,結(jié)合型蒽醌0.442 1%)。綜上,大黃水煎煮后下以25 min為宜,總蒽醌轉(zhuǎn)移率為38.06%;而醇提以50%乙醇提取35 min為宜,總蒽醌轉(zhuǎn)移率為48.37%。
1中國(guó)藥典[S].2010年版第一增補(bǔ)本.2010:77
2南京中醫(yī)藥大學(xué).中藥大辭典[M].上海:上海科學(xué)技術(shù)出版社,2003:102
3徐翔,酈柏平,張慧芬.大黃的研究進(jìn)展[J].上海中醫(yī)藥雜志,2003,37(4):56
4張永紅.影響大黃提取液中蒽醌含量的條件探討[J].蘭州醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),1996,22(2):9
5魏鳳玲,齊敏超,鐘加勝.大黃蒽醌類成分提取工藝優(yōu)選[J].中國(guó)中藥雜志,1998,23(10):609
Study on effect of water and alcohol extracting process to anthraquinone content in Rhubarb
Wang Hongzhi,Qiao Xiaoli,Liu Yong,Li Wanqing
(Tianjin Nankai Hospital,Tianjin 300100)
Objective:To study the effect of water(100℃)and alcohol extracting process to anthraquinone content in Rhubarb.Methods:HPLC method was used to determine the contents of Aloe-emodin,Rhein,Rheum emodin,Chrysophanol and Physcion,choosing hot water and different concentration of alcohol as the solvent,to investigate the content of total,conjugated,and nomadic anthraquinone under different extracting time.Results:The content of total and nomadic anthraquinone were highest when extracted 25 minutes by hot water,while ethanol was used as solvent,50%of ethanol extracted 35 minutes were the best conditions.Conclusion:25 minutes was the suitable extracting time for decoction of Rhubarb by hot water,and 50%alcohol,extracting 35 minutes were proper ethanol extracting conditions,and the transfer rate of total anthraquinone reached 38%and 48%respectively.
Rhubarb,anthraquinone content,water extracting process,alcohol extracting process
R927.1
A
1006-5687(2014)01-0001-04
2013-08-30