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    融合蛋白CBD-SPA“Z”基因的構(gòu)建、表達(dá)與活性鑒定

    2014-05-04 08:05:44朱文杰
    生物加工過程 2014年3期
    關(guān)鍵詞:條帶結(jié)構(gòu)域纖維素

    朱文杰,馬 軍,張 妍,金 堅(jiān)

    (1.江南大學(xué) 藥學(xué)院 無錫 214122;2.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院教育部工業(yè)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,無錫 214122)

    各種微生物來源的纖維素酶普遍具有類似的 結(jié)構(gòu),其中包括沒有催化功能的纖維素結(jié)合結(jié)構(gòu)域(cellulose binding domain,CBD)[1],其功能在與生物工程技術(shù)相關(guān)的研究中已經(jīng)被廣泛應(yīng)用[2]。金黃色葡萄球菌蛋白A(staphylococcal protein A,SPA)中含有E、D、A、B和C 5個(gè)高度同源的免疫球蛋白G(immunoglobulin G,IgG)結(jié)合結(jié)構(gòu)域,都能獨(dú)立地與IgG的Fc片段結(jié)合,其中B結(jié)構(gòu)域穩(wěn)定性最好,與IgG的結(jié)合能力最強(qiáng)[3-5]。由于只結(jié)合 Fc段,所以不會(huì)影響抗體的免疫學(xué)活性[6],這使得利用 SPA親和層析柱純化IgG成為可能。為了提高 SPA及純化蛋白的穩(wěn)定性,基于B結(jié)構(gòu)域的優(yōu)勢,研究者們對其進(jìn)行改造,使結(jié)構(gòu)域中螺旋之間的角度產(chǎn)生改變[7],降低其與IgG的結(jié)合強(qiáng)度,使洗脫條件變得溫和,最終將其命名為Z結(jié)構(gòu)域[8]。

    長期以來,木質(zhì)生物質(zhì)被公認(rèn)為是1種潛在的具有可持續(xù)來源的生物多糖材料,在過去近1個(gè)世紀(jì)研究中,目標(biāo)明確的是如何在現(xiàn)今的市場中發(fā)揮其成本競爭力[9]。纖維素作為自然界中分布最廣、含量最多的1種多糖,應(yīng)用成本低廉。而隨著研究重心轉(zhuǎn)移的需求,若能把其與CBD之間的關(guān)系與應(yīng)用廣泛的抗體純化分子SPA有機(jī)結(jié)合,則不僅能為研究開發(fā)提供所需材料,同時(shí)在生物工程工業(yè)生產(chǎn)中還能產(chǎn)生巨大的經(jīng)濟(jì)效益[10]。

    由于SPA能與IgG的Fc端特異性結(jié)合,一直以來都被廣泛應(yīng)用于抗體純化工作中,現(xiàn)在應(yīng)用較為廣泛的是把SPA連接到經(jīng)HBr活化的葡聚糖凝膠而制成的層析柱。由于SPA被包裹在基質(zhì)里,活性部位的分布具有不確定性,使得在純化過程中與抗體結(jié)合具有隨機(jī)性,導(dǎo)致SPA的使用效率低。另外葡聚糖等傳統(tǒng)基質(zhì)的抗壓性能相對較差[11],使得上樣流速不能過快,導(dǎo)致純化時(shí)間較長,影響工作效率。此外HBr有劇毒[12],處理不當(dāng)將會(huì)嚴(yán)重影響純化產(chǎn)品的質(zhì)量。針對上述問題,筆者把SPA改造后的Z基因和CBD基因進(jìn)行融合,構(gòu)建了一種新型表達(dá)載體。

    有研究者做過將SPA的5個(gè)結(jié)構(gòu)域與CBD或其他活性結(jié)構(gòu)進(jìn)行融合的工作[13-14],也有將 SPA改造后的Z結(jié)構(gòu)域與其他活性結(jié)構(gòu)進(jìn)行融合的成果[15],但沒有發(fā)現(xiàn)把CBD與Z結(jié)構(gòu)域融合的相關(guān)研究。筆者嘗試將單個(gè)Z結(jié)構(gòu)域與CBD進(jìn)行融合,并在末端新添了1個(gè)半胱氨酸(Cys),建立1種新型SPA改良層析材料,以期為在親和層析方面的應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    帶有CBD基因的質(zhì)粒pET35b(+)和帶有Z基因的質(zhì)粒pEZZ18由藥學(xué)院藥物設(shè)計(jì)與分子藥理研究室保存;E.coli DH5α、E.coli BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞購自TIANGEN公司;1 kb plus DNA Ladder和DL2000 DNA Ladder購自Fermentas公司,標(biāo)準(zhǔn)蛋白Ladder和預(yù)染蛋白Ladder購自Thermo公司;限制性核酸內(nèi)切酶SacⅡ購自Fermentas公司,限制性核酸內(nèi)切酶XhoⅠ購自Thermo公司;實(shí)驗(yàn)所用引物由Sangon公司合成;Taq Plus DNA聚合酶、dNTPs、T4DNA連接酶、硫酸卡那霉素、質(zhì)粒DNA小量抽提試劑盒、DNA膠回收試劑盒和PCR產(chǎn)物純化試劑盒購自Sangon公司;辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記山羊抗兔IgG購自Beyotime公司;微晶纖維素(Type 50)購自Sigma-Aldrich公司。

    1.2 重組表達(dá)載體pET35b(+)-Z-Cys的構(gòu)建

    1.2.1 引物設(shè)計(jì)

    根據(jù)質(zhì)粒pEZZ18上Z基因片段的編碼序列設(shè)計(jì)引物擴(kuò)增序列,引物如下。上游引物UZ:5'-TCCCCGCGGCGGTAGACAACAAATTCAAC-3',下游引物 DZ:5'-CCCTCGAGACATTTCGGCGCCTGAGCATC-3'。根據(jù)質(zhì)粒pET35b(+)的多克隆位點(diǎn),在上游引物中引入SacⅡ酶切位點(diǎn),為保證開放閱讀框(ORF)不變,在SacⅡ酶切位點(diǎn)后添加2個(gè)堿基CG;在下游引物中引入XhoⅠ酶切位點(diǎn),并在XhoⅠ酶切位點(diǎn)后引入Cys反密碼子ACA。

    根據(jù)質(zhì)粒pET35b(+)上CBD基因片段的編碼序列設(shè)計(jì)引物擴(kuò)增序列,引物如下。上游引物UC:5'-CATGCCATGGGCATGTCAGTTGAATTTTACAACTCTAAC-3',下游引物DC:5'-GGAATTCCATATGTGGTGCTGTACCAAGAACTTT-3'。

    1.2.2 PCR擴(kuò)增Z序列

    將合成的引物用超純水稀釋成終濃度為10 mmol/L,進(jìn)行溫度梯度PCR,通過瓊脂糖凝膠電泳分析擴(kuò)增產(chǎn)物,選擇確定最佳退火溫度。質(zhì)粒pEZZ18 6 μL,引物 UZ 和 DZ 各加入 12 μL,10 ×PCR 緩沖溶液(含 MgCl220 mmol/L)30 μL,dNTPs(25 mmol/L)6 μL,Taq plus DNA 聚合酶(5 U/μL)6 μL,加超純水補(bǔ)足300 μL,分6管進(jìn)行PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性5 min,隨后進(jìn)行95℃ 30 s,59℃ 30 s,72℃ 30 s,共35個(gè)循環(huán),結(jié)束前72℃延伸5 min。

    1.2.3 目的片段的連接

    合并擴(kuò)增產(chǎn)物,進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳。由于質(zhì)粒pEZZ18中有連續(xù)的2段Z序列,預(yù)計(jì)擴(kuò)增結(jié)果會(huì)產(chǎn)生Z和ZZ大小2條條帶,用DNA膠回收試劑盒回收擴(kuò)增產(chǎn)物中的Z條帶;分別用SacⅡ和XhoⅠ雙酶切擴(kuò)增產(chǎn)物及質(zhì)粒pET35b(+),用PCR產(chǎn)物純化試劑盒純化酶切產(chǎn)物;將回收的片段和載體用T4DNA連接酶于16℃連接過夜。

    構(gòu)建的重組表達(dá)載體命名為pET35b(+)-ZCys,其質(zhì)粒圖譜如圖1所示。

    圖1 重組pET35b(+)-Z-Cys質(zhì)粒圖譜Fig.1 Map of expression vector pET35b(+)-Z-Cys

    1.2.4 轉(zhuǎn)化與篩選

    取100 μL E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞于冰浴上融化,加入連接液,輕輕吹打混勻,繼續(xù)冰浴30 min,將菌液放入42℃水浴中熱激90 s,立即放入冰浴中2 min,加入900 μL LB 培養(yǎng)基(提前預(yù)熱至37℃),于37℃恒溫?fù)u床上溫育1 h,將菌液離心,留200 μL上清將菌體打散,均勻涂布于含0.1 mg/mL硫酸卡那霉素的LB瓊脂平板表面,平板于37℃倒置培養(yǎng)過夜。用菌液PCR篩選陽性菌落,將鑒定呈陽性的菌液用質(zhì)粒DNA小量抽提試劑盒提取質(zhì)粒,利用PCR進(jìn)一步驗(yàn)證篩選,排除假陽性菌落后,將鑒定呈陽性的對應(yīng)菌液送至Sangon公司測序,并將測序正確的重組質(zhì)粒命名為pET35b(+)-Z-Cys。

    1.3 重組質(zhì)粒pET35b(+)-Z-Cys的表達(dá)

    將陽性重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化E.coli BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,涂布于含0.1 mg/mL硫酸卡那霉素的LB瓊脂平板表面。挑取單菌落接種于含有硫酸卡那霉素(0.1 mg/mL)的10 mL LB液體培養(yǎng)基中,于37℃培養(yǎng)過夜。按1∶100的比例取過夜培養(yǎng)液轉(zhuǎn)接到含有硫酸卡那霉素(0.1 mg/mL)的新鮮LB液體培養(yǎng)基中,于37℃搖床培養(yǎng)至OD值為0.6~1.0,分別加入濃度為 0、0.6、0.8、1.0、1.2 和 1.4 mmol/L的IPTG,于37℃下誘導(dǎo)培養(yǎng)5 h。離心收集菌體,以10 mL/g(濕質(zhì)量)加入破碎緩沖液(50 mmol/L Tris、150 mmol/L NaCl,pH 8.3)重懸,在冰水混合液中進(jìn)行超聲破碎(400 W,破碎6 s,停10 s),離心取上清液,進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析。

    1.4 重組蛋白的活性鑒定

    重組菌于37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)至OD值為0.6~1.0后,加入一定濃度的IPTG,在37℃下誘導(dǎo)培養(yǎng)5 h。離心收集菌體,以10 mL/g(濕質(zhì)量)加入破碎緩沖液進(jìn)行重懸,在冰水混合液中進(jìn)行超聲破碎,離心取上清液。

    1.4.1 重組蛋白與IgG結(jié)合活性的鑒定

    取蛋白上清液稀釋至一定倍數(shù),進(jìn)行 SDSPAGE電泳分析,進(jìn)而將蛋白轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜上。使用濃度為5% 的蛋白液封閉后,用1 000倍稀釋的HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG作為示蹤抗體孵育 2 h,用 TBST(0.01 mmol/L Tris、0.15 mmol/L NaCl、體積分?jǐn)?shù)0.05% 吐溫20,pH 7.5)洗滌后,用二氨基聯(lián)苯胺(DAB)作為顯色底物進(jìn)行顯色,觀察結(jié)果。

    1.4.2 重組蛋白與纖維素結(jié)合活性的鑒定

    用磷酸緩沖液(PBS)(10 mmol/L Na2HPO4、2 mmol/L KH2PO4、150 mmol/L NaCl 、3 mmol/L KCl,pH 7.4)作為平衡液,利用恒流泵以流速2 mL/min進(jìn)行校準(zhǔn)洗滌微晶纖維素層析柱。待電腦核酸蛋白檢測儀的280 nm的吸光度值穩(wěn)定以后,破碎菌體上清液以流速2 mL/min上樣,待流穿峰過后,用PBS洗滌層析柱至吸光度值穩(wěn)定。利用50 mmol/L Tris/NaOH(pH 12.5)進(jìn)行洗脫,收集吸光度值最大峰值處的蛋白洗脫液。把收集的洗脫液和原上清液、流穿液稀釋到一定濃度后進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 目的基因片段的獲得及陽性克隆的鑒定

    以質(zhì)粒 pEZZ18為模板,UZ/DZ為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增的Z基因片段,預(yù)計(jì)有2條長度分別為351和177 bp的DNA條帶(圖2)。在瓊脂糖凝膠電泳泳道1中,在100~500 bp間有2條明顯的條帶(圖2(a))。該結(jié)果與預(yù)期的相符,說明質(zhì)粒pEZZ18中帶有Z基因片段。以質(zhì)粒pET35b(+)為模板,UC/DC為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增的CBD基因片段,DNA長度應(yīng)為471 bp。在瓊脂糖凝膠電泳泳道2中,在500 bp附近有1條明顯的條帶(圖2(a)),該結(jié)果與預(yù)期的相符,說明質(zhì)粒pET35b(+)中帶有CBD基因片段。

    把構(gòu)建好的重組質(zhì)粒pET35b(+)-Z-Cys在16℃下進(jìn)行雙酶切,結(jié)果見圖2(b)。由圖2(b)可知,在100~250 bp間有1條明顯的條帶,說明構(gòu)建的重組質(zhì)粒中成功連接入了Z基因片段。以重組質(zhì)粒pET35b(+)-Z-Cys為模板,UC/DZ為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增的pCBD-Z基因片段,其DNA長度應(yīng)為690 bp。結(jié)果如瓊脂糖凝膠電泳泳道2所示,在500~750 bp間有1條明顯的條帶(圖2(b))。結(jié)果與預(yù)期的相符,說明成功構(gòu)建了含有pCBD-Z目的基因片段的重組質(zhì)粒。

    圖2 PCR電泳分析及重組質(zhì)粒pET35b(+)-Z-Cys的雙酶切分析Fig.2 Analysis of PCR product and restriction enzyme of the recombinant plasmid

    SPA的B結(jié)構(gòu)域通過C末端殘留的多肽鏈,結(jié)合鄰近IgG的Fc端[16]。因而,選擇將SPA改造后的Z結(jié)構(gòu)域插入到質(zhì)粒pET35b(+)中CBD的 C末端,并新增1個(gè)Cys,設(shè)計(jì)了全長為690 bp的基因重組序列,成功構(gòu)建了pET35b(+)-Z-Cys融合表達(dá)載體。

    2.2 CBD-Protein Z融合蛋白的表達(dá)

    載有重組質(zhì)粒 pET35b(+)-Z-Cys的 E.coli BL21在OD值達(dá)到0.6~1.0后,經(jīng)不同濃度的IPTG誘導(dǎo)表達(dá)5 h后,超聲破碎并收集菌體蛋白,稀釋至一定濃度后進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析。結(jié)果表明,在IPTG的誘導(dǎo)下,目的蛋白得以表達(dá),與預(yù)期的蛋白相對分子質(zhì)量2.53×104相符(圖3)。由圖3可知:隨著IPTG濃度的增加,重組蛋白的表達(dá)量也隨之增加,在濃度為0.8~1.2 mmol/L時(shí),表達(dá)量最高,并且不隨IPTG濃度的增大而繼續(xù)增加,表達(dá)量基本不變。實(shí)驗(yàn)最后確定本重組菌在OD值達(dá)到0.6~1.0后,選用濃度為1.0 mmol/L的IPTG進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)的結(jié)果最佳。

    圖3 SDS-PAGE電泳分析不同IPTG濃度誘導(dǎo)CBD-Protein Z融合蛋白的表達(dá)量Fig.3 SDS-PAGE analysis of CBD-Protein Z fusion protein expressed in E.coli BL21 transformant on different concentrations of IPTG

    2.3 CBD-Protein Z融合蛋白與SPA結(jié)合活性鑒定

    為證明CBD-Protein Z融合蛋白具有與IgG的結(jié)合活性,選取了HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG進(jìn)行Western Blot分析,結(jié)果見圖4,如果存在能被顯色且蛋白相對分子質(zhì)量與預(yù)期相符的蛋白條帶,則說明表達(dá)的融合蛋白具有與IgG結(jié)合的活性。由圖4可知:在蛋白相對分子質(zhì)量為2.5×104的附近,有1條與目的蛋白相對分子質(zhì)量相符的明顯顯色條帶,說明經(jīng)IPTG誘導(dǎo)表達(dá)后的重組蛋白具有與IgG的結(jié)合活性。

    圖4 Western Blot鑒定CBD-Protein Z融合蛋白與IgG的結(jié)合活性Fig.4 Western Blot Analysis of CBD-Protein Z fusion protein binding to IgG

    重組質(zhì)??杀磉_(dá)相對分子質(zhì)量為2.53×104的重組蛋白。這種SPA重組蛋白相對分子質(zhì)量小,易表達(dá)的同時(shí)能降低菌體生產(chǎn)強(qiáng)度。該重組蛋白具有與IgG結(jié)合的特異性,末端帶有的His肽段并不影響Z結(jié)構(gòu)域的生物活性,可用于表達(dá)蛋白的純化,事后可以用酶切除。改造后的Z結(jié)構(gòu)域能使IgG的洗脫條件變得溫和,保護(hù)IgG的蛋白質(zhì)活性不受影響,可作為一種較為理想的分離和純化IgG的材料。

    2.4 CBD-Protein Z融合蛋白與纖維素結(jié)合活性鑒定

    重組菌超聲破碎上清中的CBD-Protein Z融合蛋白通過微晶纖維素親和層析柱,結(jié)果見圖5,如果在流穿液中的目的蛋白條帶消失或變淡,且洗脫液中存在目的蛋白條帶,則說明表達(dá)的蛋白具有與纖維素結(jié)合的活性。由圖5可知:在與纖維素作用后的流穿液中,重組蛋白條帶明顯變淡,而洗脫液中存在蛋白相對分子質(zhì)量與目的蛋白相符的蛋白條帶,說明經(jīng)IPTG誘導(dǎo)表達(dá)后的蛋白具有與纖維素結(jié)合的活性。

    圖5 CBD-Protein Z融合蛋白與纖維素的結(jié)合活性鑒定Fig.5 Analysis of CBD-Protein Z fusion protein binding to Cellulose

    重組質(zhì)粒表達(dá)的融合蛋白在CBD的活性作用下作為親和層析配基使用時(shí),能定向伸展在基質(zhì)外側(cè),這樣的順向分子能夠提高IgG的載量。據(jù)相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),末端新引入的—SH能結(jié)合并活化介質(zhì),增加對IgG的吸附容量[17],提高蛋白配基的使用效率。使用的基質(zhì)纖維素具有一定的剛性,抗壓性能良好,上樣流速能有一定幅度的提高,能夠縮短純化時(shí)間,提高工作效率。這些效能可以通過與單純的SPA或Z結(jié)構(gòu)域蛋白的比較得以體現(xiàn)。

    3 結(jié)論

    針對傳統(tǒng)SPA親和層析存在的使用效率低、抗壓性能較差以及毒性殘留等問題,設(shè)計(jì)出一種新的免疫親和材料。構(gòu)建的含有CBD和Z基因的質(zhì)粒,經(jīng)轉(zhuǎn)化得到的重組菌表達(dá)出的重組融合蛋白CBDProtein Z,其活性檢測結(jié)果證明具有IgG和纖維素的結(jié)合活性。

    對于將來作為工程菌的蛋白表達(dá)條件,本研究僅具體探究了誘導(dǎo)劑濃度對蛋白表達(dá)作用的影響,并沒有對其他表達(dá)條件做深入探究。本研究也為利用基因工程等技術(shù)生產(chǎn)應(yīng)用型SPA提供了一條新的借鑒思路。

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