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    榆耳液體發(fā)酵菌絲體多糖提取方法的比較研究

    2014-04-24 06:55:18郭海勇邢曉瑞何云亭李彬彬鮑慶晗孫文怡于長(zhǎng)春
    關(guān)鍵詞:菌絲體酶法發(fā)酵液

    郭海勇,邢曉瑞,何云亭,韓 育,李彬彬,鮑慶晗,孫文怡,于長(zhǎng)春

    (吉林師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,吉林 四平 136000)

    榆耳(Gloeostereum incaratum),又稱榆磨,是分布于中國東北部山區(qū)和日本北海道地區(qū)的一種稀有食藥用真菌,近年來隨著對(duì)榆耳多糖的深入研究,榆耳多糖的多種生物活性被發(fā)現(xiàn),具有抗腫瘤、抗氧化、抗炎、免疫調(diào)節(jié)等功效[1-3].因其對(duì)人體正常細(xì)胞毒副作用很小,具有良好的提高機(jī)體免疫力的作用[4-5],并無毒副作用,可廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥及保健食品領(lǐng)域,具有廣闊的發(fā)展前景,因此有效提取榆耳多糖具有重要意義.

    真菌多糖在細(xì)胞中一直作為能量存儲(chǔ)分子和結(jié)構(gòu)組成的角色,因其獨(dú)特的功能和較低的毒性,已在抗腫瘤藥、抗病毒藥、抗衰老藥等多個(gè)方面得到開發(fā)和應(yīng)用[6],食藥用真菌多糖的提取多見于水提和堿提法,而酶法和超聲波法近年來也不斷被應(yīng)用.但是針對(duì)不同的食用菌,其有效的提取方法各不相同,因此本實(shí)驗(yàn)采用水法、酶法及超聲波法對(duì)榆耳發(fā)酵菌絲體多糖的提取方法進(jìn)行比較研究,為應(yīng)用最佳提取方法的工藝優(yōu)化研究和榆耳多糖免疫功能研究奠定基礎(chǔ).

    1 材料與方法

    1.1 材料

    (1)菌種.榆耳 G105(Gloeostereum incarnatum S.Ito et Imai),購自吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)菌物研究中心.

    (2)試劑.纖維素酶、中性蛋白酶由寧夏和氏璧生物技術(shù)有限公司生產(chǎn).葡萄糖、三氯甲烷、正丁醇、乙醇、苯酚等試劑均為市售分析純?cè)噭?

    (3)儀器設(shè)備.UV-4802型分光光度計(jì),美國Unico公司;Vortex-Genie 2型旋渦混合儀,美國SI公司;RE52299型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器廠;HH2S型恒溫水浴鍋,江蘇省金壇市醫(yī)療儀器廠;JY92-IIDN超聲波破碎儀,寧波新芝公司.

    1.2 方法

    (1)榆耳菌絲體發(fā)酵培養(yǎng)及菌絲體干粉的制備.將榆耳G105斜面試管菌種接種于PDB液體培養(yǎng)基,26℃、120 r/min培養(yǎng)7 d制成液體母種,以10%接種量接入液體搖瓶培養(yǎng)基中,26℃,120 r/min,培養(yǎng)7 d得到菌絲體.將菌絲體用4層紗布過濾,用蒸餾水反復(fù)洗滌3次,60℃恒溫烘干,粉碎成干粉,備用.

    (2)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)定.分別吸取0.1mg/mL 的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液 0mL、0.2mL、0.4mL、0.6mL、0.8mL、1.0mL、1.2mL、1.4mL、1.6mL,均以蒸餾水補(bǔ)至2.0mL.然后加入6%苯酚溶液1mL,在加入濃硫酸5mL,漩渦充分搖勻,沸水浴15min,冰浴5min,在波長(zhǎng)490nm處測(cè)定吸光值A(chǔ).并以A為縱坐標(biāo),溶液中葡萄糖含量為橫坐標(biāo)繪圖,得標(biāo)準(zhǔn)曲線和回歸方程.

    (3)水提法提取榆耳菌絲體多糖.準(zhǔn)確稱取1.0 g榆耳菌絲干粉,料液比1∶30,80℃恒溫水浴中浸提2.5 h,過濾,重復(fù)2次,合并上清液,減壓蒸餾濃縮至原體積的1/10.冷卻后Sevage法除蛋白:按多糖溶液體積加入比為5∶1的三氯甲烷和正丁醇混合液,劇烈振蕩20min,棄去下層有機(jī)溶液層和中間變性蛋白質(zhì),重復(fù)2次.除蛋白后的提取液加入終濃度為3%的過氧化氫,在50℃下保溫脫色20min,加入3倍體積無水乙醇,4℃靜置過夜,4000 r/min離心15min,收集沉淀,60℃烘干至恒重,稱重,采用苯酚–硫酸法測(cè)定榆耳發(fā)酵液中多糖含量,計(jì)算其得率,試驗(yàn)重復(fù)3次.

    (4)酶法提取榆耳菌絲體多糖.準(zhǔn)確稱取1.0 g榆耳菌絲干粉,料液比1∶30,調(diào)節(jié)pH為4.5,加入3%的纖維素酶,40℃作用30min,再調(diào)pH至7.5加3%中性蛋白酶作用30min,升溫至80℃滅酶30min,4000 r/min離心 15min,取上清液,沉淀反復(fù)洗滌2次,合并上清液,減壓蒸餾濃縮至原體積的1/10.采用Sevage法除蛋白,脫色,醇沉,干燥,苯酚–硫酸法測(cè)定榆耳發(fā)酵液中多糖含量,計(jì)算其得率,試驗(yàn)重復(fù)3次.

    (5)超聲波法提取榆耳菌絲體多糖.準(zhǔn)確稱取1.0 g榆耳菌絲干粉,料液比1∶30,功率為600 W,超聲時(shí)間為30min,4000 r/min離心15min,取上清液,沉淀反復(fù)洗滌2次,合并上清液,減壓蒸餾濃縮至原體積的1/10.采用 Sevage法除蛋白,脫色,醇沉,干燥,苯酚–硫酸法測(cè)定榆耳發(fā)酵液中多糖含量,計(jì)算其得率,試驗(yàn)重復(fù)3次.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線方程的確定

    精確量取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液 0mL、0.2mL、0.4mL、0.6mL、0.8mL、1.0mL、1.2mL、1.4mL、1.6mL用蒸餾水分別補(bǔ)至2.0mL,按苯酚–硫酸法比色測(cè)定吸光度,以標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖質(zhì)量濃度(x,mg/mL)為橫坐標(biāo)、吸光度(y)為縱坐標(biāo),得到標(biāo)準(zhǔn)曲線(見圖1),其回歸方程為 y=12.70x - 0.0019,R2=0.9986.葡萄糖質(zhì)量濃度在 0.00 ~0.10mg/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好.

    圖1 葡萄糖的標(biāo)準(zhǔn)曲線

    2.2 三種不同提取方法多糖提取率結(jié)果比較

    采用水提取法、酶法提取法、超聲波提取法3種方法對(duì)一定量的榆耳菌絲體進(jìn)行多糖提取,其多糖提取率比較結(jié)果見圖2.

    圖2 不同提取方法提取榆耳菌絲體多糖提取率的比較結(jié)果

    從圖2可以看出,酶法多糖提取率最高,達(dá)到4.70%,其次是超聲波法,多糖提取率為3.92%,且用時(shí)最短.水提取法提取率最低,為3.47%,且操作時(shí)間最長(zhǎng),但超聲波法與水提取法差異不顯著.

    3 結(jié)論

    熱水提取法是提取真菌多糖的傳統(tǒng)方法,工藝簡(jiǎn)單,設(shè)備要求低,能夠最大限度地保持多糖的結(jié)構(gòu)和活性,但操作時(shí)間長(zhǎng),提取效低率.應(yīng)用水提法提取榆耳菌絲體多糖,粗多糖得率為3.47%,低于張公亮等[6]水提醇沉法提取多糖的得率.超聲波法是目前提取真菌多糖的最快速經(jīng)濟(jì)的方法,是利用超聲波的空化作用及各種次級(jí)效應(yīng)瞬時(shí)產(chǎn)生大量熱能,加速有效成分溶出,提高多糖的提取率和純度,縮短提取時(shí)間、降低能耗,并避免了高溫對(duì)多糖結(jié)構(gòu)和活性的影響,提取過程中需注意超聲時(shí)間,過長(zhǎng)會(huì)引起多糖的分解[7,8].但本研究采用超聲波提取榆耳菌絲體多糖的效果并不理想,和水提法無明顯差異且低于酶法的提取率.

    復(fù)合酶法提取真菌多糖是近幾年發(fā)展起來的一種新技術(shù),針對(duì)真菌多糖分布部位及細(xì)胞結(jié)構(gòu)特征的不同,恰當(dāng)?shù)乩酶鞣N酶的協(xié)同作用改變細(xì)胞壁的通透性,破壞菌體細(xì)胞結(jié)構(gòu),最大限度地提高多糖的得率,同時(shí)保持多糖的活性構(gòu)象和藥用功能,酶法技術(shù)應(yīng)用于天然產(chǎn)物的提取制備操作簡(jiǎn)便,成本低廉。此方法已在真菌多糖提取中廣泛應(yīng)用,并取得較好的效果[10,11].本研究采用復(fù)合酶解法提取液態(tài)深層發(fā)酵培養(yǎng)獲得的榆耳菌絲體多糖,得率高于傳統(tǒng)的熱水提取法和超聲波提取法,與劉振春等[9]通過酶法提取榆耳菌絲體多糖的得率相似.本研究通過對(duì)三種不同提取榆耳菌絲體多糖的方法進(jìn)行比較研究,確定酶法提取效果最好,榆耳菌絲體多糖提取率高于其他兩種方法,為榆耳菌絲體多糖提取工藝優(yōu)化及進(jìn)一步研究榆耳多糖性質(zhì)和功能奠定基礎(chǔ).

    [1]柳洪芳,王新宇,呂金超,等.榆耳多糖的分離純化、結(jié)構(gòu)鑒定及抗腫瘤活性研究[J].中國生化藥物,2010,31(5):293~296.

    [2]李雨婷,宋 慧,李艷秋,等.榆耳深層發(fā)酵浸膏醇提物的抗氧化活性研究[J].菌物研究,2010,8(2):90~102.

    [3]崔京春,郭海勇,邢效瑞,等.榆耳發(fā)酵液抑菌譜及抑菌作用穩(wěn)定性研究[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2013,13:105~107.

    [4]翁麗麗,翁 硯,邱金文.榆耳多糖對(duì)動(dòng)物免疫功能的影響[J].吉林中醫(yī)藥,2009,29(7):626~627.

    [5]崔京春,郭海勇,邢效瑞,等.榆耳發(fā)酵液多糖對(duì)小鼠免疫功能的影響[J].食品工業(yè)科技,2013,34(16):342-346.350.

    [6]孫文怡,戰(zhàn) 陽,等.鹽析法純化猴頭菌多糖工藝條件的研究[J].吉林師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2011,32(3):88~91.

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    [8]薛 丹,黃豆豆,黃光輝,等.植物多糖提取分離純化的研究進(jìn)展[J].中藥材,2014,37(1):159~163.

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    [10]葉 敏,復(fù)合酶法提取紅托竹蓀多糖的工藝研究[J].吉林師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2012,33(2):145~147.

    [11]王云潔,閆洛攀,白福祖.敏法在中藥提取中的應(yīng)用進(jìn)展[J].中國中醫(yī)藥信息雜志,2013,20(9):110~112.

    [12]劉振春,蔣中華,李 慧,等.酶法提取榆耳菌絲體胞內(nèi)多糖的工藝研究[J].食品科學(xué),2009,30(13):201~204.

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