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    D-101 型大孔吸附樹脂純化黃蜀葵花總黃酮的工藝研究

    2014-04-11 04:55:42于鶴云劉漢清唐海濤
    中成藥 2014年3期
    關(guān)鍵詞:桃苷葵花槲皮素

    于鶴云, 劉漢清*, 劉 嘉, 唐海濤, 張 平, 張 堅(jiān)

    (1.南京中醫(yī)藥大學(xué), 江蘇 南京 210046; 2.江蘇建康職業(yè)學(xué)院, 江蘇 南京 210029; 3.江蘇蘇中藥業(yè)集團(tuán)股份有限公司, 江蘇 姜堰 225500)

    D-101 型大孔吸附樹脂純化黃蜀葵花總黃酮的工藝研究

    于鶴云1, 劉漢清1*, 劉 嘉2*, 唐海濤3, 張 平3, 張 堅(jiān)1

    (1.南京中醫(yī)藥大學(xué), 江蘇 南京 210046; 2.江蘇建康職業(yè)學(xué)院, 江蘇 南京 210029; 3.江蘇蘇中藥業(yè)集團(tuán)股份有限公司, 江蘇 姜堰 225500)

    目的 優(yōu)選 D-101 型大孔吸附樹脂純化黃蜀葵花總黃酮的工藝參數(shù)。 方法 以總黃酮、 金絲桃苷、 異槲皮苷、楊梅素、蘆丁和槲皮素的回收率、總黃酮純度為指標(biāo),采用Z分綜合評(píng)分法,通過正交試驗(yàn)優(yōu)選黃蜀葵花總黃酮的純化工藝。 結(jié)果 確定最優(yōu)條件為藥液總黃酮質(zhì)量濃度 4.23 mg/mL, pH 4.17, 上樣體積流量 2 BV/h (BV為柱體積),5 BV水和 3 BV5%乙醇除雜, 7 BV 70%乙醇洗脫, 洗脫體積流量 2 BV/h。 結(jié)論 該工藝條件對(duì)黃蜀葵花總黃酮的純化效果較好。

    大孔吸附樹脂;黃蜀葵花;總黃酮;純化工藝

    黃蜀葵 Abelmoschusmanihot(L.) Medic是錦葵科秋葵屬植物[1], 其花中主要含有黃酮類、鞣質(zhì)類、 有機(jī)酸類和 長(zhǎng)烴類等化合物[2], 黃酮類物質(zhì)是目前所知的主要有效成分,黃葵膠囊即是從黃蜀葵花中提取有效成分制成的膠囊劑,臨床主要用于治療各類慢性腎臟?。?]。 工藝生產(chǎn)過程中發(fā)現(xiàn)黃葵干浸膏中間體易吸濕,并且膠囊服用劑量較大(一天3 次, 一次 5 粒), 為此本實(shí)驗(yàn)研究大孔吸附樹脂純化富集總黃酮部位,去除部分易吸濕的雜質(zhì),減小膠囊服用量。

    1 儀器和材料

    Ultimate 3000 高效 液相色譜儀 ( 美國(guó) Dionex公司); Lambda 25 紫外可見分光光度計(jì) (美國(guó)PerkinElmer公司) ;HH-4 型數(shù)顯恒溫水浴鍋 ( 金壇富華儀器有限公司); RE-2000E型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器( 鄭州亞榮儀器有限公司) ; Molelement 1710V超純水機(jī) ( 上海摩勒生物科技有限公司); GT10-1高速臺(tái)式離心機(jī) (北京時(shí)代北利離心機(jī)有限公司)。

    金絲 桃 苷 ( 111521-201004, 純 度 以 93.9%計(jì))、 蘆丁 (100080-200707,純度以 90.5% 計(jì))、槲皮素 (100081-200907, 純度以 96.5%計(jì)) 均購(gòu)于中國(guó)食品藥品檢定研究院;楊梅素 (上海同田生物技術(shù) 有 限 公司, 批 號(hào) 為 11012622, 純度 ≥98%)、異槲皮苷 (四川維克奇生物科技有限公司, 批號(hào)為 201010, 純度≥98%)。 D-101 型大孔吸附樹脂 (天津市海光化工有限公司)。乙腈, 色譜純;其余試劑均為分析純。黃蜀葵花 (產(chǎn)地為興化)經(jīng)南京中醫(yī)藥大學(xué)談獻(xiàn)和教授鑒定為錦葵科的黃蜀葵。

    2 方法和結(jié)果

    2.1 紫外分光光度法測(cè)定總黃酮的標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制精密稱取減壓干燥 12 h以上的 金 絲 桃苷對(duì)照品適量, 用無水乙醇定容配制成質(zhì)量濃度為0.128 4 mg/mL的對(duì)照品溶液, 精密移取對(duì)照品溶液 1、 2、3、 4、 5、 6 mL于 25 mL量 瓶 中, 加 蒸 餾 水 至 6 mL, 分 別 準(zhǔn) 確 加 入 5 mL醋 酸 鹽 緩 沖 液 (2 mol/L醋酸液∶2 mol/L醋酸鈉溶 液 =3 ∶1) 和 0.1 mol/L的三氯 化 鋁 溶 液 3 m L, 用 蒸 餾 水 定 容 到 刻 度, 混勻, 放置 30 min, 另取 6 mL蒸 餾 水 同 法 制 備 空 白對(duì)照溶液, 在 402 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度, 以 吸光度值為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[4], 得線 性 方 程 為 A=0.029 9C+0.015 3, r= 0.999 9, 金 絲 桃苷在 5.136 ~30.816 μg/mL范 圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系。

    2.2 HPLC法同時(shí)測(cè)定 5 種成分的標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制

    2.2.1 色 譜 條件 Thermo scientific Hypersil GOLD色譜柱 (250 mm×4.6 mm, 5 μm) , 檢 測(cè) 波 長(zhǎng) 為360 nm,柱溫 30 ℃, 體 積 流 量 為 0.8 mL/min,流動(dòng)相為乙腈 -0.2%磷酸水, 按表 1 進(jìn)行梯度洗脫,此條件下對(duì)照品與樣品均達(dá)到較好的分離效果[5],見圖1。

    表1 梯度洗脫程序Tab.1 Gradient elution p rogram

    2.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 精密稱取減壓干燥 12 h 以上的金絲桃苷、異槲皮苷、楊梅素、蘆丁和槲皮素對(duì)照品適量,用甲醇定容配制成質(zhì)量濃度分別為1.615、 1.227、 0.543、 0.091、 0.178 mg/mL的對(duì)照品溶液, 精密移取上述對(duì)照品溶液各1 mL于10 m L量瓶中, 用甲醇定容即得金絲桃苷 0.161 5 mg/mL、 異槲皮苷0.122 7 mg/mL、 楊梅素0.054 3 mg/mL、蘆 丁 0.009 1 mg/mL、槲 皮 素 0.017 8 mg/mL的混合對(duì)照溶液。 取混合對(duì)照溶液分別稀釋成初始質(zhì)量濃度的 1、 1/2、 1/4、 1/8、 1/16、 1/32的系列混合對(duì)照溶液, 分別進(jìn)樣 10 μL, 以峰面積為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得線性方程為: 金絲桃苷 Y1=0.325 15X1+0.117 66,r1=0.999 99; 異槲皮苷 Y2=0.297 47X2+0.070 86,r2=0.999 99; 楊梅素 Y3=0.523 25X3-0.098 16, r3=0.999 97;蘆丁 Y4=0.238 01X4-0.003 64,r4=0.999 98; 槲皮素 Y5=0.680 8X5-0.108 3,r5=0.999 9。 金絲桃苷在 5.048 ~161.528 μg/mL范圍內(nèi)、 異槲皮苷在 3.833 ~122.655 μg/mL范圍內(nèi)、 楊梅素在1.697 ~54.292 μg/mL范圍內(nèi)、 蘆丁在 0.283 ~9.050 μg/mL范圍內(nèi)、 槲皮素在0.556 ~17.795 μg/m L范圍內(nèi)與峰面積均呈良好的線性關(guān)系。

    圖1 混合對(duì)照品 (A) 與樣品 (B) 的 HPLC圖譜Fig.1 HPLC chromatogram s ofm ixed reference substances(A) and sample(B)

    2.3 樣品溶液的配制方法 稱取黃蜀葵花適量,加入20 倍量 70%乙醇提取 3 次, 每次 1 h, 合并提取液后濃縮至無醇味,加適量蒸餾水稀釋,離心去除水不溶性雜質(zhì), 制得含總黃酮為 12.10 mg/mL的樣品溶液。

    2.4 大孔吸附樹脂的預(yù)處理 取 D-101 大孔吸附樹脂適量, 用 95%乙醇浸泡 24 h 后, 濕法裝柱,用 95%乙醇沖洗至流出液加水無渾濁現(xiàn)象, 再用蒸餾水沖洗至無醇味,備用。

    2.5 Z分綜合評(píng)價(jià)法 本實(shí)驗(yàn)選取總黃酮、 金絲桃苷、異槲皮苷、楊梅素、蘆丁、槲皮素回收率以及總黃酮純度為指標(biāo),采用Z分綜合評(píng)價(jià)法將多指標(biāo)進(jìn)行歸一化處理[6], 計(jì)算公式如下:

    Zi=/Si其中:Xi為指標(biāo)值為指標(biāo)值的平均值,Si為指標(biāo)值的標(biāo)準(zhǔn)差[7]。

    2.6 分離純化實(shí)驗(yàn)的單因素考察

    2.6.1 上樣質(zhì)量濃度的考察 量取 350 mL總黃酮質(zhì)量濃度為 12.10 mg/mL樣品溶液 5 份,分別稀釋成 1.13、4.23、 6.72、 8.63、12.10mg/mL的樣品溶液。 量取 100 m L經(jīng)過預(yù)處理的 D-101 型樹脂,濕法裝柱,將上述5份樣液分別濕法上樣,上樣體積流量為4 BV/h, 用 5 BV蒸餾水沖洗, 再用 5 BV 70%乙醇以 4 BV/h 的體積流量進(jìn)行解吸附, 收集乙醇洗脫液, 按 “2.1”、 “2.2” 項(xiàng)下方法分別測(cè)定總黃酮和5種成分的回收率,另取乙醇洗脫液50 mL于蒸發(fā)皿中, 105 ℃干燥至恒定質(zhì)量, 利用差量法測(cè)定含固量,計(jì)算總黃酮純度,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次取其平均值, 結(jié)果見表2。

    黃酮回收率%=洗脫液中黃酮量/樣品溶液中黃酮量 ×100%

    總黃酮純度%=洗脫液中黃酮量/洗脫液的總含固量 ×100%

    表2 不同上樣質(zhì)量濃度的考察結(jié)果Tab.2 Resu lts of different concentrations of sam p le solution

    由表 2 可知, 藥液的總黃酮質(zhì)量濃度在4.23 ~6.72 mg/mL范圍內(nèi)純化效果較好。

    2.6.2 上樣藥液 pH的考察 量取 5 份總黃酮質(zhì)量濃度為 4.23 mg/mL樣品溶液各 1L, 分別調(diào) pH值為 2.18、 4.17、 6.01、 8.00、 9.98, 同法上樣、洗脫、 檢測(cè),其結(jié)果見表3。

    表3 不同藥液 pH的考察結(jié)果Tab.3 Results of different pH values of sample solution

    由表 3 可知, 藥液 pH在2.18 ~4.17 范圍內(nèi)純化效果較好。

    2.6.3 上樣體積流量的考察 量取 4 份總黃酮質(zhì)量濃度為 4.23 mg/mL樣品溶液各 1 L分別以 2 BV/h、 4 BV/h、 6 BV/h、 8 BV/h 的體積流量上樣, 同法洗脫、 檢測(cè), 其結(jié)果見表4。

    由表 4 可知, 上樣體積流量為 2 BV/h、 4 BV/h時(shí)純化效果較好。

    表4 不同上樣體積流量的考察結(jié)果Tab.4 Resu lts of different flow rates of sam p le solution

    2.6.4 不同體積分?jǐn)?shù)乙醇洗脫的考察 量取 5 份總黃酮質(zhì)量濃度為 4.23 mg/mL樣品溶液各 1 L依法上樣、 水洗, 再分別用 5 BV 的 30%、 50%、70%、80%、95%乙醇進(jìn)行解吸附,收集洗脫液依法檢測(cè), 其結(jié)果見表5。

    表5 不同體積分?jǐn)?shù)乙醇的考察結(jié)果Tab.5 Results of different con tents of ethanol

    由表 5 可知, 乙醇洗脫體積分?jǐn)?shù)在 70% ~95%范圍內(nèi)純化效果較好。

    2.6.5 乙醇洗脫體積的考察 量取 4 份總黃酮質(zhì)量濃度為4.23mg/mL樣品溶液各1L依法上樣、水洗,分別用 1BV、 3BV、 5BV、 7BV的 70%乙醇進(jìn)行解吸附, 收集洗脫液依法檢測(cè), 其結(jié)果見表6。

    由表6可知, 當(dāng)乙醇用量達(dá)到 5 BV以后,各指標(biāo)值均較高。

    2.6.6 乙醇洗脫體積流量的考察 量取 4 份總黃酮質(zhì)量濃度為 4.23 mg/mL樣品溶液各 1 L同法上樣、 水洗,再用 5 BV 70%乙醇分別以 2、 4、 6、 8 BV/h 的體積流量進(jìn)行解吸附, 收集洗脫液依法檢測(cè), 其結(jié)果見表7。 由表7可知, 乙醇洗脫體積流量為 2、 4 BV/h 時(shí)純化效果較好。

    2.6.7 除雜洗脫條件的考察 量取 4 份總黃酮質(zhì)量濃度為 4.23 mg/mL樣品溶液各 1 L同法上樣,分別用 5 BV蒸餾水、 8 BV蒸餾水、 5 BV蒸餾水 +3 BV5%乙醇、 5 BV蒸餾水 +5 BV10%乙醇進(jìn)行沖洗后, 再用 70%乙醇解吸附, 收集洗脫液依法檢測(cè), 其結(jié)果見表8。

    表8 不同除雜洗脫條件的考察結(jié)果Tab.8 Results of different parameters of washing p rogram

    由表 8 可知, 用 5BV水和 5BV水 +3BV5%乙醇沖洗雜質(zhì),純化效果較好。

    2.7 正交試驗(yàn) 以單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果確定的各因素較優(yōu)范圍, 按 L8(27) 正交表進(jìn)行實(shí)驗(yàn), 因素水平見表 9, 實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表 10, 其直觀分析見表 11,方差分析見表 12。

    表9 因素水平Tab.9 Factors and levels

    表 10 正交試驗(yàn)結(jié)果Tab.10 Results of orthogonal experiment

    表 11 正交試驗(yàn)結(jié)果的直觀分析Tab.11 Intuitive analysis table

    表 12 正交試驗(yàn)結(jié)果的方差分析Tab.12 Analysis of variance table

    由表 11、 12 可知,上樣流量和上樣 pH具有顯著性差異 (P<0.05), 因素影響大小為: A> B>G > D > E > C > F, 最 佳 工 藝 為A1B2C1D2E1F2G2, 即上樣體積流量為 2 BV/h, 上樣 pH為 4.17, 上樣質(zhì)量濃度為 4.23 mg/m L, 乙醇體積分?jǐn)?shù) 70%, 乙醇洗脫體積流量為 2 BV/h,除雜洗脫條件為 5 BV+3 BV5%乙醇,乙醇洗脫體積為7 BV。

    2.8 驗(yàn)證試驗(yàn) 量取 3 份已經(jīng)過預(yù)處理的 D-101樹脂300 mL, 濕法裝柱, 取 3 份總黃酮質(zhì)量濃度為 4.23 mg/mL的樣品溶液 3 L均調(diào)節(jié) pH至 4.17,濕法上樣, 上樣流量為 2 BV/h, 用 5 BV水和 3 BV5%乙醇除去雜質(zhì),再用 5 BV的 70%乙醇進(jìn)行洗脫,收集洗脫液,與正交試驗(yàn)同法檢測(cè),結(jié)果見表 13。

    表 13 驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果Tab.13 Results of verification tests

    由結(jié)果可知,按優(yōu)選出的方案純化黃蜀葵花總黃酮能達(dá)到很好的效果。

    3 討論

    3.1 本 實(shí) 驗(yàn) 考 察 了 AB-8、 D-101、 HPD-100、NKA-9 四種不同型號(hào)的樹脂對(duì)黃蜀葵花總黃酮的純化效果,以靜態(tài)吸附率、靜態(tài)解吸率、動(dòng)態(tài)吸附率和動(dòng)態(tài)解吸率為指標(biāo)優(yōu)選出 D-101 型樹脂, 其純化效果較好。3.2 黃葵膠囊中活性成分為總黃酮, 藥典中以金絲桃苷的量為指標(biāo),本實(shí)驗(yàn)以總黃酮、異槲皮苷、楊梅素、蘆丁和槲皮素的回收率為綜合指標(biāo),能更全面客觀的說明 D-101 型大孔吸附樹脂純化黃蜀葵花總黃酮方法的可行性和科學(xué)性。3.3 根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn)楊梅素和槲皮素的回收率很高, 甚至大于 100%, 一方面原因是 D-101 對(duì)楊梅素和槲皮素的吸附和解吸附效果很好,另一方面可能的原因是部分金絲桃苷、槲皮苷等類似母核的黃酮類成分在酸性條件下水解成槲皮素等[8], 具體原因有待進(jìn)一步研究。

    [ 1 ] 居文政.黃蜀葵的本草考證[J].時(shí)珍國(guó)藥研究, 1994, 5(2): 6-7.

    [2] 劉 爽,江蔚新,吳 斌.黃蜀葵化學(xué)成分及藥理活性研究進(jìn)展[ J] .中國(guó)現(xiàn)代中藥, 2010, 12(8) : 5-9.

    [3] 趙 青,萬毅剛,孫 偉,等.黃葵膠囊對(duì)阿霉素腎病腎組織炎癥信號(hào)通路 p38MAPK的干預(yù)作用[J].中國(guó)中藥雜志, 2012, 37(19): 2926-2934.

    [4] 周正華,杜安全,王先榮.黃蜀葵花中總黃酮含量測(cè)定方法的比較研究[ J] .中藥材, 2006, 29(11) : 1192-1194.

    [5] 劉 霖,唐海濤,劉漢清,等.黃葵膠囊中5種黃酮類成分的含量測(cè)定及其特征圖譜研究[J].中藥材, 2013, 36(1): 132-136.

    [6] 靳 浩,吳 誠(chéng),梅興國(guó).多指標(biāo)綜合評(píng)價(jià)優(yōu)選阿霉素微球的制備工藝及體內(nèi)的初步考察[J].中國(guó)藥學(xué)雜志,2006, 41(22): 1723-1725.

    [7] 趙應(yīng)征,魯翠濤,梅興國(guó).常用多指標(biāo)綜合評(píng)價(jià)法在優(yōu)選實(shí)驗(yàn)中的應(yīng)用[ J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào), 2004, 17 (7):624-626.

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    Purification of total flavonoids from Abelmoschusmanihot( L.) M edic by D-101 m icroporous resin

    YU He-yun1, LIU Han-qing1*, LIU Jia2*, TANG Hai-tao3, ZHANG Ping3, ZHANG Jian1
    (1.Nanjing University of Traditional ChineseMedicine, Nanjing 210046, China; 2.Jiangsu Jiankang Vocational College, Nanjing 210029, China;3.Jiangsu Suzhong Pharmaceutical Group Co., Ltd, Taizhou 225500, China)

    microporous resin; abelmoschusmanihot( L.) Medic; total flavonoids; purification process

    R284.2

    : A

    : 1001-1528(2014)03-0520-06

    10.3969/j.issn.1001-1528.2014.03.016

    2013-05-16

    江蘇省科技成果轉(zhuǎn)化專項(xiàng)資金項(xiàng)目 (BA2012131)

    于鶴云 (1989—) , 女, 碩士生, 研究方向: 中藥藥劑學(xué)。 Tel: 18362315623, E-mail: 517193174@qq.com

    *通信作者: 劉漢清 (1947—) , 男, 教授, 研究方向: 藥物新劑型與新工藝。 Tel:(025)85811517, E-mail: nzyhqliu@126.com劉 嘉 (1983—), 男, 講師, 研究方向: 藥物劑型與信息。 Tel: 13770704461

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