項(xiàng) 云,屠平光,章嘯君,樓芳芳,杜喜忠,胡旭進(jìn)
(金華市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院畜牧所,浙江 金華321000)
細(xì)胞培養(yǎng)是現(xiàn)代生物學(xué)研究中應(yīng)用最為廣泛的技術(shù),成纖維細(xì)胞具有易培養(yǎng),增殖快,形態(tài)和遺傳性能穩(wěn)定,可長(zhǎng)期、完整、大量地保存生物體遺傳信息的特點(diǎn)[1]。因此,通過構(gòu)建家畜品種成纖維細(xì)胞庫的途徑保存或拯救其種質(zhì)資源是目前最為理想的方法之一[2]。1997年,Wilmut 等用體細(xì)胞核移植轉(zhuǎn)基因法獲得世界上首例轉(zhuǎn)基因克隆綿羊。轉(zhuǎn)基因動(dòng)物克隆以體細(xì)胞核移植技術(shù)作為基礎(chǔ),目前體細(xì)胞克隆轉(zhuǎn)基因牛(Cibelli,1998),山羊(Baguisi,1999),豬(Polejaeva,2000;Lai,2002年)等相繼獲得成功[3]。而成纖維細(xì)胞是核移植中的一種理想供體細(xì)胞。
金華豬作為中國優(yōu)良的地方豬種之一,在育種方面具有巨大的潛力。本試驗(yàn)研究了金華豬耳緣組織成纖維細(xì)胞的分離與原代、傳代培養(yǎng)及生物學(xué)特性,獲得了能在體外正常傳代培養(yǎng)的細(xì)胞系,為動(dòng)物克隆、轉(zhuǎn)基因動(dòng)物及其他細(xì)胞生物學(xué)研究提供細(xì)胞資源。
1.1 試劑與儀器 DMEM(Dulbecco's Modium Essential Medium)培養(yǎng)液;胎牛血清(Fetal bovine serum,F(xiàn)BS);青霉素、鏈霉素混合液(含青霉素10000 U/mL、鏈霉素10 μg/mL);0.25%胰蛋白酶溶液;PBS 液等均為Hyclone 公司產(chǎn)品。Giemsa 染液(Giemsa stain)為Fluka 公司產(chǎn)品;完全培養(yǎng)液:含100U/ml 青霉素鈉、100ug/ml 硫酸鏈霉素、10%FBS的DMEM 培養(yǎng)液;凍存液:含10%DMSO 和20%FBS 的DMEM 培養(yǎng)液;液氮罐YDS-30;倒置顯微鏡OLYMPASCKX41;二氧化碳培養(yǎng)箱Thermo311 型;超低溫冰箱Thermo702 型。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 取材及處理 活體采集3 ~5日齡金華豬耳緣皮膚組織,用75%酒精充分清洗消毒,無菌條件下剪取大小為0.5 cm×0.5 cm 耳部皮膚,置于含雙抗的PBS 液中,反復(fù)漂洗3 ~5 次,直到漂洗液清亮透明為止,吸去PBS 液,加入中性蛋白酶10 mL,4℃消化過夜,用眼科鑷細(xì)心分離皮膚表層與真皮層,剪成0.5 ~1 mm3大小的組織塊;用吸管將組織塊轉(zhuǎn)移至50 mL 離心管內(nèi),注入新鮮含雙抗的PBS 溶液,重復(fù)洗滌3 次,棄最后1 次洗滌液,取沉淀組織備用。
1.2.2 組織塊貼壁培養(yǎng)法 向離心管內(nèi)加入37℃預(yù)溫、含有10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液2 mL,用無菌吸管將組織塊轉(zhuǎn)移至專用培養(yǎng)瓶中(均勻鋪開,間距5 mm 左右),吸去多余培養(yǎng)液,倒置培養(yǎng)瓶,加培養(yǎng)液3 mL,放入37℃、5% C02培養(yǎng)箱中4 h,待組織塊充分吸附于培養(yǎng)瓶底部后,輕輕翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,慢慢加入37℃預(yù)溫培養(yǎng)液5 mL,重新置于5%CO2濃度的培養(yǎng)箱中進(jìn)行原代培養(yǎng),48 h 后觀察細(xì)胞生長(zhǎng)和污染情況,及時(shí)換液,72 h 后觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況。
1.2.3 原代細(xì)胞的分離與傳代 將細(xì)胞培養(yǎng)液從細(xì)胞板中吸出,用DPBS 液清洗貼壁細(xì)胞,清除殘留的DMEM 細(xì)胞培養(yǎng)液和壞死脫落細(xì)胞,加入500 μL胰酶消化3 min。顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)變化,待細(xì)胞變圓時(shí),立即加入800 μL DMEM 液終止酶消化,離心(1000 r/min),棄上清液,加DMEM 液,按1∶4比例,分別接種于四孔板中,傳代完成。
1.2.4 耳緣成纖維細(xì)胞的冷凍與復(fù)蘇 根據(jù)上述方法消化細(xì)胞,1000 r/min 離心后,棄上清液,加入4℃預(yù)冷的冷凍液1 mL,4℃保存0.5 h,-20℃保存2 h,放入-80℃過夜保存,第2 d 移入液氮中保存。復(fù)蘇時(shí),從液氮中取出,放入37.5℃恒溫水浴鍋中1 min,加入DMEM 培養(yǎng)液清洗細(xì)胞2 次,然后加入細(xì)胞培養(yǎng)液,放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.3 細(xì)胞活力測(cè)定 將凍存前及復(fù)蘇后的傳代細(xì)胞制成細(xì)胞懸液,取0.5 mL 放入小離心管中,加入0.02 g/mL 的Trypan blue 染液0.1 mL 混合,2 min后用血球計(jì)數(shù)板顯微鏡下直接測(cè)定細(xì)胞存活率。
1.4 細(xì)胞形態(tài)觀察(Giemsa 染色法) 將滅菌蓋玻片放入一次性細(xì)胞培養(yǎng)皿中,將適量真皮成纖維細(xì)胞懸液加入培養(yǎng)皿中,置于5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待真皮成纖維細(xì)胞在蓋玻片上長(zhǎng)成良好單層后,取出玻片浸入無水甲醇中固定15 min,然后用新無水甲醇沖洗,隨后放入純Giemsa 染液中染色10 min。從Giemsa 染液中取出玻片經(jīng)干燥和二甲苯透明。最后中性樹脂封片,顯微鏡下觀察細(xì)胞類型、性狀、大小、核質(zhì)比例、染色質(zhì)和核仁大小及生長(zhǎng)狀態(tài)。
1.5 細(xì)胞生長(zhǎng)曲線 采集生長(zhǎng)良好的真皮成纖維細(xì)胞,采用細(xì)胞傳代方法制成細(xì)胞懸液。經(jīng)計(jì)數(shù)后,將密度為2.53 ×104/mL 細(xì)胞懸液接種于24 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每孔1 mL。每隔24 h 取出3 孔細(xì)胞分別進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),求平均數(shù),連續(xù)計(jì)數(shù)8 d,以培養(yǎng)時(shí)間為橫軸,每日細(xì)胞數(shù)平均值為縱軸,作曲線圖,即得到體外培養(yǎng)真皮成纖維細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線。
1.6 數(shù)據(jù)分析 對(duì)細(xì)胞凍存前后的存活率進(jìn)行t檢驗(yàn),用SPSS 進(jìn)行χ2檢驗(yàn)。
2.1 成纖維細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察 經(jīng)原代組織塊貼壁法培養(yǎng)耳緣組織成纖維細(xì)胞,4 d 即可見到真皮組織塊邊緣向外游離生長(zhǎng)出單個(gè)細(xì)胞,細(xì)胞呈圓形,隨后伸展梭形、多邊形。培養(yǎng)7 d 即可明顯看到大量細(xì)胞向外植塊邊緣生長(zhǎng)。隨細(xì)胞游離出來的細(xì)胞增多,生長(zhǎng)速率逐漸加快,15 d 后,細(xì)胞基本布滿培養(yǎng)瓶。倒置顯微鏡下觀察,可見細(xì)胞以梭形和多角形為主,細(xì)胞飽滿,胞核成卵圓形,細(xì)胞向四周呈放射狀生長(zhǎng),形成致密單層細(xì)胞。細(xì)胞經(jīng)胰酶消化后形狀變圓。經(jīng)過2 ~3 次消化傳代后即可獲得純化的成纖維細(xì)胞。
2.2 成纖維細(xì)胞Giemsa 染色 高倍鏡下觀察,細(xì)胞質(zhì)呈淡藍(lán)色,胞體近中央處有橢圓形細(xì)胞核,可見2 ~4 個(gè)核仁,細(xì)胞輪廓清晰,伸展良好,細(xì)胞排列緊密規(guī)則。采用Giemsa 染色,細(xì)胞質(zhì)與細(xì)胞核具有明顯的顏色對(duì)比性,能清晰顯示出細(xì)胞形態(tài)及分裂的不同時(shí)相,能有效判斷細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)與健康狀況。
2.3 傳代培養(yǎng)耳緣組織成纖維細(xì)胞的生長(zhǎng)特性傳代培養(yǎng)的成纖維細(xì)胞與原代細(xì)胞其形態(tài)及生長(zhǎng)速度均無明顯差異,細(xì)胞質(zhì)生長(zhǎng)與分裂依然十分旺盛。單層細(xì)胞傳代4 d 后便可重新長(zhǎng)成單層細(xì)胞,對(duì)0.25%胰蛋白酶消化的敏感性比原代培養(yǎng)細(xì)胞明顯增強(qiáng)。從體外培養(yǎng)的耳緣真皮成纖維細(xì)胞對(duì)數(shù)生長(zhǎng)曲線可看出,細(xì)胞生長(zhǎng)前24 h 為遲緩期,第2 ~4 d為生長(zhǎng)期,第6 d 后進(jìn)入平穩(wěn)期。
2.4 成纖維細(xì)胞的冷凍保存與復(fù)蘇結(jié)果 利用改良血球計(jì)數(shù)板測(cè)定細(xì)胞凍存前24 h 及細(xì)胞復(fù)蘇后24 h 的平均存活率與貼壁率。統(tǒng)計(jì)結(jié)果表明,金華豬耳緣組織成纖維細(xì)胞凍存前和復(fù)蘇后平均存活率分別為95.6%和93.8%,細(xì)胞復(fù)蘇24 h 后,85%以上細(xì)胞貼壁于培養(yǎng)瓶底生長(zhǎng)。由此可見,凍存和復(fù)蘇后傳代細(xì)胞活力影響較小,細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好。
在動(dòng)物細(xì)胞原代培養(yǎng)發(fā)展的過程中,動(dòng)物原代細(xì)胞培養(yǎng)主要分為2 種方法,組織塊貼壁培養(yǎng)法和酶消化法。本試驗(yàn)采用組織塊培養(yǎng)法獲得金華豬耳緣成纖維細(xì)胞,該方法簡(jiǎn)單有效,獲得的成纖維細(xì)胞可以在體外至少傳代10 代。前期雖有少量上皮細(xì)胞存在,但根據(jù)不同類型細(xì)胞對(duì)胰酶的敏感度不同進(jìn)行純化,培養(yǎng)2 ~3 代后即可獲得較純的成纖維細(xì)胞[4]。傳代細(xì)胞在培養(yǎng)過程中細(xì)胞形態(tài)典型,呈現(xiàn)出“S”型生長(zhǎng)曲線,表明細(xì)胞生長(zhǎng)正常。
本試驗(yàn)材料采自仔豬耳緣皮膚組織,仔豬皮膚組織修復(fù)能力較強(qiáng),傷口很快愈合,不影響供體動(dòng)物健康,且還可進(jìn)行再次取樣。因此,新生豬成纖維細(xì)胞的取材方式比胎兒成纖維細(xì)胞方便,更適合于珍稀物種與瀕危動(dòng)物的細(xì)胞培養(yǎng)與核移植胚胎提供核供體。細(xì)胞培養(yǎng)中需要的培養(yǎng)液、血清及其他營養(yǎng)物質(zhì),不同生產(chǎn)廠家、產(chǎn)品批號(hào)、對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)有一定影響[5]。
本試驗(yàn)采用Hyclone 公司生產(chǎn)的高糖DMEM 培養(yǎng)液,血清含量為15%的培養(yǎng)基進(jìn)行原代培養(yǎng),傳代后改在培養(yǎng)基中添加10%的血清進(jìn)行培養(yǎng)。結(jié)果表明,DMEM 培養(yǎng)的金華豬耳緣組織成纖維細(xì)胞優(yōu)先從組織塊中移出,細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好,與張小建等(2007)[6]研究結(jié)果基本一致。
哺乳動(dòng)物細(xì)胞冷凍保存方法中,普遍采用DMSO 作為冷凍保護(hù)劑。選擇冷凍劑及冷凍方法一般著重考慮是否有利于細(xì)胞在最短時(shí)間內(nèi)脫水,減少細(xì)胞內(nèi)大冰晶的形成[7]。
本試驗(yàn)采用10%DMSO +20%FBS DMEM 培養(yǎng)液作為細(xì)胞冷凍液,4℃、-20℃、-80℃平衡后直接投入液氮中保存。細(xì)胞凍存前與復(fù)蘇后的存活率無顯著差異。
動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)現(xiàn)已成為一項(xiàng)比較成熟的技術(shù),該技術(shù)在生物學(xué)研究中具有廣闊前景。本試驗(yàn)成功建立了金華豬耳緣組織成纖維細(xì)胞系,該細(xì)胞系的建立,使金華豬這一重要物種資源在細(xì)胞水平上得以保存,為后期核移植和轉(zhuǎn)基因的研究提供了基礎(chǔ)材料。
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