不同干燥處理對薤白鱗莖皂苷含量和糖組分的影響

關(guān) 峰，郝麗珍，石 博，張鳳蘭，楊忠仁

不同干燥處理對薤白鱗莖皂苷含量和糖組分的影響

關(guān) 峰，郝麗珍*，石 博，張鳳蘭，楊忠仁

（內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院，內(nèi)蒙古自治區(qū)野生特有蔬菜種質(zhì)資源與種質(zhì)創(chuàng)新重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，內(nèi)蒙古 呼和浩特 010019）

采用鼓風(fēng)干燥、真空干燥和陰干對薤白鱗莖進(jìn)行對比實(shí)驗(yàn)，測定干燥后薤白鱗莖皂苷、糖組分含量以及干燥速率和干燥能耗，比較不同干燥方法對薤白鱗莖內(nèi)有效成分的影響。結(jié)果表明：薤白鱗莖干樣中蔗糖含量最高，木糖含量最低。皂苷含量在80 ℃鼓風(fēng)干燥處理后達(dá)到最高，為34.60 mg/g；蔗糖含量在60 ℃鼓風(fēng)干燥后達(dá)到最高，為40.82 mg/g；葡萄糖醛酸和半乳糖醛酸含量在真空干燥處理后達(dá)到最高，分別為5.12 μg/g和300.65 μg/g；阿拉伯糖、可溶性糖含量在干燥處理后相對穩(wěn)定。干燥溫度越高，干燥用時(shí)越短。從加工特性、有效成分保留方面綜合考慮，80 ℃鼓風(fēng)干燥對薤白鱗莖有效成分影響較小，可作為規(guī)?；稍镛作[莖的方法。

薤白鱗莖；干燥處理；皂苷；糖

薤白（Allium macrotemon Bunge.）為百合科蔥屬多年生草本植物[1]，別名小根蒜、山蒜等，廣泛分布于湖北、東北、河北、廣西、江蘇、內(nèi)蒙古等地，是一種藥食同源植物。薤白生食、炒食、腌制均可，具有解痙平喘、通陽散結(jié)、降脂、抗腫瘤等多種藥理活性[2]，多將鱗莖干燥后入藥。目前，由薤白提取物制成的脈凈膠囊（成分為甾體皂苷、含硫化合物）已用于臨床治療高血脂癥、預(yù)防動脈粥樣硬化斑塊的形成。

皂苷類化合物是薤白活性成分之一，它是由糖或糖的衍生物通過端基碳原子與另一非糖物質(zhì)連接而成，其糖基主要是葡萄糖和半乳糖兩種，也有阿拉伯糖、木糖等[3]。糖是類胡蘿卜素、維生素、芳香物質(zhì)和色素等物質(zhì)的合成原料，參與植物體新陳代謝、能量供給等生理生化過程，并在細(xì)胞轉(zhuǎn)導(dǎo)中起著信號分子的重要作用。薤白皂苷可分為呋甾皂苷和螺甾皂苷兩種，其結(jié)構(gòu)由苷元和糖鏈兩部分組成。甾體皂苷的苷元可分為螺旋甾烷型、呋喃甾烷型、膽甾烷型、糖苷生物堿、強(qiáng)心苷和甾體海蔥苷[3]，通常由1～5 個(gè)單糖組成，而組成糖鏈的單糖主要有葡萄糖、鼠李糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖等[4]。康利平等[5]通過高效液相色譜方法對重樓根莖中的甾體皂苷類化合物構(gòu)效關(guān)系進(jìn)行測定，發(fā)現(xiàn)5 種皂苷類化合物糖鏈中含有鼠李糖、葡萄糖等。糖既是皂苷類化合物合成的前體物質(zhì)，也是調(diào)節(jié)其合成的信號物質(zhì)[6]。乙酰化皂苷在三氟化硼（BF3）的催化下用乙酐裂解，得到完整的全乙酰化寡糖和乙?；碥赵猍4]。Kitagawa等[7]通過光照、四乙酸鉛氧化或乙酸/吡啶選擇性裂解等方法對皂苷類化合物進(jìn)行裂解，可得到完整的苷元及葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸。一些學(xué)者研究表明蘋果著色過程中果皮內(nèi)花青苷與果實(shí)中果糖、葡萄糖、蔗糖及山梨醇等都具有密切的關(guān)系[8-10]。

干燥是食品、藥品加工和貯藏過程中一項(xiàng)必不可少的環(huán)節(jié)。薤白干燥過程多采用常規(guī)曬干方式，但自然干燥生產(chǎn)周期較長、易變質(zhì)、受環(huán)境及天氣影響較大、產(chǎn)品質(zhì)量難控制[11]，可能導(dǎo)致藥材劣變、藥性改變、有效成分損失等問題。目前，有關(guān)薤白干燥加工方法的研究未見報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)以薤白鱗莖為試材，測定干燥處理后薤白鱗莖中皂苷、淀粉、木糖、阿拉伯糖、蔗糖、葡萄糖、半乳糖、鼠李糖、半乳糖醛酸、葡萄糖醛酸的含量，探討鼓風(fēng)干燥、真空干燥、陰干3 種干燥處理對薤白鱗莖活性成分的影響，以期了解不同干燥技術(shù)的加工特性，為薤白皂苷類化學(xué)物與糖類物質(zhì)的相關(guān)關(guān)系和調(diào)控研究提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

薤白鱗莖，直徑1.5～2 cm，采自內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)田，洗去泥沙，并置于篩網(wǎng)上瀝去表面水分。實(shí)驗(yàn)中所有材料均為同一時(shí)間采摘。

蒽酮 上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；乙醇、正丁醇 天津致遠(yuǎn)化工有限公司；香草醛 英國Alfa Aesar公司；硫酸 北京化工廠；高氯酸 天津鑫源化工有限公司；試劑盒 美國ELISA有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

FD-1-50型真空冷凍干燥機(jī) 北京博醫(yī)康實(shí)驗(yàn)儀器有限公司；HHS型恒溫水浴鍋、HPX-9082型鼓風(fēng)烘箱、JC-79-1型電子攪拌器 上海博訊實(shí)業(yè)有限公司；Epoch R型酶標(biāo)儀 美國博騰儀器有限公司；RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海雅榮生化儀器設(shè)備有限公司；TDZ5-WS型冷凍離心機(jī) 上海盧湘儀器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 干燥方法

陰干：稱取100 g薤白鱗莖，均勻平鋪于托盤中，置于室溫（23±2） ℃流動空氣中進(jìn)行干燥，每12 h稱質(zhì)量一次，直至恒質(zhì)量，重復(fù)3 次。

真空干燥：稱取100 g薤白鱗莖，在真空度為0.1 MPa，溫度為60 ℃條件下進(jìn)行干燥，每2 h稱質(zhì)量一次，直至恒質(zhì)量，重復(fù)3 次。

冷凍干燥：稱取100 g薤白鱗莖，將其置于冰柜（-40 ℃）中速凍6 h，然后在真空度為0.1 MPa、冷阱溫度-40 ℃、加熱板溫度60 ℃條件下進(jìn)行冷凍干燥，每2 h稱質(zhì)量一次，直至恒質(zhì)量，重復(fù)3 次。

鼓風(fēng)干燥：稱取100 g薤白鱗莖，均勻平鋪于電熱鼓風(fēng)恒溫干燥箱內(nèi)，分別采用60、80、100 ℃鼓風(fēng)溫度、2.5 m/s風(fēng)速條件對薤白進(jìn)行干燥，每1 h稱質(zhì)量一次，直至恒質(zhì)量為止，重復(fù)3 次。

通過以上干燥處理后樣品的水分含量控制在6%以下，將干燥樣品粉碎后過60 目篩。

1.3.2 測定指標(biāo)

皂苷含量測定采用香草醛-高氯酸比色法[12]；淀粉含量測定采用砷鉬酸比色法[13]；可溶性糖含量測定采用蒽酮比色法[13]；干燥速率的測定參照周國燕等[14]的方法。

1.3.3 試劑盒的制備

取48 孔ELISA試劑盒酶標(biāo)板8塊，每板用作一種糖類的測定，每孔加滿洗滌液350 μL，浸泡1 min，甩盡孔內(nèi)液體，拍干，反復(fù)5 次，保存?zhèn)溆?；配制不同質(zhì)量濃度鼠李糖（0、31.2、62.5、125、250、500 ng/mL）（板1）、葡萄糖醛酸（0、18.7、37.5、75、150、300 ng/mL）（板2）、阿拉伯糖（0、50、100、200、400、800 U/L）（板3）、木糖（0、62.5、125、250、500、1 000 pg/mL）（板4）、半乳糖醛酸（0、7.5、15、30、60、120 pmol/mL）（板5）、半乳糖（0、3.12、6.25、12.5、25、50 ng/mL）（板6）、葡萄糖（0、10、20、40、80、160 mg/mL）（板7）、蔗糖（0、10、20、40、80、160 mg/mL）（板8）的標(biāo)準(zhǔn)液各6 瓶，每板每孔加入50 μL對應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)品，待測樣品孔加入10 μL待測樣品，再加入樣品稀釋液40 μL。隨后每孔加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的檢測抗體50 μL，用封板膜封住，37 ℃水浴鍋溫育60 min。棄去液體，洗板5次。加入底物3,3’,5,5’-四甲基聯(lián)丙胺溶液（3, 3’, 5, 5’-methyl propyl amine，TMB）100 μL，37 ℃避光顯色15 min。加入終止液50 μL，在450 nm波長處測定OD值。

1.4 統(tǒng)計(jì)分析方法

用SAS 9.0進(jìn)行單因素ANOVA方差分析，Duncan’s模型進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同干燥處理對薤白鱗莖單糖含量的影響

表1 不同干燥方法對薤白鱗莖單糖含量及干燥速率的影響Table 1 Influence of different drying methods on monosaccharide contents and drying rates

由表1可知，薤白鱗莖中含有多種單糖，其中鼠李糖含量最高，木糖含量最低。葡萄糖含量在真空冷凍干燥后達(dá)到最高值，為1 556.31 ng/g，經(jīng)100 ℃鼓風(fēng)干燥后，達(dá)最低值，為1 311.19 ng/g。阿拉伯糖含量在不同干燥處理間變化差異相對較小，經(jīng)100 ℃鼓風(fēng)干燥處理后含量最高。鼠李糖含量經(jīng)陰干處理后達(dá)最大值，為5 031.72 ng/g，經(jīng)60 ℃鼓風(fēng)干燥處理后達(dá)最小值，為3 315.19 ng/g，最大值比最小值高出34%。木糖含量在100 ℃鼓風(fēng)處理后達(dá)最大值，為8.95 ng/g，而陰干處理后含量最低，為5.21 ng/g，最大值比最小值高出41.90%。不同干燥方法間半乳糖含量的變化范圍為578.18～813.13 ng/g，差異顯著（P＜0.05），經(jīng)真空冷凍干燥處理后，半乳糖含量達(dá)最大值，經(jīng)陰干處理后達(dá)最小值。在鼓風(fēng)干燥處理過程中，木糖、半乳糖、阿拉伯糖含量隨鼓風(fēng)溫度升高而升高，說明這3 種糖有較好的耐熱性，而葡萄糖、鼠李糖含量則呈現(xiàn)先升高后下降的趨勢。另外，鼓風(fēng)溫度越高，干燥速率越快。

2.2 不同干燥處理對薤白鱗莖蔗糖含量的影響

圖1 不同干燥方法對薤白鱗莖蔗糖含量的影響Fig.1 Influence of different drying methods on sucrose content

由圖1可知，不同干燥處理對薤白鱗莖蔗糖含量影響顯著（P＜0.05）。60 ℃鼓風(fēng)干燥處理后，蔗糖含量達(dá)最大值（40.82 mg/g），顯著高于陰干處理組（32.28 mg/g）（P＜0.05）。真空干燥、真空冷凍干燥、80 ℃鼓風(fēng)干燥、100 ℃鼓風(fēng)干燥處理后，蔗糖含量分別為33.75、30.25、33.96、30.07 mg/g，與陰干處理組差異不顯著（P＞0.05）。不同干燥處理薤白鱗莖蔗糖含量大小順序?yàn)?0 ℃鼓風(fēng)干燥＞80 ℃鼓風(fēng)干燥＞真空干燥＞陰干＞100 ℃鼓風(fēng)干燥＞真空冷凍干燥。

2.3 不同干燥處理對薤白鱗莖葡萄糖醛酸和半乳糖醛酸含量的影響

圖2 不同干燥處理對薤白鱗莖葡萄糖醛酸（A）和半乳糖醛酸（B）含量的影響Fig.2 Influence of different drying methods on the contents of glucuronic acid (A) and galacturonic acid (B)

由圖2可知，不同干燥處理間葡萄糖醛酸和半乳糖醛酸含量差異顯著（P＜0.05）。葡萄糖醛酸和半乳糖醛酸含量變化趨勢基本一致，均在真空干燥處理后達(dá)最大值（分別為5.12 μg/g和300.65 μg/g），顯著高于陰干處理組（分別為3.59 μg/g和246.10 μg/g）（P＜0.05）。在鼓風(fēng)干燥處理中，2 種糖醛酸含量均隨干燥溫度上升呈現(xiàn)先升后降的趨勢，在80 ℃鼓風(fēng)干燥后達(dá)到最大（分別為4.37 μg/g和270.67 μg/g），與60、100 ℃鼓風(fēng)干燥差異顯著（P＜0.05）。不同干燥處理薤白鱗莖葡萄糖醛酸含量大小順序?yàn)檎婵崭稍铮?0 ℃鼓風(fēng)干燥＞真空冷凍干燥＞60 ℃鼓風(fēng)干燥＞100 ℃鼓風(fēng)干燥＞陰干，半乳糖醛酸含量大小順序?yàn)檎婵崭稍铮?0 ℃鼓風(fēng)干燥＞真空冷凍干燥＞60 ℃鼓風(fēng)干燥＞陰干＞100 ℃鼓風(fēng)干燥。

2.4 不同干燥處理對薤白鱗莖淀粉和可溶性糖含量的影響

由圖3A可知，不同干燥處理對薤白鱗莖淀粉含量有一定影響，其中經(jīng)真空冷凍干燥、鼓風(fēng)干燥處理的淀粉含量顯著高于陰干處理（P＜0.05），而真空干燥與陰干處理無顯著差異。在60 ℃鼓風(fēng)處理后，淀粉含量最高，為8.75 mg/g。不同干燥處理對薤白鱗莖內(nèi)可溶性糖無顯著影響（P＞0.05）。

圖3 不同干燥處理對薤白鱗莖淀粉（A）和可溶性糖（B）含量的影響Fig.3 Influence of different drying methods on the contents of starch (A) and soluble sugars (B)

2.5 不同干燥處理對薤白鱗莖皂苷含量的影響

圖4 不同干燥處理對薤白鱗莖皂苷含量的影響Fig.4 Influence of different drying methods on saponion content

由圖4可知，不同干燥處理間皂苷含量變化幅度較大。在鼓風(fēng)干燥處理中，皂苷含量隨著鼓風(fēng)干燥溫度的升高呈先上升后減小趨勢，經(jīng)80 ℃鼓風(fēng)干燥后達(dá)最大值（34.60 mg/g），經(jīng)真空干燥處理后，皂苷含量最小，為8.92 mg/g。不同干燥處理皂苷含量大小順序?yàn)?0 ℃鼓風(fēng)干燥＞60 ℃鼓風(fēng)干燥＞陰干＞100 ℃鼓風(fēng)干燥＞真空冷凍＞真空干燥。

2.6 不同干燥處理對薤白鱗莖干燥能耗的影響

圖5 不同干燥處理對薤白鱗莖干燥能耗的影響Fig.5 Influence of different drying methods on energy consumption

干燥能耗是評定干燥工藝的一個(gè)重要指標(biāo)，它是指鼓風(fēng)干燥過程中的蒸汽消耗、風(fēng)機(jī)消耗和真空干燥過程中真空泵的動能消耗、冷凍機(jī)消耗之和。由圖5可知，不同干燥處理的干燥能耗差異顯著（P＜0.05），其大小表現(xiàn)為100 ℃鼓風(fēng)干燥＞80 ℃鼓風(fēng)干燥＞真空冷凍干燥＞60 ℃鼓風(fēng)干燥＞真空干燥。

3 討 論

薤白鱗莖的不同干燥處理過程中，溫度對其干燥速率、干燥能耗的影響較大，干燥溫度越高，干燥用時(shí)越短，干燥能耗越小。由于薤白鱗莖主要藥用成分為皂苷，因此以皂苷為主要考察指標(biāo)來衡量干燥方法。曾珍等[15]研究發(fā)現(xiàn)100 ℃烘干柴胡皂苷a和柴胡皂苷d的質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別升高了98.62%和107.72%，本實(shí)驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)高溫烘干有利于皂苷的保存。冷凍干燥對植物中易高溫氧化分解成分有保護(hù)作用[16]，但本實(shí)驗(yàn)中冷凍干燥對樣品中有效成分的保留并沒有體現(xiàn)優(yōu)勢，這可能與冷凍干燥的技術(shù)特點(diǎn)和具體工藝有關(guān)。低溫造成了植物組織細(xì)胞局部水分快速散失，細(xì)胞原位水分的喪失形成了空腔，而空腔中的空氣并沒有隨之排出，且細(xì)胞組織中的酶沒有被滅活，因此，可以繼續(xù)氧化其中的有效成分，造成了植物組織中有效成分的分解。目前，冷凍干燥對薤白中有效成分的影響研究還未見有詳細(xì)報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)80 ℃鼓風(fēng)干燥有利于對主要有效成分皂苷、葡萄糖[17]、鼠李糖的保留，而不同干燥處理對阿拉伯糖、可溶性糖含量影響不大，這與張永清等[18]研究相一致。從有效成分保留以及加工特性方面考慮，80 ℃鼓風(fēng)干燥可以作為規(guī)?；稍镛椎淖罴逊椒ā?/p>

蔬菜中糖的組分和含量是衡量蔬菜風(fēng)味品質(zhì)的重要指標(biāo)。據(jù)研究報(bào)道，香椿中的糖以可溶性糖和膳食纖維為主[19]；南瓜以葡萄糖為主[20]；玉米皮中含有大量的阿拉伯糖及低聚糖[21]；甜菜中蔗糖含量最高，且含有少量半乳糖[22]；洋蔥中葡萄糖和果糖含量較高[23]；三七根以蔗糖為主。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)薤白鱗莖含有大量的蔗糖、葡萄糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸，與夏新奎等[24]的研究結(jié)果相一致。

[1] 《中國藥典》編審組. 中國藥典(一部)[M]. 北京: 中國醫(yī)藥科技出版社, 2010: 353.

[2] 《中藥辭海》編審組. 中藥辭海(第三卷)[M]. 北京: 中國醫(yī)藥科技出版社, 1997: 1546-1549.

[3] 程書彪. 薤白中皂苷類化學(xué)成分的研究[D]. 杭州: 浙江大學(xué), 2013: 3-4.

[4] 李盛鈺. 甾體皂苷糖鏈結(jié)構(gòu)修飾及抗腫瘤構(gòu)效關(guān)系[D]. 長春: 東北師范大學(xué), 2007: 2.

[5] 康利平, 馬百平, 張潔, 等. 重樓中甾體皂苷的分離與結(jié)構(gòu)鑒定[J].中國藥物化學(xué)雜志, 2005, 5(1): 25-30.

[6] SMEEKENS S. Sugar-induced signal transduction in plants[J]. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 2000, 51: 49-81.

[7] KITAGAWA I, YOSHIKAWA M, IM K S, et al. Saponin and sapogenol XIX. selective cleavage of the glucuronide linkage in saponin by lead tetraacetate oxidation followed by alkali treatment[J]. Chemical Pharmaceutical Bulletin, 1977, 25(4): 657-666.

[8] 趙宗方, 謝嘉寶, 吳桂法, 等. 富士蘋果果皮花青素發(fā)育的相關(guān)因素分析[J]. 果樹學(xué)報(bào), 1992, 9(3): 134-137.

[9] 張?jiān)? 關(guān)軍鋒, 楊建民, 等. 李果實(shí)發(fā)育過程中果皮色素、糖和總酚含量及多酚氧化酶活性的變化[J]. 果樹學(xué)報(bào), 2004, 21(1): 17-20.

[10] HARA M, OKI K, HOSHINO K, et al. Effects of sucrose on anthocyanin production in hypocotyl of two radish (Raphanus sativus) varieties[J]. Plant Biotechnology, 2004, 21(5): 401-405.

[11] 陳鑫. 不同干燥方法對姬松茸干品品質(zhì)特性的研究[D]. 福州: 福建農(nóng)林大學(xué), 2008: 8.

[12] 韓秋敏, 李登超, 黃亞東, 等. 淮山藥薯蕷皂苷測定方法的研究[J].食品工業(yè)科技, 2011, 32(12): 494-496.

[13] 李合生. 植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù)[M]. 北京: 高等教育出版社, 2000: 194-202.

[14] 周國燕, 陳唯實(shí), 葉秀東, 等. 獼猴桃熱風(fēng)干燥與冷凍干燥的實(shí)驗(yàn)研究[J]. 食品科學(xué), 2007, 28(8): 164-167.

[15] 曾珍, 王晶, 賈凌云, 等. 不同干燥和炮制方法對北柴胡皂苷類化合物的影響[J]. 沈陽藥科大學(xué)學(xué)報(bào), 2012, 29(8): 650-655.

[16] 彭菊艷, 龔月樺, 王俊儒, 等. 不同干燥技術(shù)對金銀花藥用品質(zhì)的影響[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2006, 26(10): 2044-2050.

[17] 尹愛群, 王磊, 張艷華. 不同干燥方法對桑葚中含糖量及pH值的影響[J]. 中國藥師, 2005, 8(6): 519-520.

[18] 張永清, 鄭云峰, 時(shí)公營. 干燥條件對金銀花品質(zhì)的影響[J]. 中國中醫(yī)藥科技, 1999, 6(4): 243-244.

[19] 何丹. 8個(gè)種源香椿的營養(yǎng)動態(tài)變化分析[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2006: 9.

[20] 揚(yáng)子琴. 南瓜果實(shí)營養(yǎng)物質(zhì)累積及相關(guān)酶變化規(guī)律研究[D]. 鄭州:河南農(nóng)業(yè)大學(xué), 2008: 7.

[21] 朱易佳, 歐仕益. 復(fù)合酶水解玉米皮制備阿魏酸和低聚糖的研究[J].食品研究開發(fā), 2007, 28(5): 68-71.

[22] 周仁喜. 甜菜各葉片對根塊增長、根內(nèi)糖分積累作用的研究[J]. 作物學(xué)報(bào), 1993, 19(5): 436-440.

[23] 傅冬和, 張影, 曾婷玉, 等. 洋蔥水溶性多糖的提取工藝研究[J]. 食品與機(jī)械, 2013, 29(1): 15-18.

[24] 夏新奎, 楊海霞, 李純, 等. 薤白多糖的分離純化及組成分析[J]. 食品工業(yè)科技, 2010, 31(1): 244-247.

Influence of Different Drying Methods on Contents of Saponions and Sugars in Allium macrotemon Bunge. Bulbs

GUAN Feng, HAO Li-zhen*, SHI Bo, ZHANG Feng-lan, YANG Zhong-ren
(Inner Mongolia Autonomous Region Key Laboratory of Wild Peculiar Vegetable Germplasm Resource and Germplasm Enhancement, College of Agriculture, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010019, China)

Comparison of three different drying methods, air blowing, vacuum drying and shade drying was carried out for Allium macrotemon Bunge. bulbs. For this, we determined the contents of saponion and sugar in the dried bulbs as well as the drying rate and energy consumption for the drying methods. The results showed that sucrose was the most abundant and xylopyranose the least abundant sugar in the dried bulbs of Allium macrotemon Bunge.. The content of sapinion reached the maximum level of 34.60 mg/g in the air-blowing dried sample at 80 ℃ and the maximum sucrose content of 40.82 mg/g was also attained by this drying method at 60 ℃. However, vacuum drying resulted in the maximum levels of glucuronic acid and galacturonic acid (5.12 and 300.65 μg/g, respectively). The contents of arabinose and soluble sugars were relatively stable among different drying methods. Higher drying temperature led to higher drying rate. Considering processing characteristics and retention of effective components, air drying at 80 ℃ is the best drying method for Allium macrotemon Bunge. bulbs.

Allium macrotemnon Bunge. bulbs; drying methods; spanion; sugar

TS255.3

A

1002-6630（2014）17-0089-05

10.7506/spkx1002-6630-201417018

2014-01-31

公益性行業(yè)（農(nóng)業(yè)）科研專項(xiàng)（201203004）

關(guān)峰（1986—），女，博士研究生，研究方向?yàn)橐吧卟朔N質(zhì)資源與種質(zhì)創(chuàng)新。E-mail：guanfeng_0813@163.com

*通信作者：郝麗珍（1960—），女，教授，博士，研究方向?yàn)橐吧卟朔N質(zhì)資源與種質(zhì)創(chuàng)新。E-mail：Haolizhen_1960@163.com