吳少杰 , 馬桂珍 王淑軍 陳 麗 , 王淑芳
(1. 淮海工學(xué)院 海洋學(xué)院, 江蘇 連云港 222005; 2. 江蘇省海洋生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 淮海工學(xué)院, 江蘇 連云港 222005; 3. 江蘇海洋資源開發(fā)研究院, 江蘇 連云港 222001)
β-葡萄糖苷酶(EC 3.2.1.21)是一類能夠水解結(jié)合于末端的非還原性β-D-葡萄糖苷鍵, 同時釋放出β-D-葡萄糖和相應(yīng)配基的酶。
β-葡萄糖苷酶廣泛存在于自然界中, 它可以來源于植物、微生物, 也可來源于動物, 有著多種生理活性和應(yīng)用前景。β-葡萄糖苷酶參與生物體的糖代謝, 對維持生物體正常生理功能起著重要作用。哺乳動物和人類溶酶體內(nèi)β-葡糖苷酶的缺陷, 將使葡糖腦苷脂貯積在各器官的單核巨噬細(xì)胞中, 累及骨髓、肝脾、骨骼及神經(jīng)系統(tǒng), 形成“戈謝氏病”, 而應(yīng)用基因重組β-葡糖苷酶治療此病已獲得成功[1]。在藥物研究與開發(fā)上, 由于大多數(shù)中草藥活性成分都含有β-葡萄糖苷基, 因此,β-葡萄糖苷酶廣泛地用于天然藥物的生物轉(zhuǎn)化與合成[2-3]。β-葡萄糖苷酶也是纖維素降解酶系的重要組成部分, 但在微生物中分泌量少、活力低, 是纖維素酶解的限速酶、成為纖維素酶解的瓶頸環(huán)節(jié); 通過人工添加外源β-葡萄糖苷酶有助于提高纖維素的水解效率[4]。此外,β-葡萄糖苷酶能將果、蔬、茶等主、副食品中的風(fēng)味前體物質(zhì)水解為具有濃郁天然風(fēng)味的香氣物質(zhì), 因而被稱為“食品風(fēng)味酶”[5]。目前, 我國尚未具備大規(guī)模生產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的條件; 對各種來源的β-葡萄糖苷酶開展研究, 具有重要的經(jīng)濟(jì)和應(yīng)用價值。
據(jù)報(bào)道, 幾乎所有的β-葡萄糖苷酶都是酸性酶類, 其最適反應(yīng)pH一般低于7.0(大多數(shù)在pH 3.5~5.5)[6], 這必然會限制這種酶在某些方面的應(yīng)用。目前, 中性或堿性β-葡萄糖苷酶僅有個別報(bào) 道[7-8], 且大都是來自于芽孢桿菌類。本文報(bào)道一株海洋放線菌株HY-G及其所產(chǎn)生的中性胞內(nèi)β-葡萄糖苷酶。
海洋擬諾卡氏菌(Nocardiopsissp.)菌株HY-G, 由本實(shí)驗(yàn)室分離自海洋環(huán)境, 目前保存在中國典型培養(yǎng)物保藏中心(保藏號: CCTCC M 2010126)。p-NPG: SIGMA公司; 蛋白質(zhì)標(biāo)樣: 江蘇碧云天生物技術(shù)有限公司; 硅膠薄層層析板: 安徽皖西硅源材料廠; 各種凝膠色譜填料均來自Pharmacia公司; 其他藥品均為分析純。
CR22G高速冷凍離心機(jī): 日本日立; SPX-250B生化培養(yǎng)箱: 上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠; HZQ-F160全溫振蕩培養(yǎng)箱: 舟山市定海區(qū)海源儀器廠; BANDELIN HD2200型超聲波細(xì)胞破碎儀: 寧波新芝生物科技股份有限公司; 680型酶標(biāo)儀: Bio-rad公司。BioLogic DuoFlow快速蛋白純化系統(tǒng): Bio-rad公司。
1.3.1 產(chǎn)酶培養(yǎng)條件與胞內(nèi)酶的提取
產(chǎn)酶培養(yǎng)條件與胞內(nèi)酶的提取見文獻(xiàn) [3]。
1.3.2 酶活力測定
以p-NPG為底物, 酶液和5 mmol/L的p-NPG溶液各50 μL, 置40℃水浴保溫10 min后, 加入1 mol/L NaOH 100 μL終止反應(yīng), 立即用酶標(biāo)儀測定A400。酶活力定義為: 每分鐘催化生成1 μmol對硝基苯酚所需的酶量。
1.3.3 酶的分離純化
1.3.3.1 硫酸銨分部鹽析
4℃條件下, 加入硫酸銨粉末, 分別至飽和度40%、60%、80%和100%, 靜置1 h后12 000 r/min離心20 min, 分別收集沉淀, 用pH 6.8的磷酸緩沖液溶解沉淀, 4℃下透析24 h后, 按1.3. 2的方法測定不同飽和度下的A400以確定最佳鹽析飽和度。
1.3.3.2 Phenyl-Sepharose疏水層析
用1.7 mol/L的硫酸銨溶液平衡Phenyl-Sepharose疏水層析柱; 將經(jīng)過40%飽和度鹽析并除去沉淀后的粗酶液直接上柱分離。用快速蛋白純化系統(tǒng)進(jìn)行梯度洗脫, 其中A泵為1.7 mol/L的硫酸銨溶液, B泵為0.01 mol/L磷酸緩沖液(pH 6.8), 流動相流速1 mL/s。洗脫方式為: 1.7 mol/L的硫酸銨溶液40 mL、梯度(A泵0%~100%)洗脫70 mL, 磷酸緩沖液(10 mmol/L, pH6.8)75mL, 最后用1.7 mol/L的硫酸銨溶液重新平衡層析柱。收集A280下的各峰并檢測酶活性。
1.3.3.3 DEAE-Sepharose離子交換層析
用10 mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH 6.8)平衡柱子后, 將Phenyl-Sepharose疏水層析柱上收集的活性組分上樣。用快速蛋白純化系統(tǒng)進(jìn)行梯度洗脫, 其中A泵為10 mmol/L磷酸緩沖液(pH6.8), B泵為1 mol/L NaCl溶液, 流動相流速1 mL/s。洗脫方法為: 50 mL 10 mmol/L磷酸緩沖液(pH6.8)、梯度(A泵0%~100%)130 mL、1 mol/L NaCl溶液20 mL, 最后用10 mmol/L磷酸緩沖液(pH6.8)重新平衡層析柱。收集A280下的各峰并檢測酶活性。
1.3.3.4 Superdex 200 HR 10/300 mm凝膠色譜
用10 mmol/L磷酸緩沖液(pH 6.8)平衡柱子。將DEAE-Sepharose陰離子交換層析的活性組分經(jīng)透析后, 上樣, 用10 mmol/L磷酸緩沖液(pH 6.8)洗脫, 收集A280下的各峰并檢測酶活性。用標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)(含甲狀腺球蛋白, MW 669.0 kD、鐵蛋白, MW 440.0 kD、牛血清白蛋白, MW 67.0 kD、β-乳球蛋白, MW 35.0 kD、核糖核苷酸酶A, MW 13.7 kD、細(xì)胞色素C, MW 13.6 kD、抑肽酶, MW 6.5 kD)作為標(biāo)準(zhǔn)蛋白, 在同樣條件下洗脫, 以估計(jì)β-葡萄糖苷酶的分子質(zhì)量。
1.3.3.5 SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳
分離膠(水1.6 mL, 1.5mol/L pH8.8 Tris-HCl 1.3 mL, 10% SDS溶液0.05 mL, 30%丙烯酰胺2 mL, TEMED 0.002 mL, 10%APS 0.05 mL)、濃縮膠(水3.4 mL pH6.8 0.5 mol/L Tris-HCl 0.63 mL, 10%SDS 0.05 mol/L, 30%丙烯酰胺0.83 mL, TEMED 0.005mL, 10%APS 0.05mL)。在Tris-甘氨酸電泳緩沖液中, 80~100V電泳一定時間。電泳結(jié)束后, 用考馬斯亮藍(lán)染液染色。
1.3.4 菌株的分子鑒定
用上海賽百盛?細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒提取細(xì)菌基因組DNA, -20℃保存?zhèn)溆谩CR引物為通用引物, 序列為: F27 (5’-AGAGTTTGATCCTGGCT- CAG-3’)、R1492 (5’- TACGGCTACCTTGTTACGA- CTT-3’)。PCR反應(yīng)體系(50 μL): Tag酶(大連寶生物)0.25 μL; Buffer(不含Mg2+) 5 μL; Mg2+溶液3 μL; dNTP 4 μL; 模板DNA 1 μL; 引物F27和引物R1492各1 μL。PCR反應(yīng)條件: 94℃預(yù)變性2 min, 然后94℃變性30 s、55℃退火45 s、72℃延伸45 s(循環(huán)33次), 最后72℃延伸7 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳分離, 然后用江蘇碧云天生物技術(shù)有限公司的DNA凝膠回收試劑盒純化回收。將純化后的PCR產(chǎn)物送到上海生工生物工程有限公司測序。使用DNAMAN 6.0軟件并采用最大似然法構(gòu)建菌株的系統(tǒng)進(jìn)化樹, 進(jìn)化樹經(jīng)過1000次自舉分析。
通過不同飽和度的硫酸銨分級鹽析后離心得到沉淀; 沉淀經(jīng)透析后用pH7.0的硫酸緩沖液稀釋成相同體積, 然后測定酶活力(以A400計(jì)), 得到的結(jié)果如表1所示。
由表中可見, 在40%的硫酸銨飽和度下, 沉淀沒有酶活力, 說明酶蛋白保留在溶液中, 沒有被沉淀下來; 而到了60%的飽和度, 酶蛋白開始沉淀出來; 到了80%的飽和度, 大部分酶蛋白都已經(jīng)沉淀。考慮到下一步將采用疏水柱進(jìn)行純化, 故將硫酸銨鹽析的飽和度選為40%(相當(dāng)于硫酸銨濃度1.7 mol/L)。在該飽和度下, 離心去除沉淀后, 上清液可直接用疏水柱分離。
表1 不同硫酸銨飽和度下沉淀的酶活力(A400) Tab. 1 Enzyme activity of deposits with different saturation of ammonium sulfate(A400)
經(jīng)過硫酸銨鹽析和疏水、離子交換及分子篩層析分離, 將各個步驟下獲得的酶蛋白分別電泳, 電泳圖譜如圖1(左)所示??梢? 經(jīng)過硫酸銨鹽析和各種柱層析分離, 最終獲得了凝膠電泳單一條帶的β-葡萄糖苷酶。通過與蛋白Marker比較計(jì)算, 得出其估計(jì)分子質(zhì)量為43.3 kD。
圖1 各純化步驟對酶的純化效果(左)及酶蛋白分子質(zhì)量估測(右) Fig. 1 The purity of β-glucosidase at different steps (left) and its molecular weight (right)
在進(jìn)行凝膠柱層析分離的同時, 也能進(jìn)行蛋白質(zhì)分子質(zhì)量的估算。在進(jìn)行Superdex 200 HR 10/300凝膠柱分離時, 得出β-葡萄糖苷酶活性峰的洗脫體積為15.1 mL。通過與標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)的洗脫體積相比較, 得出如表2中所示的洗脫體積與蛋白質(zhì)分子質(zhì)量(MW)的對應(yīng)關(guān)系。上述數(shù)值采用Origin 7.0進(jìn)行線性擬合分析, 得出了蛋白質(zhì)分子質(zhì)量的對數(shù)“l(fā)g(MW)”與洗脫體積“V”的線性擬合方程為: lg (MW) = 5.29067 - 0.23231V(R2= 0.98780)。根據(jù)此方程, 計(jì)算出海洋放線菌株HY-G產(chǎn)生的β-葡萄糖苷酶分子量為45.0 kD。上述估計(jì)值和通過SDS凝膠電泳估計(jì)的分子量(43.3 kD)相近。
通過上述兩種方法得到的分子質(zhì)量結(jié)果相似, 表明海洋放線菌株HY-G產(chǎn)生的β-葡萄糖苷酶為單聚體, 不含亞基, 其分子質(zhì)量為43.3~45.0 kD。
2.3.1 最適pH和最適溫度
稱取一定量凍干的酶, 分別用pH 4.0~11.0的各種緩沖液溶解, 分別測定酶活力, 結(jié)果如圖2所示。海洋放線菌株HY-G產(chǎn)生的β-葡萄糖苷酶在以p-NPG為底物時, 最適pH都為pH 7.0~8.0。據(jù)報(bào)道, 幾乎所有的β-葡萄糖苷酶都屬于酸性酶類, 其最適反應(yīng)pH值一般低于7.0(大多數(shù)在pH 3.5~5.5), 因而限制了其在某些方面的應(yīng)用。中性或堿性β-葡萄糖苷酶迄今僅有個別報(bào)道, 且都是來自于芽孢桿菌類。而從海洋擬諾卡氏菌株HY-G中分離到的β-葡萄糖苷酶, 最適作用pH偏堿性, 因此可能是一種新型的β-葡萄糖苷酶。取pH 7.0的酶液, 分別在20~70℃下測定酶活力??梢? 其最適溫度為40℃, 同時, 在30~50℃范圍內(nèi), 酶活力變化不大(圖2)。
2.3.2 pH穩(wěn)定性和溫度穩(wěn)定性
為了測定酶的pH穩(wěn)定性, 將不同pH值(pH 4.0~11.0)的酶液在4℃冰箱中保存24 h后, 調(diào)整到pH7.0, 然后分別測定殘余酶活力。為了測定酶的溫度穩(wěn)定性, 取pH 7.0的酶液, 分別在30~80℃下保溫30 min后, 測定殘余酶活力。結(jié)果如下圖所示。可見, 該酶在pH 6.0~7.0時最穩(wěn)定, pH<5或pH >8時, 酶活力迅速下降; 在70℃下30 min仍能保存56%的酶活力, 說明該酶具有較好的耐熱性。
表2 蛋白質(zhì)分子量與Superdex 200凝膠柱洗脫體積的關(guān)系及β-葡萄糖苷酶的分子量估算值 Tab. 2 The relationship between MW and elution volume, and the estimated MW of the β-glucosidase
圖2 酶催化的最適pH和最適溫度(▲ 最適pH; ■ 最適溫度) Fig. 2 The optimal pH and temperature of the β-glucosidase (▲ optimal pH; ■ optimal temperature)
圖3 酶的pH和溫度穩(wěn)定性(▲pH 穩(wěn)定性; ■溫度穩(wěn)定性) Fig. 3 The pH and temperature stability of the β-glucosidase (▲ pH stability; ■ temperature stability)
2.3.3 金屬離子對酶活力的影響
采用含有濃度為10 mmol/L不同金屬離子的緩沖液(pH 7.0), 然后按照3.1.2的方法測定酶活力。以不添加金屬離子的酶反應(yīng)體系為空白對照(相對酶活力為100%), 確定各金屬離子對酶活性的抑制或激活作用, 結(jié)果見表3。
表3 金屬離子對酶活力的影響(n = 3) Tab. 3 The effects of ions on the activity of the β-glucosidase
由表中可見, Fe2+、Mg2+、Pb2+、Na+、Fe3+對該酶活性有促進(jìn)作用, 其中Fe2+、Fe3+促進(jìn)作用較大; Ca2+、Zn2+、Ag+、Cu2+、K+對該酶活性有抑制作用, 其中Zn2+、Ag+、Cu2+抑制作用較大。
經(jīng)過PCR擴(kuò)增, 得到了海洋擬諾卡氏菌株HY-G近全長16 S rRNA基因片段。通過測序, 得出了其核酸序列。上述核酸序列與GenBank上的序列進(jìn)行比對分析, 發(fā)現(xiàn)該菌株HY-G與Norcardiopsis菌屬的許多菌株序列相似度都在98%以上, 其中與塘沽擬諾卡氏菌(Norcardiopsis tangguensis)和埃及擬諾卡氏菌(Norcardiopsis aegyptia)的序列相似度都為99.9%(1393/1395)。通過構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹進(jìn)行進(jìn)一步分析(圖4), 可以看出, 菌株HY-G也與菌株Norcardiopsis tangguensis、Norcardiopsis aegyptia也聚成了一簇, 支持度為100%, 表明與這兩株菌的親緣關(guān)系較近。
β-葡萄糖苷酶廣泛存在于自然界中。目前已報(bào)道的β-葡萄糖苷酶中, 中性或堿性酶非常罕見, 下表列出了目前報(bào)道的幾種不同來源的中性或堿性β-葡萄糖苷酶??梢钥闯? 這幾種中性或堿性β-葡萄糖苷酶都是來自于細(xì)菌且多數(shù)都是來自芽孢桿菌, 如嗜熱采油芽孢桿菌(Geobacillus thermodenitrificans)、環(huán)狀芽胞桿菌嗜堿性亞種(Bacillus circulanssubsp.alkalophilus)、枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)等, 目前, 放線菌未見產(chǎn)生中性或堿性β-葡萄糖苷酶的報(bào)道。在擬諾卡氏菌中, 有關(guān)于擬諾卡氏菌產(chǎn)生 耐熱型α-淀粉酶[11]、堿性蛋白酶[12]和絲氨酸內(nèi)肽酶[13]等報(bào)道, 但未見該屬微生物產(chǎn)生β-葡萄糖苷酶的報(bào)道。該菌株產(chǎn)生的β-葡萄糖苷酶, 分子質(zhì)量與其他中性或堿性β-葡萄糖苷酶相近, 最適溫度也相差不大, 但與芽孢桿菌所不同的是, 海洋擬諾卡氏菌株HY-G中的β-葡萄糖苷酶是屬于胞內(nèi)酶。
圖4 海洋放線菌菌株HY-G的系統(tǒng)進(jìn)化分析 Fig. 4 Phylogenetic tree showing the relationships among strain HY-G and Nocardiopsis species.
表4 目前報(bào)道的幾種中性或堿性β-葡萄糖苷酶 Tab. 4 Features of some reported neutral or alkaline β-glucosidase
擬諾卡氏菌是一種比較稀有的放線菌, 目前已經(jīng)鑒定的有30余種(NCBI - taxonomy, 2012)。海洋擬諾卡氏菌株HY-G分離自河北樂亭海灘, 由于其地理位置與天津塘沽很近, 并且它們的16S rRNA基因也高度相似, 因此該菌株與塘沽擬諾卡氏菌的關(guān)系尚需進(jìn)一步確認(rèn)。
海洋高鹽堿性這一特殊環(huán)境, 可能造成海洋微生物能產(chǎn)生不常見的中性或堿性糖苷酶, 例如堿性淀粉酶[14]、堿性纖維素酶[15]等; 海洋擬諾卡氏菌株HY-G能產(chǎn)生堿性β-葡萄糖苷酶, 可能也與其所生存的海洋環(huán)境有關(guān)。由于大多數(shù)普通β-葡萄糖苷酶在pH>7時活力較低, 而中性或堿性β-葡萄糖苷酶在這種情況下具有最佳的水解活力, 因此能夠拓展β-葡萄糖苷酶的應(yīng)用場合。海洋擬諾卡氏菌株HY-G具有營養(yǎng)需求簡單、培養(yǎng)條件溫和、容易形成菌絲體顆粒而便于收獲胞內(nèi)酶等特點(diǎn); 其產(chǎn)生的β-葡萄糖苷酶是一種中性酶, 不僅酶活力較高, 而且酶分子質(zhì)量較小, 便于采用基因工程手段進(jìn)行克隆和高效表達(dá)。因此, 該菌株及其所產(chǎn)的酶具有良好的開發(fā)應(yīng)用前景。
[1] 邵金輝, 韓金祥, 朱有名, 等.β-葡萄糖苷酶在工農(nóng)醫(yī)領(lǐng)域的應(yīng)用 [J]. 生命的化學(xué), 2005, 25(1): 22- 24.
[2] 劉欣, 崔昱, 楊凌. 糖苷酶與藥物研發(fā) [J]. 天然產(chǎn)物研究與開發(fā), 2005, 17(2): 223- 228.
[3] 吳少杰, 焦豫良, 朱強(qiáng), 等. 海洋擬諾卡氏菌株HY-G轉(zhuǎn)化大豆異黃酮苷發(fā)酵條件的優(yōu)化 [J]. 食品科學(xué), 2011, 32(7): 273- 278.
[4] Markku S, Juha K P, Erkko Y, et al. Enzymatic properties and intracellular localization of the novelTrichoderma reeseiβ-glucosidase BGLII (Cel1A) [J]. Appl Environ Microbiol, 2002, 68(9): 4546-14553.
[5] 潘利華, 羅建平.β-葡萄糖苷酶的研究及應(yīng)用進(jìn)展 [J]. 食品科學(xué), 2006, 27(12): 803- 807.
[6] 王志江, 魏紅福.β-葡萄糖苷酶的研究 [J]. 飼料工業(yè), 2006, 27(12): 20- 22.
[7] Paavilainen S, Hellman J, Korpela T. Purification, characterization, gene cloning, and sequencing of a newβ-glucosidase fromBacillus circulanssubsp.Alkalophilus[J]. Appl Environ Microbiol, 1993, 59(3): 927- 932.
[8] 陳紅漫, 趙璐, 楊佳影. 一株產(chǎn)胞外中性β-葡萄糖苷酶菌株的鑒定及酶學(xué)特性研究 [J]. 食品科學(xué), 2009, 30(15): 160- 163.
[9] Singh A, Hayashi K. Construction of Chimericβ-glucosidases with improved enzymatic properties [J]. J Biol Chem, 1995, 270(37): 21982- 21933.
[10] 馮露, 王磊, 袁剛, 等. 一種嗜熱堿性β-葡萄糖苷酶及其編碼基因. 中國專利, 200510116748.9, 2006.
[11] Stamford T L M, Stamford N P, Coelho L C B B, et al. Production and characterization of a thermostable α-amylase fromNocardiopsissp. endophyte of yam bean [J]. Bioresource Technol, 2001, 76:137- 141.
[12] Moreira K A, Porto T S, Teixeira M F S, et al. New alkaline protease fromNocardiopsissp.: partial purification and characterization [J]. Process Biochem, 2003, 39:67- 72.
[13] Dixit V S, Pant A. Comparative characterization of two serine endopeptidases fromNocardiopsissp. NCIM 5124 [J]. BBA-Gen Subjects, 2000, 1523:261- 268.
[14] 戴世鯤, 鄭天凌, 王曉穎, 等. 深海產(chǎn)低溫堿性淀粉酶菌Halomonas sp.W7的篩選及發(fā)酵條件研究. 海洋科學(xué), 2007, 31(11): 27-32.
[15] 徐慶強(qiáng), 張志明, 王延明, 等. 產(chǎn)堿性纖維素酶海洋細(xì)菌的篩選、鑒定及酶學(xué)性質(zhì)研究. 海洋科學(xué), 2009, 33(7): 1-5.