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    沉默F(xiàn)OXC2 對TGF-β1 誘導(dǎo)的MCF-7 細(xì)胞上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化的逆轉(zhuǎn)作用

    2013-12-23 06:26:52屈洪波吳誠義范原銘韓明利湯為學(xué)
    中國病理生理雜志 2013年5期
    關(guān)鍵詞:上皮質(zhì)粒標(biāo)志物

    屈洪波, 吳誠義△, 范原銘, 韓明利, 陳 鑫, 湯為學(xué)

    (1重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院內(nèi)分泌外科,2 重慶市神經(jīng)病學(xué)重點實驗室,重慶400016)

    上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)指的是上皮細(xì)胞失去其上皮樣表型,獲得間質(zhì)樣表型的過程,其相反過程稱之為間質(zhì)-上皮轉(zhuǎn)化(mesenchymal-epithelial transition,MET),兩者不僅在胚胎發(fā)育、損傷修復(fù)及組織歸巢中發(fā)揮重要作用,也在腫瘤侵襲及轉(zhuǎn)移中起著關(guān)鍵性作用[1-3]。2007 年,Mani 等[4]發(fā)現(xiàn)叉頭框C2(forkhead box C2,F(xiàn)OXC2)通過調(diào)控EMT 參與乳腺癌侵襲轉(zhuǎn)移,可能是基底樣乳腺癌預(yù)后判斷的一種重要分子標(biāo)志物。類似的,Zagouri 等[5]發(fā)現(xiàn)MET 現(xiàn)象在三陰乳腺癌中頻繁出現(xiàn)可能是其不良預(yù)后的表現(xiàn)。最近,Yu 等[6]研究證實循環(huán)腫瘤細(xì)胞通過在EMT 和MET 中動態(tài)表達(dá)轉(zhuǎn)化生長因子β1(transforming growth factor β1,TGF-β1)信號分子和FOXC1 轉(zhuǎn)錄因子,從而逃避化療的殺傷作用。目前,有關(guān)轉(zhuǎn)錄因子FOXC2 在乳腺癌EMT 中的作用及機制的研究尚未見報道。因此,我們擬建立TGF-β1誘導(dǎo)的乳腺癌MCF-7 細(xì)胞EMT模型和FOXC2 基因RNA 干擾慢病毒表達(dá)載體,探討沉默F(xiàn)OXC2 表達(dá)對TGF-β1誘導(dǎo)的MCF-7 細(xì)胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化的逆轉(zhuǎn)作用及對乳腺癌侵襲性的影響,為針對于乳腺癌的靶向治療提供新的線索。

    材 料 和 方 法

    1 材料

    人乳腺癌細(xì)胞系MCF-7 購自中國科學(xué)院上海細(xì)胞庫,慢病毒包裝質(zhì)粒:pGCL-GFP-LV、pHelper1.0 及pHelper2.0 購自上海吉凱基因公司;大腸桿菌DH5α由重慶市神經(jīng)病學(xué)實驗室保存;限制性內(nèi)切酶Age I和EcoR I、瓊脂糖凝膠回收試劑盒及T4 連接酶(NEB);質(zhì)粒DNA 提取試劑盒(Qiagen),Lipofectamine 2000(Invitrogen);人重組TGF-β1(Pepro-Tech);單克隆山羊抗人FOXC2 和單克隆鼠抗人上皮性鈣黏蛋白(E-cadherin,E-cad)、緊密連接蛋白1(claudin-1,CLDN1)、纖維連接蛋白1(fibronectin-1,F(xiàn)N1)及β-actin 抗體(Santa Cruz);FITC 標(biāo)記兔抗鼠II 抗和TRITC 標(biāo)記的兔抗鼠II 抗(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司);總蛋白提取試劑盒、BCA 蛋白定量試劑盒、DAPI 染色液及HRP 標(biāo)記的兔抗鼠II 抗和兔抗山羊II 抗(碧云天生物技術(shù)研究所);總RNA提取試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、Taq DNA 聚合酶及DNA marker(大連寶生物工程有限公司);PCR 引物設(shè)計及合成(上海生工生物工程公司);Transwell 小室(Millipore),胎牛血清及DMEM 高糖培養(yǎng)基(Gibco)。

    2 方法

    2.1 細(xì)胞培養(yǎng)和MCF-7 細(xì)胞EMT 模型的建立 乳腺癌MCF-7 細(xì)胞在37 ℃、5%CO2及飽和濕度條件下培養(yǎng),用含有10% 胎牛血清、1 ×105U/L 青霉素、100 mg/L 慶大霉素及5 U/L 胰島素的DMEM 高糖培養(yǎng)基培養(yǎng)。用0.25% 胰酶消化傳代,待細(xì)胞生長至板底70% ~80%后,換成無血清培養(yǎng)基饑餓過夜,再加入含有5 μg/L TGF-β1的高糖DMEM 培養(yǎng)基誘導(dǎo)MCF-7 細(xì)胞EMT 發(fā)生,期間適時加入含有TGFβ1的完全培養(yǎng)基維持間質(zhì)狀態(tài),倒置相差顯微鏡下觀察不同時間下的細(xì)胞形態(tài)。

    2.2 免疫熒光染色檢測MCF-7 細(xì)胞上皮和間質(zhì)相關(guān)標(biāo)志物表達(dá) 將MCF-7 細(xì)胞以1 ×108/L 密度接種于24 孔板中預(yù)置的蓋玻片上,待細(xì)胞貼壁后換成無血清培養(yǎng)基饑餓過夜,加入5 μg/L TGF-β1的高糖DMEM 培養(yǎng)基誘導(dǎo)MCF-7 細(xì)胞EMT 發(fā)生,96 h 后取出蓋玻片,0.4%多聚甲醛固定20 min,如果抗原為核表達(dá)需用0.5% Triton X-100 透膜15 min;用5%BSA 封閉30 min,加入單克隆鼠抗人E-cad、CLDN1和FN1 的I 抗(濃度均為1∶50),4 ℃孵育過夜,加FITC 或TRITC 標(biāo)記的兔抗鼠Ⅱ抗(濃度均為1∶50),37 ℃下避光孵育1.5 h,PBS 沖洗3 次后加DAPI 染色液,室溫作用15 min,緩沖甘油封固,熒光顯微鏡下觀察并拍照。

    2.3 人FOXC2 基因RNA 干擾慢病毒載體的構(gòu)建及鑒定 選擇GenBank 中人FOXC2 基因編碼區(qū)序列(NM_005251.2)作為分析序列。設(shè)計及合成FOXC2基因的siRNA 寡核苷酸序列和發(fā)卡樣結(jié)構(gòu)的雙鏈OligoDNA。構(gòu)建各個干擾序列的表達(dá)質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染至293T 細(xì)胞,根據(jù)FOXC2 抑制率,確定最終有效靶序列為5'-CTACCTGAGCGAGCAGAAT-3',由上海吉凱基因公司合成。其siRNA 的DNA Oligo:5'-CCG GCTACCTGAGCGAGCAGAATCTCGAGATTCTGCTCGCTCAGGTAGTTTTTG-3'。陰性對照的核心序列為5'-TT CTCCGAACGTGTCACGT-3',其DNA Oligo:5'-CCGGTTCTCCGAACGTGTCACGTACGTGACACGTTCGGAGA-ATTTTTG-3'。寡核苷酸經(jīng)退火形成雙鏈DNA。經(jīng)T4 連接酶與Age I 和EcoR I 雙酶切后的pGCL-GFP載體連接,形成表達(dá)siRNA 的重組慢病毒質(zhì)粒載體(pGCL-GFP-FOXC2-siRNA),經(jīng)酶切鑒定。轉(zhuǎn)化DH5α 大腸桿菌,搖菌后接種到含氨芐青霉素的LB瓊脂培養(yǎng)基上,37 ℃培養(yǎng)16 h,挑取重組陽性克隆行PCR 篩選。

    2.4 慢病毒包裝及滴度測定 以Qiagen 公司的質(zhì)粒抽提試劑盒對慢病毒包裝系統(tǒng)中3 種質(zhì)粒:表達(dá)最有效靶序列siRNA 的重組慢病毒質(zhì)粒載體pGCGFP-LV、pHelper1.0 及pHelper2.0,分別進(jìn)行高純度無內(nèi)毒素DNA 抽提,質(zhì)粒DNA 溶于除菌的TE 中,以紫外光吸收法測定其濃度及純度,保證所提質(zhì)粒DNA 的A260/A280在1.8 ~2.0 之間。按說明共轉(zhuǎn)染293T 細(xì)胞,8 h 后更換為完全培養(yǎng)基,48 h 后收集富含慢病毒顆粒的細(xì)胞上清液,對濃縮后得到高滴度的慢病毒液,以293T 細(xì)胞GFP 蛋白的表達(dá)水平經(jīng)孔稀釋法測定病毒滴度。

    2.5 乳腺癌MCF-7 細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染 將TGF-β1誘導(dǎo)成功后的間質(zhì)化的MCF-7 細(xì)胞分為3 組:未轉(zhuǎn)染組、control-siRNA 組及FOXC2 -siRNA 組。在6 孔培養(yǎng)板每孔中接種2 ×105個細(xì)胞,待其生長至底板30% ~50%時,按感染復(fù)數(shù)(MOI =20)加入慢病毒顆粒進(jìn)行轉(zhuǎn)染實驗,以空載體病毒液作為對照,48 h后倒置熒光顯微鏡下觀察綠色熒光表達(dá)情況。2 周后采用流式分選出GFP 陽性表達(dá)的細(xì)胞,通過RTPCR 和Western blotting 檢測FOXC2 mRNA 及蛋白表達(dá)情況。

    2.6 RT-PCR 檢測MCF-7 細(xì)胞中E-cad、CLDN1 及FN1 mRNA 表達(dá) 將TGF-β1誘導(dǎo)的間質(zhì)化MCF-7細(xì)胞經(jīng)轉(zhuǎn)染,并分選出GFP+細(xì)胞擴大培養(yǎng),待長至瓶底80%后,加入Trizol 試劑常規(guī)抽提總RNA,逆轉(zhuǎn)錄得到cDNA。以β-actin 為內(nèi)參照,檢測目的基因表達(dá)變化,β-actin 上游引物5'-AGCGAGCATCCCCCAAAGTT-3',下游引物5'-GGGCACGAAGGCTCATCATT-3';FOXC2 上游引物5'-CTCAACGAGTGCTTCGTCAA-3',下游引物5'-GCTCCTCCTTCTCCTTGGAC-3';E-cad 上游引物 5'-TTGCTACTGGAACAGGGACAC-3',下游引物5'CCCGTGTGTTAGTT CTGCTGT-3';CLDN1 上游引物5'-AGAAGATGAGGATGGCTGTCA-3',下游引物5'-TTGGTGTTGGGTAAGAG GTTG-3';FN1 上游引物5'-G CCTTCAAGTTCCTGTTAC-3',下游引物5'-GACTCTCTCCGCTTGG ATTCT-3'。設(shè)置反應(yīng)參數(shù):95 ℃預(yù)變性15 s,95 ℃10 s,58℃30 s,72 ℃1 min,共進(jìn)行35 個循環(huán)。RT-PCR 產(chǎn)物條帶采用Quantity One 軟件分析,以β-actin 為內(nèi)參照,以目的基因灰度值/β-actin 灰度值計算mRNA相對表達(dá)量,以上實驗重復(fù)3 次,取平均值。

    2. 7 Western blotting 檢測MCF-7 細(xì)胞中E-cad、CLDN1 及FN1 蛋白表達(dá) 將TGF-β1誘導(dǎo)的間質(zhì)化MCF-7 細(xì)胞經(jīng)轉(zhuǎn)染、分選出GFP+細(xì)胞擴大培養(yǎng),收集細(xì)胞后,加入RIPA 裂解液及PMSF,冰上靜置30 min。4 ℃、12 000 r/min 離心10 min,將上清移至一新的EP 管中,BCA 法測定蛋白濃度,沸水煮5 min后上樣,采用8%SDS-PAGE 電泳,先用40 V 電泳30 min 左右至跑到分離膠處,再改為80 V 電泳1.5 h左右,直至溴酚藍(lán)跑至底部。做好“三明治”夾板,250 mA 恒流轉(zhuǎn)膜1.5 h,20 mL 封閉液37 ℃孵育2 h,加入單克隆鼠抗人E-cad、CLDN1 和FN1 的Ⅰ抗(濃度均為1∶200),4℃孵育過夜,次日TBST 洗膜3次,HRP 標(biāo)記的兔抗鼠Ⅱ抗(濃度均為1∶1 000),37℃孵育1.5 h,TBST 洗膜3 次。ECL 化學(xué)發(fā)光試劑孵育1 min,置于暗盒內(nèi)曝光拍照,曝光時間30 s。以β-actin 為內(nèi)參照,以目的蛋白灰度值/β-actin 灰度值計算目的蛋白相對表達(dá)量。以上實驗重復(fù)3 次,取平均值。

    2.8 Transwell 小室檢測MCF-7 細(xì)胞的侵襲能力

    將MCF-7 細(xì)胞分為3 組:空白對照組、TGF-β1誘導(dǎo)組和FOXC2-siRNA 組,每組設(shè)3 個復(fù)孔。各組細(xì)胞用0.25%胰酶消化后,用含10% 胎牛血清的高糖DMEM 培養(yǎng)基重懸為1 ×108/L。每個Transwell 上室加入0.3mL 這種細(xì)胞懸液(約3 ×104細(xì)胞),下室加入0.6 mL 含10% 胎牛血清的高糖DMEM 培養(yǎng)基,37 ℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng)24 h 后,取出小室并棄去上室液體,用棉簽擦去膜上層細(xì)胞,4%多聚甲醛液固定15 min,瑞氏染色液染色20 min,于倒置相差顯微鏡下計數(shù)膜下層的細(xì)胞。200 倍光鏡隨機選擇10 個視野計數(shù),計算平均值。

    3 統(tǒng)計學(xué)處理

    應(yīng)用SPSS 19.0 統(tǒng)計分析軟件,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean ±SD)表示,組間均數(shù)比較應(yīng)用單因素方差分析。以P <0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1 TGF-β1 誘導(dǎo)MCF-7 細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化觀察

    MCF-7 細(xì)胞經(jīng)5 μg/L TGF-β1誘導(dǎo)的第3 天,細(xì)胞形態(tài)發(fā)生明顯變化,倒置相差顯微鏡觀察顯示,第0 d 未處理的MCF-7 細(xì)胞呈現(xiàn)典型上皮細(xì)胞形態(tài),細(xì)胞排列緊密;而經(jīng)TGF-β1處理后,大部分細(xì)胞喪失了多角形上皮表型,細(xì)胞明顯拉長,細(xì)胞間連接更疏松,取而代之的為一種梭形、纖維細(xì)胞樣及間質(zhì)細(xì)胞樣形態(tài),見圖1。

    Figure 1. The morphology of MCF-7 cells induced by TGF-β1(×100).A:the cells showed multi-angle shape or epithelial phenotype characteristics in control group (0 d);B,C:the cells showed spindle-shaped changes in TGF-β1 group (3 d and 6 d,respectively).圖1 TGF-β1 誘導(dǎo)MCF-7 細(xì)胞發(fā)生EMT 時的細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化

    2 TGF-β1 誘導(dǎo)MCF-7 細(xì)胞EMT 后上皮和間質(zhì)相關(guān)標(biāo)志物的表達(dá)

    經(jīng)5 μg/L TGF-β1處理MCF-7 細(xì)胞96 h 后,免疫熒光染色顯示,相比于對照組,上皮性標(biāo)志物Ecad 和CLDN1 在細(xì)胞膜表達(dá)明顯減少,而間質(zhì)性標(biāo)志物FN1 表達(dá)明顯增加,見圖2。

    Figure 2. The expression of the markers related to EMT in MCF-7 cells induced by TGF-β1(×200).Yellow arrows indicate positive expression.圖2 TGF-β1 誘導(dǎo)MCF-7 細(xì)胞EMT 后EMT 相關(guān)標(biāo)志物的表達(dá)

    3 重組慢病毒載體滴度的測定及MCF-7 細(xì)胞轉(zhuǎn)染

    采用逐孔稀釋法,轉(zhuǎn)染96 h 后,熒光顯微鏡可見不同稀釋倍數(shù)下熒光細(xì)胞所占比例,根據(jù)不同病毒顆粒數(shù)計算出病毒滴度為7 ×1014Tu/L,說明有大量質(zhì)粒進(jìn)入感染細(xì)胞,病毒包裝成功。使用上述2 組病毒顆粒感染MCF-7 細(xì)胞,12 h 后觀察未見細(xì)胞明顯死亡,說明FOXC2-siRNA 慢病毒本身對細(xì)胞無明顯毒害作用,實驗組與對照組之間無明顯差異。轉(zhuǎn)染12 h 后,更換為完全培養(yǎng)基,48 h 后觀察有熒光蛋白表達(dá),且表達(dá)量在96 h 達(dá)到最大,感染效率>80%,并在之后保持在高表達(dá)狀態(tài),沒有明顯下降,可用于后續(xù)實驗,見圖3。

    Figure 3. The green fluorescent protein expression in MCF-7 cells transfected FOXC2-siRNA lentiviral vector observed by fluorescent microscope (×200).A:inverted phase-contrast microscope;B:fluorescent microscope;C:merged.圖3 FOXC2-siRNA 慢病毒轉(zhuǎn)染MCF-7 細(xì)胞的綠色熒光蛋白表達(dá)

    4 沉默F(xiàn)OXC2 表達(dá)對TGF-β1 誘導(dǎo)的MCF-7 細(xì)胞EMT 相關(guān)標(biāo)志物mRNA 表達(dá)的影響

    RT-PCR 凝膠電泳條帶顯示,F(xiàn)OXC2-siRNA 組、control-siRNA 組及未轉(zhuǎn)染組FOXC2 mRNA 表達(dá)量分別為0.08 ±0.01、0.44 ±0.06 和0.59 ±0.08;E-cad mRNA 表達(dá)量分別為0.67 ± 0.11、0.41 ± 0.08 和0.53 ±0.09;CLDN1 mRNA 表達(dá)量分別為:0.56 ±0.07、0.23 ±0.04 和0.21 ±0.03;FN1 mRNA 表達(dá)量分別為0.07 ±0.01、0.64 ±0.08 和0.75 ±0.12。與control-siRNA 組及未轉(zhuǎn)染組比較,F(xiàn)OXC2-siRNA 組上皮性標(biāo)志物E-cad 和CLDN1 明顯上調(diào),而間質(zhì)性標(biāo)志物FN1 明顯下調(diào),差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.05),見圖4。

    5 沉默F(xiàn)OXC2 表達(dá)對TGF-β1誘導(dǎo)的MCF-7 細(xì)胞EMT 相關(guān)標(biāo)志物蛋白表達(dá)的影響

    Western blotting 凝膠成像條帶顯示,與未轉(zhuǎn)染組及control-siRNA 組比較,F(xiàn)OXC2-siRNA 組FOXC2 蛋白的表達(dá)明顯降低,F(xiàn)OXC2 下游E-cad 及CLDN1 表達(dá)上調(diào),間質(zhì)性標(biāo)志物FN1 表達(dá)下調(diào),3 組間差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.05),見圖5。

    Figure 4. The mRNA expression of FOXC2 (A)and the markers related to EMT (B:E-cad;C:CLDN1;D:FN1)in mesenchymal MCF-7 cells analyed by RT-PCR.M:marker;1:FOXC2-siRNA group;2:control-siRNA group;3:non-transfection group.圖4 RT-PCR 檢測間質(zhì)化MCF-7 細(xì)胞中FOXC2 和EMT 相關(guān)標(biāo)志物mRNA 的表達(dá)

    Figure 5. The protein expression of FOXC2 and EMT-related markers in mesenchymal MCF-7 cells analyed by Western blotting.1:non-transfection group;2:control-siRNA group;3:FOXC2-siRNA group.Mean±SD. n=3. * P <0.05 vs non-transfection or control-siRNA.圖5 Western blotting 檢測間質(zhì)化MCF-7 細(xì)胞中FOXC2 EMT 相關(guān)標(biāo)志物蛋白的表達(dá)

    6 沉默F(xiàn)OXC2 表達(dá)對TGF-β1 誘導(dǎo)的MCF-7 細(xì)胞侵襲能力的影響

    對照組、TGF-β1組和FOXC2-siRNA 組穿過人工基質(zhì)膠的間質(zhì)化MCF-7 細(xì)胞的數(shù)目分別為16 ±3、52 ±6 及13 ±2,TGF-β1組侵襲細(xì)胞數(shù)明顯高于其它2 組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.05),見圖6。

    Figure 6. Impact of FOXC2 silencing on invasion of mesenchymal MCF-7cell was assayed using Transwell chambers(×200).A:control group;B:TGF-β1-induced group;C:FOXC2-siRNA group.圖6 沉默F(xiàn)OXC2 對間質(zhì)化MCF-7 細(xì)胞體外侵襲能力的影響

    討 論

    EMT 在多種腫瘤演進(jìn)中扮演重要角色,有些是瞬時事件,有些表現(xiàn)為永久性EMT 特征。EMT 使得上皮細(xì)胞失去細(xì)胞極性及與基底膜連接等上皮樣特征,而獲得高遷移、侵襲、抗凋亡及降解細(xì)胞外基質(zhì)等間質(zhì)樣特征[7]。EMT 發(fā)生受到諸多因素的影響,其中TGF-β1是誘發(fā)EMT 的關(guān)鍵始動因素,TGF-β1可通過Smad 或非Smad 信號通路誘導(dǎo)某些上皮細(xì)胞發(fā)生EMT[8-9]。

    研究表明,一些重要的轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,如Twist、Snail1、Slug、FOXC2、ZEB1/2 等能夠誘導(dǎo)EMT 發(fā)生,它們共同特征是含有能識別靶基因啟動子上E-box基序的DNA 結(jié)合序列[10-11]。更多的EMT 相關(guān)標(biāo)志物鑒定,為EMT 模型的建立提供理論依據(jù)。本研究發(fā)現(xiàn),MCF-7 細(xì)胞在外源性TGF-β1誘導(dǎo)下,48 h 內(nèi)顯示出細(xì)胞生長抑制現(xiàn)象,這與先前推論的TGF-β1在早期對細(xì)胞表現(xiàn)為生長抑制一致,從第3 d 開始至第6 d,細(xì)胞逐漸拉長,形成長梭形具有運動能力的成纖維樣細(xì)胞,說明EMT 轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)量需要積累到一定濃度才能與E-cad 的啟動子結(jié)合抑制其表達(dá),導(dǎo)致細(xì)胞間連接的松散,可能是因為從轉(zhuǎn)錄到翻譯,再到蛋白質(zhì)合成并發(fā)揮作用需要一定的時間,說明MCF-7 細(xì)胞EMT 過程表現(xiàn)出時序特征[12-13]。而免疫熒光檢測結(jié)果也顯示上皮性標(biāo)志物E-cad 及CLDN1 在TGF-β1誘導(dǎo)的MCF-7 細(xì)胞膜上表達(dá)降低,而FN1 在間質(zhì)樣細(xì)胞中表達(dá)明顯增加。Gerhard等[14]在化生性乳腺癌研究中,發(fā)現(xiàn)claudins 蛋白及E-cad 蛋白表達(dá)缺失或降低與波形蛋白高表達(dá)及癌干細(xì)胞表型相關(guān),表明化生性乳腺癌具有低緊密連接蛋白特征。其它研究也發(fā)現(xiàn)EMT 相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子高表達(dá)與Claudin-low 及化生性乳腺癌表型相關(guān)[10]。類似的,Jung 等[15]發(fā)現(xiàn)claudin-1、claudin-2、claudin-3及claudin-4 的低表達(dá)與胃癌的侵襲性及不良預(yù)后相關(guān)。

    FOXC2 屬于人類叉頭框(forkhead box,F(xiàn)OX)家族成員之一,F(xiàn)OX 蛋白不僅作為典型轉(zhuǎn)錄因子通過招募共激活因子等調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄,有些還能直接同凝聚染色質(zhì)結(jié)合參與重構(gòu),協(xié)同其它轉(zhuǎn)錄因子參與轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié),PI3K/Akt、TGF-β/Smad 和MAPK 等多個信號通路都可以影響FOX 蛋白磷酸化水平,調(diào)節(jié)其活性。新近研究發(fā)現(xiàn)FOX 蛋白家族中的多個成員通過調(diào)控上皮細(xì)胞可塑性,在腫瘤惡性進(jìn)展中發(fā)揮著促進(jìn)或抑制作用[16]。如牟永告等[17]研究顯示核轉(zhuǎn)錄因子FOXP3 陽性的星形細(xì)胞瘤較FOXP3 陰性的星形細(xì)胞瘤的預(yù)后差,可能成為星形細(xì)胞瘤免疫調(diào)節(jié)的新靶點。而蔣光愉等[18]研究顯示FOXA1 及BRCA1 在三陰乳腺癌中表達(dá)呈負(fù)相關(guān),提示FOXA1在乳腺癌中發(fā)揮著抑癌作用。目前,有關(guān)FOXC2 在乳腺癌侵襲轉(zhuǎn)移中作用及其是否參與TGF-β1調(diào)控的EMT 機制,仍不清楚。為此,我們構(gòu)建FOXC2 基因RNA 干擾慢病毒表達(dá)載體,轉(zhuǎn)染至間質(zhì)化MCF-7細(xì)胞中,RT-PCR 及Western blotting 結(jié)果均顯示間質(zhì)性標(biāo)志物FN1 表達(dá)下調(diào),而上皮性標(biāo)志物E-cad 及CLDN1 表達(dá)上調(diào),提示EMT 過程發(fā)生逆轉(zhuǎn),即FOXC2 可逆轉(zhuǎn)間質(zhì)化MCF-7 細(xì)胞回復(fù)到上皮表型,這與EMT 機制可逆性,即MET 機制相符[19-20]。而Transwell 小室模型也證明沉默F(xiàn)OXC2 表達(dá)能夠顯著降低穿過人工基質(zhì)基底膜間質(zhì)化的MCF-7 細(xì)胞數(shù)量,且穿過基底膜的細(xì)胞形態(tài)學(xué)回復(fù)至上皮表型,不僅表明乳腺癌細(xì)胞侵襲能力受到抑制,同時也表明EMT 是一種動態(tài)及可逆的過程。以上結(jié)果表明FOXC2 可能作為TGF-β1下游靶基因參與MCF-7 細(xì)胞EMT 和MET 的調(diào)控。

    綜上所述,外源性TGF-β1能夠誘導(dǎo)MCF-7 細(xì)胞發(fā)生EMT,沉默F(xiàn)OXC2 表達(dá)可逆轉(zhuǎn)EMT 發(fā)生并降低其侵襲轉(zhuǎn)移能力,提示FOXC2 在乳腺癌侵襲轉(zhuǎn)移中發(fā)揮重要作用;而FOXC2 作為轉(zhuǎn)錄因子,處于信號通路級聯(lián)反應(yīng)的中心環(huán)節(jié),對其上游信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路及下游轉(zhuǎn)錄調(diào)控的直接靶基因尚有待進(jìn)一步研究。

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