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    重組豬IFNα的構(gòu)建及原核可溶性表達(dá)研究

    2013-12-14 07:07:16蔡家利戶國達(dá)孫加燕尹忠寶張存亮陳文毫
    關(guān)鍵詞:干擾素可溶性克隆

    蔡家利,戶國達(dá),孫加燕,尹忠寶,張存亮,陳文毫

    病毒性傳染病是困擾我國養(yǎng)豬業(yè)發(fā)展最突出的問題之一,每年因病毒感染引起豬死亡和生長障礙而造成的經(jīng)濟(jì)損失無法估計。干擾素(interferon,IFN)是一種可抑制病毒復(fù)制的細(xì)胞因子,是由病毒或其他IFN誘導(dǎo)劑作用于易感細(xì)胞后產(chǎn)生的一種小分子糖類蛋白,具有廣譜的抗病毒、抗腫瘤及免疫調(diào)節(jié)等功能[1]。據(jù)報道在各種類型的IFN 中,IFN-α 的抗病毒作用最強(qiáng)[2,3]。

    目前,市售的豬α-干擾素由豬白細(xì)胞和原核表達(dá)系統(tǒng)獲得,僅豬白細(xì)胞IFN獲得農(nóng)業(yè)部新獸藥的批文[4]。白細(xì)胞干擾素來源極其有限,大大制約了其應(yīng)用。原核表達(dá)系統(tǒng),尤其是大腸桿菌表達(dá)雖然表達(dá)效率高,但表達(dá)出的重組豬α-干擾素多是以不溶的無功能的包涵體形式存在,必須通過復(fù)雜的變性復(fù)性過程才能獲得有功能的蛋白,并且成功率較低。近年來,很多專家學(xué)者將研究重心轉(zhuǎn)移到酵母菌[5]、桿狀病毒、腺病毒[6]、轉(zhuǎn)基因植物[7]上,并取得了重大成果,但是始終存在一些技術(shù)瓶頸,如豬α-干擾素的表達(dá)水平偏低、高密度發(fā)酵工藝復(fù)雜等,還無法實現(xiàn)豬IFN-α的規(guī)?;a(chǎn)。據(jù)報道,豬IFN-α無需翻譯后加工修飾,采用新的可溶表達(dá)策略即可實現(xiàn)其在大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)中的可溶性表達(dá),大大加快了豬α-干擾素規(guī)模化生產(chǎn)進(jìn)程。

    本研究采用新的可溶性策略,構(gòu)建了原核表達(dá)載體pET32a-poIFNα,通過與Trx融合表達(dá),實現(xiàn)了豬α-干擾素的可溶性表達(dá),只需一步純化,即可獲得純度較高的豬α-干擾素重組產(chǎn)物。這對豬α-干擾素作為新的生物藥物的進(jìn)一步開發(fā)利用具有極其重要的意義。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 載體與菌株

    pET32a+、大腸桿菌 DH5α和 BL21菌株,由重慶富進(jìn)生物醫(yī)藥有限公司饋贈。

    1.1.2 工具酶及其他材料

    DNA抽提試劑盒、蛋白Marker購自天根公司;TaqDNA聚合酶、DNA Marker、限制性內(nèi)切酶EcoR I和Xho I、T4連接酶、質(zhì)粒提取試劑盒、膠回收試劑盒均購自TaKaRa公司;Ni-NTA親和樹脂來源于分子生物學(xué)實驗室;其他試劑均為國產(chǎn)分析純產(chǎn)品。

    1.1.3 抗體

    抗豬α-干擾素鼠源單抗;羊抗鼠IgG-HRP。

    1.2 PCR擴(kuò)增IFN-α

    提取新鮮豬肝臟組織基因組DNA,根據(jù)Gen-Bank中豬IFN-α基因序列(登錄號為M28623.1)設(shè)計引物。上游引物為5’-GGAATTCTGTGACCTGCCTCAG-3’;下游引物 5’-CCGCTCGAGTCACTCCTTCTTCCTGAGT-3’。在上、下游引物中分別引入 EcoR I、Xho I酶切位點(下劃線表示)。PCR反應(yīng)體系按照TaqDNA聚合酶附帶的說明書制定。反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性5 min,然后經(jīng)歷94℃ 45 s、61℃ 45 s、72℃ 1 min 共35 個循環(huán),72℃延伸7 min。PCR產(chǎn)物鑒定后回收純化,-20℃保存。

    1.3 重組質(zhì)粒pET32a-IFN-α的構(gòu)建

    分別回收EcoR I、Xho I酶雙酶切后的PCR產(chǎn)物和pET32a質(zhì)粒,按體積比7∶1,16℃連接過夜。將連接反應(yīng)產(chǎn)物轉(zhuǎn)化新鮮制備的DH5α感受細(xì)胞,使用含終濃度為100 μg/mL Amp的LB進(jìn)行篩選。過夜培養(yǎng)后,進(jìn)行菌落PCR鑒定,對陽性克隆提取質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定,然后送TaKaRa公司測序,并對結(jié)果進(jìn)行分析。

    1.4 工程菌的構(gòu)建

    將測序為陽性的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化表達(dá)菌株BL21(DE3),用含Amp的LB平板進(jìn)行篩選。過夜培養(yǎng)后,進(jìn)行菌落PCR鑒定,對陽性克隆提取質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定。

    1.5 rpoIFN-α的誘導(dǎo)表達(dá)

    挑選篩選出的陽性BL21(DE3)單克隆菌株,接種于5mL含終濃度為100 μg/mL Amp的LB液體培養(yǎng)基,37℃過夜培養(yǎng)。將菌液按體積比1∶100接種到20 mL含 Amp的培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)至OD600為0.6~0.8時加入終濃度為0.5 mmol/L的IPTG,22℃培養(yǎng)8 h后收集菌液,5 000 r/min離心取沉淀。按照每1 g菌加入10 mL PBS的比例,使其重懸,然后超聲破菌。破菌液離心后,分別取上清和沉淀進(jìn)行SDS-PAGE分析[8]。

    1.6 rpoIFN-α的純化

    22℃誘導(dǎo)表達(dá)3L菌液,離心收集菌體。按體積比1∶3~1∶10的比例加入裂解液,超聲破碎后離心收集破菌上清。用0.45 μm的水系過濾器過濾一次,隨流動相進(jìn)入已平衡好的Ni柱。用平衡Buffer平衡柱子,收集穿透液,再用 20、50、100、200、400 mmol/L咪唑梯度洗脫,每次洗脫體積為40 mL,用SDS-PAGE分析純化效果。

    1.7 Western-blot鑒定

    取純化后的表達(dá)產(chǎn)物10 μL,進(jìn)行SDS-PAGE電泳。在100 V條件下電轉(zhuǎn)2 h,將rpoIFN-α從SDS-PAGE膠上轉(zhuǎn)移到NC膜上。用5%的脫脂奶粉(用PBST配置)37℃封閉2 h,再用PBST洗膜3次。加入抗豬α-干擾素鼠源單抗(1∶2000稀釋),37℃孵育1 h,再用PBST洗膜3次。加入羊抗鼠IgG-HRP(1∶4000稀釋),37℃孵育1 h。再用PBST洗膜3次。加入DAB顯色液暗區(qū)反應(yīng)5~10 min,用水進(jìn)行漂洗。

    2 結(jié)果

    2.1 重組質(zhì)粒pET32a-IFN-α的鑒定

    2.1.1 PCR鑒定

    菌落PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分析,在501bp附近位置有明顯的條帶(見圖1),與預(yù)期相符。

    圖1 重組pET32a+-PoIFNα質(zhì)粒菌落PCR鑒定結(jié)果

    2.1.2 雙酶切鑒定

    重組質(zhì)粒pET32a+-PoIFNα經(jīng)限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和XhoⅠ雙酶切后可見線性質(zhì)粒的條帶及501bp的目的基因片段,與PoIFNα基因的大小相吻合(見圖2)。

    圖2 重組pET32a+-PoIFNα質(zhì)粒雙酶切鑒定結(jié)果

    2.1.3 測序結(jié)果與分析

    經(jīng)比對,克隆得到的基因序列與Genebank上登錄號為AY776246、M28623的poIFNα同源性分別為99%、97%(見圖3),初步認(rèn)定克隆得到的基因是PoIFNα基因,可以用來制備PoIFNα。

    圖3 DNA序列比對

    2.2 PoIFNα的表達(dá)

    經(jīng)過對誘導(dǎo)劑濃度、誘導(dǎo)溫度和誘導(dǎo)時間的研究,確定出可溶性表達(dá)最佳誘導(dǎo)條件為22℃,10 h,0.5 mmol/L IPTG。用最佳條件誘導(dǎo)后,破菌上清與沉淀經(jīng)SDS-PAGE分析,poIFNα多以可溶性表達(dá)的形式出現(xiàn)在破菌上清中(見圖4)。

    圖4 重組蛋白可溶性分析

    2.3 PoIFNα的純化結(jié)果

    梯度洗脫,收集到的蛋白經(jīng)SDS-PAGE分析后,濃度為20 mmol/L時可以洗去幾乎所有的雜蛋白,在50 mmol/L時進(jìn)一步純化,在100 mmol/L時洗脫即可得到純度很高的PoIFNα,為大量產(chǎn)物純化奠定了基礎(chǔ)(見圖5)。

    圖5 PoIFNα純化電泳圖

    純化后的PoIFNα經(jīng)Western blot檢測在膜上有特異性的條帶出現(xiàn)(見圖6),進(jìn)一步證實產(chǎn)物為PoIFNα。

    圖6 Western blot結(jié)果

    3 討論

    大腸桿菌表達(dá)真核蛋白時,多形成不溶性的、無功能的包涵體。因此,如何實現(xiàn)真核蛋白在大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)中的可溶性表達(dá)是擺在我們面前亟待解決的問題。

    在眾多學(xué)者的不斷探索創(chuàng)新中,人們已經(jīng)積累了一些實現(xiàn)蛋白可溶性表達(dá)的經(jīng)驗:①選擇合適的宿主菌[9],例如選擇蛋白酶缺失的菌株;②共表達(dá)一種或多種分子伴侶或折疊酶[10-11];③ 選擇適宜的載體,實現(xiàn)融合表達(dá)[12];④ 通過定點突變,改變蛋白結(jié)構(gòu)[13];⑤ 優(yōu)化培養(yǎng)條件和誘導(dǎo)條件[14-15]。由于蛋白種類繁多,理化性質(zhì)各異,目前很難找到一種通用的方法。對于某一蛋白可溶性表達(dá)策略的選取,只能在研究中摸索、積累經(jīng)驗,并同時關(guān)注相關(guān)領(lǐng)域的研究進(jìn)展。

    本實驗嘗試使用前人在豬α-干擾素原核表達(dá)中未曾使用的質(zhì)粒pET32a+,實現(xiàn)了PoIFNα的可溶性表達(dá),并取得了成功。pET32a+含有TrxA基因,可以與下游多克隆位點插入的目的基因融合表達(dá),所編碼的硫氧還原蛋白可大大提高目的蛋白的溶解度和活性,并且載體上帶有His標(biāo)簽,通過鎳柱親和層析一步純化即可得到融合蛋白。這為實現(xiàn)其他真核蛋白在大腸桿菌中可溶性表達(dá)提供了重要參考。

    下一步工作的重心是PoIFNα活性的測定。將采用細(xì)胞病變抑制法測定PoIFNα在動物細(xì)胞上對動物病毒的抑制作用。

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