左 偉,吳志宏,蘇新林,吳 南,邱貴興
(中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)院骨科,北京100730)
由于關(guān)節(jié)軟骨缺乏血管和神經(jīng)支配,僅含有單一的軟骨細(xì)胞,導(dǎo)致關(guān)節(jié)軟骨損傷后自身修復(fù)能力很差。關(guān)節(jié)軟骨損傷最終會(huì)導(dǎo)致軟骨的剝脫,關(guān)節(jié)面不完整,給患者造成關(guān)節(jié)腫脹、疼痛及活動(dòng)障礙等極大痛苦。目前,軟骨損傷的修復(fù)已成為骨科醫(yī)生的一項(xiàng)挑戰(zhàn),組織工程學(xué)的提出為軟骨缺損的修復(fù)重建提供了新的治療途徑,但如何獲得適合的種子細(xì)胞是軟骨組織工程的關(guān)鍵。除了骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,近年來(lái)已有學(xué)者從人的脂肪、皮膚、滑膜甚至椎間盤組織中分離出成體干細(xì)胞[1-4],但關(guān)于軟骨來(lái)源成體干細(xì)胞的研究還比較少,本研究旨在觀察關(guān)節(jié)軟骨中是否存在有軟骨干細(xì)胞,并對(duì)軟骨干細(xì)胞進(jìn)行分離、培養(yǎng)和鑒定,以期為將來(lái)的組織工程學(xué)提供依據(jù)。
DMEM培養(yǎng)基和胎牛血清(Hycolon公司);成脂肪、成骨、成軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基(R&D公司);纖連蛋白,油紅O,茜素紅和甲苯胺藍(lán)(Sigma公司);CD45,CD90,CD73等流式檢測(cè)抗體(BD公司);堿性磷酸酶檢測(cè)試劑盒(碧云天公司);Ⅱ型膠原和蛋白多糖(Aggrecan)抗體(Abcam公司)。
1.2.1 軟骨干細(xì)胞的分離與培養(yǎng):選擇2011年10月至2012年4月在北京協(xié)和醫(yī)院行膝關(guān)節(jié)表面置換手術(shù)的晚期骨關(guān)節(jié)炎患者6例,其中男性2例,女性4例,年齡63.2±3.5歲。經(jīng)患者同意、醫(yī)院倫理委員會(huì)許可,收集手術(shù)后廢棄的軟骨組織,用剪刀將軟骨剪碎至1 mm×1 mm×1 mm大小,加入0.2%Ⅱ型膠原蛋白酶,37℃水浴搖床消化8 h后,70μm濾網(wǎng)過(guò)濾得到單個(gè)軟骨細(xì)胞。將軟骨細(xì)胞以4×103個(gè)/mL的密度接種至預(yù)先用10μg/mL纖連蛋白處理過(guò)的平皿中,20 mins后給予換液以去除未貼壁的細(xì)胞,然后加入含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。兩周后,用克隆環(huán)挑取平皿中所形成細(xì)胞數(shù)大于32的單個(gè)集落,放入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng),具體方法可參考文獻(xiàn)[5]。
1.2.2 流式細(xì)胞儀檢測(cè):取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的第3代軟骨干細(xì)胞,胰蛋白酶消化后細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),每檢測(cè)樣本細(xì)胞量大約為2×105個(gè)。重懸細(xì)胞后加入適當(dāng)濃度的流式檢測(cè)抗體,4℃避光孵育30 mins。PBS洗滌2次后,用300μL PBS重懸,上流式細(xì)胞儀檢測(cè)軟骨干細(xì)胞表面CD分子表達(dá)情況,同時(shí)用PBS作為一抗設(shè)置陰性對(duì)照。
1.2.3 軟骨干細(xì)胞的成脂誘導(dǎo)及鑒定:選擇第3代軟骨干細(xì)胞,經(jīng)胰蛋白酶消化后以5×104個(gè)細(xì)胞數(shù)接種于12孔板中,常規(guī)培養(yǎng)細(xì)胞貼壁至90%匯合后改為成脂誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng),每72 h給予換液,同時(shí)設(shè)置普通培養(yǎng)基培養(yǎng)為陰性對(duì)照。誘導(dǎo)3周4%多聚甲醛固定后行油紅O染色。
1.2.4 軟骨干細(xì)胞的成骨誘導(dǎo)及鑒定:選擇第3代軟骨干細(xì)胞,經(jīng)胰蛋白酶消化后以5×104個(gè)細(xì)胞數(shù)接種于12孔板中,常規(guī)培養(yǎng)細(xì)胞貼壁匯合至80%后改為成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng),每隔72 h給予換液,同時(shí)設(shè)置普通培養(yǎng)基培養(yǎng)為陰性對(duì)照。誘導(dǎo)3周4%多聚甲醛固定后行茜素紅染色及堿性磷酸酶活性測(cè)定。
1.2.5 軟骨干細(xì)胞的成軟骨誘導(dǎo)及鑒定:選取第3代軟骨干細(xì)胞,胰蛋白酶消化后將1×106個(gè)細(xì)胞吸入到15 mL離心管中,經(jīng)離心后形成細(xì)胞微團(tuán),給予成軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基進(jìn)行誘導(dǎo)分化,每72 h換液1次,同時(shí)設(shè)置普通培養(yǎng)基培養(yǎng)為陰性對(duì)照。誘導(dǎo)4周后,4%多聚甲醛固定,常規(guī)組織包埋、切片,行甲苯胺藍(lán)染色,并行誘導(dǎo)后組織的Ⅱ型膠原及Aggrecan免疫組化檢測(cè)。
采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差)表示。
軟骨組織消化后的單個(gè)細(xì)胞接種到纖連蛋白處理過(guò)的平皿20 mins后,部分細(xì)胞即開(kāi)始貼壁。在后期的培養(yǎng)中,細(xì)胞呈集落樣生長(zhǎng),至2周時(shí),已有較大集落的形成,部分集落與集落間相互匯合,細(xì)胞呈短梭形。經(jīng)克隆環(huán)挑取細(xì)胞集落繼續(xù)培養(yǎng)后,細(xì)胞生長(zhǎng)迅速,3~4 d即可傳1代。傳至第3代時(shí),細(xì)胞形態(tài)均一,呈長(zhǎng)梭形或多角形(圖1)。
大部分軟骨干細(xì)胞表面表達(dá) CD44、CD29、CD73、CD90和 CD166,但幾乎不表達(dá) CD45、CD34和 CD133(圖2)。
在成脂誘導(dǎo)過(guò)程中,可以發(fā)現(xiàn)誘導(dǎo)后的細(xì)胞變大,胞核周圍出現(xiàn)空泡樣小脂滴顆粒,約2周后脂滴增大并相互融合。行油紅O染色,可見(jiàn)細(xì)胞內(nèi)有大量紅色脂滴,而普通培養(yǎng)基培養(yǎng)組則無(wú)明顯脂滴形成(圖3)。
軟骨干細(xì)胞經(jīng)成骨誘導(dǎo)后,可以發(fā)現(xiàn)細(xì)胞變成多角形,細(xì)胞內(nèi)顆粒逐漸增多,細(xì)胞間可見(jiàn)有鈣質(zhì)沉積,經(jīng)茜素紅染色呈紅色結(jié)節(jié),堿性磷酸酶檢測(cè)也可發(fā)現(xiàn)細(xì)胞呈陽(yáng)性表達(dá);普通培養(yǎng)基培養(yǎng)組則無(wú)明顯鈣質(zhì)沉積,堿性磷酸酶檢測(cè)發(fā)現(xiàn)細(xì)胞呈陰性或弱陽(yáng)性表達(dá)(圖4)。
細(xì)胞在15 mL離心管經(jīng)離心后48 h,即可發(fā)現(xiàn)細(xì)胞聚集成不規(guī)則團(tuán)塊樣,隨著誘導(dǎo)時(shí)間的延長(zhǎng),誘導(dǎo)組細(xì)胞團(tuán)塊逐漸增大,變成球狀,表面也變得光滑。培養(yǎng)4周后,可見(jiàn)誘導(dǎo)組的軟骨團(tuán)塊大于普通培養(yǎng)基培養(yǎng)組,誘導(dǎo)后軟骨組織包埋切片,可以發(fā)現(xiàn)甲苯胺藍(lán)染色呈陽(yáng)性,經(jīng)免疫組化檢測(cè),誘導(dǎo)后的軟骨組織也可表達(dá)Ⅱ型膠原和Aggrecan(圖5)。
目前,針對(duì)有癥狀關(guān)節(jié)軟骨損傷的修復(fù)已成為一種趨勢(shì),軟骨組織工程的提出,為大面積的軟骨缺損修復(fù)提供了新的途徑。理論上,自體軟骨細(xì)胞是構(gòu)建軟骨最為理想的種子細(xì)胞,但人體內(nèi)軟骨細(xì)胞來(lái)源非常有限,且在體外培養(yǎng)過(guò)程中,軟骨細(xì)胞增殖能力較弱,也極易發(fā)生老化及去分化,喪失形成軟骨的能力[6-7]。有學(xué)者以骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞作為種子細(xì)胞在體外構(gòu)建組織工程軟骨,但發(fā)現(xiàn)所形成的是一些類軟骨樣組織,其生物學(xué)性能明顯不如正常軟骨[8-9]。本研究試想,如果能從關(guān)節(jié)軟骨中分離、鑒定出軟骨干細(xì)胞,一方面能為軟骨組織工程提供良好的種子細(xì)胞,另一方面也可能為軟骨損傷的原位修復(fù)治療提供新的希望。
圖5 軟骨干細(xì)胞的成軟骨誘導(dǎo)Fig 5 Chondrogenic differentiation in cartilage-derived stem cells
本實(shí)驗(yàn)依據(jù)干細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)形成單個(gè)集落的特性成功分離出軟骨干細(xì)胞,流式細(xì)胞儀檢測(cè)發(fā)現(xiàn)軟骨干細(xì)胞表面表達(dá) CD44、CD29、CD73、CD90和CD166等分子,且?guī)缀醪槐磉_(dá) CD45、CD34和CD133。在體外誘導(dǎo)分化實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),軟骨干細(xì)胞能成功向脂肪細(xì)胞和骨細(xì)胞進(jìn)行分化;當(dāng)給與成軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基時(shí),軟骨干細(xì)胞能聚集成團(tuán),免疫組化結(jié)果顯示,誘導(dǎo)后的組織能成功表達(dá)Ⅱ型膠原及Aggrecan,Ⅱ型膠原和Aggrecan是關(guān)節(jié)軟骨基質(zhì)的主要成分,這說(shuō)明在軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基的作用下,軟骨干細(xì)胞能成功的向軟骨細(xì)胞進(jìn)行分化。根據(jù)國(guó)際干細(xì)胞治療協(xié)會(huì)的標(biāo)準(zhǔn)[10],本研究分選出的細(xì)胞滿足了絕大部分對(duì)干細(xì)胞定義的要求。
總的來(lái)說(shuō),本研究認(rèn)為軟骨中存在著軟骨干細(xì)胞,并成功的對(duì)軟骨干細(xì)胞進(jìn)行了鑒定,從而可能為軟骨組織工程提供了新的種子細(xì)胞來(lái)源,也為軟骨損傷的原位修復(fù)提供了希望,但對(duì)軟骨干細(xì)胞的生物學(xué)特性,還需要進(jìn)一步的研究。
[1]Eom YW,Lee JE,Yang MS,et al.Rapid isolation of adipose tissue-derived stem cells by the storage of lipoaspirates[J].Yonsei Med J,2011,52:999 -1007.
[2]Riekstina U,Muceniece R,Cakstina I,et al.Characterization of human skin-derived mesenchymal stem cell proliferation rate in different growth conditions[J].Cytotechnology,2008,58:153 -162.
[3]De Bari C,Dell Accio F,Tylzanowski P,et al.Multipotent mesenchymal stem cells from adult human synovial membrane[J].Arthritis Rheum,2001,44:1928 -1942.
[4]Blanco JF,Graciani IF,Sanchez-Guijo FM,et al.Isolation and characterization of mesenchymal stromal cells from human degenerated nucleus pulposus:comparison with bone marrow mesenchymal stromal cells from the same subjects[J].Spine,2010,35:2259 -2265.
[5]Jones PH,Watt FM.Separation of human epidermal stem cells from transit amplifying cells on the basis of differences in integrin function and expression[J].Cell,1993,73:713-724.
[6]Dehne T,Schenk R,Perka C,et al.Gene expression profiling of primary human articular chondrocytes in high-density micromasses reveals patterns of recovery,maintenance,re-and dedifferentiation[J].Gene,2010,462:8 -17.
[7]Schnabel M,Marlovits S,Eckhoff G,et al.Dedifferentiation-associated changes inmorphology and gene expression in primary human articular chondrocytes in cell culture[J].Osteoarthritis Cartilage,2002,10:62-70.
[8]Connelly JT,Wilson CG,Levenston ME.Characterization of proteoglycan production and processing by chondrocytes and BMSCs in tissue engineered constructs[J].Osteoarthritis Cartilage,2008,16:1092-1100.
[9]Adesida AB,Mulet-Sierra A,Jomha NM.Hypoxia mediated isolation and expansion enhances the chondrogenic capacity of bone marrow mesenchymal stromal cells[J].Stem Cell Res Ther,2012,3:9 -20.
[10]Dominici M,Le Blanc K,Mueller I,et al.Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells.The International Society for Cellular Therapy position statement[J].Cytotherapy,2006,8:315-317.