黃麗君,張洪斌,胡雪芹
(合肥工業(yè)大學制藥工程系,合肥230009)
雄烯二酮(androstenedione)是甾體激素類藥物的重要中間體[1],對機體起著非常重要的調節(jié)作用,目前主要通過微生物選擇性降解植物甾醇側鏈所得。微生物法制取雄烯二酮具有產品純度高,不受原材料限制,易于大規(guī)模生產等優(yōu)點[2,3],但是也普遍存在底物植物甾醇在水相中溶解度小,菌種轉化能力低等缺點。
為了選育發(fā)酵性能優(yōu)良菌種,本文研究采用新型的N+注入法與NTG法對分枝桿菌進行聯(lián)合誘變,以選育優(yōu)良的雄烯二酮高產菌株。
亞硝基胍(NTG)是一種高效的化學誘變劑,在適當的條件下,菌體的死亡率低而誘變率高,對每一細胞可以誘發(fā)一次至多次突變,因此有超誘變劑之稱[4]。離子注入是20世紀80年代興起的一種材料表面處理技術。中國科學家獨辟蹊徑,將離子注入這一高新技術應用于農作物品種改良并獲得成功,由此開始了注入離子與生物體系相互作用過程的探索[5,6],目前廣泛應用于生物誘變育種中。利用低能離子注入具有生理損失小、突變范圍廣、突變程度高的特點,希望能夠篩選到高產突變菌株[7]。
1.1.1 菌種來源
分枝桿菌(Mycobacterium sp.),由本實驗保藏。
1.1.2 試劑和儀器
植物甾醇和雄烯二酮(購于湖北遠成藥業(yè));其他試劑均為分析純,水為去離子水。SPX-250型生化培養(yǎng)箱(上海躍進醫(yī)療器械廠);島津GC-2014氣相色譜儀(日本島津);HC-3018R高速冷凍離心機(科大創(chuàng)新股份有限公司中佳分公司);HQL300B恒溫搖床(武漢中科科學儀器廠)。
1.1.3 培養(yǎng)基
斜面培養(yǎng)基:高氏Ⅰ號培養(yǎng)基3.75%,甘油2.0%,pH值7.2。
篩選培養(yǎng)基:植物甾醇1%,硝酸鉀0.1%,磷酸氫二鉀0.05%,硫酸鎂 0.05%,氯化鈉 0.05%,硫酸亞鐵0.001%,瓊脂2%,pH值7.2。
種子培養(yǎng)基:BPD復合酵母膏1.5%,葡萄糖0.6%,磷酸氫二銨0.06%,硝酸鈉0.54%,pH值7.2。
轉化培養(yǎng)基:有機相為大豆油10%,植物甾醇1%,水相為紅糖1.5%,麥芽糖1.08%,磷酸氫二銨0.06%,硝酸鈉0.54%,pH值7.2。
1.1.4 培養(yǎng)條件
斜面培養(yǎng)基:溫度30℃ ~32℃,生長周期5~7 d。
種子培養(yǎng)基:溫度30℃ ~32℃,轉速250 r/min,生長周期60 h。
轉化培養(yǎng)基:溫度30℃ ~32℃,接種量10%,轉速250 r/min,發(fā)酵周期 7 d。
1.2.1 菌懸液的制備
挑取1環(huán)斜面培養(yǎng)基上已活化好的菌株,接入滅菌的、裝有玻璃珠的三角瓶中,置于31℃,250 r/min的恒溫搖床中震蕩30 min,獲得菌懸液,并將其稀釋至細胞濃度約為107~108個/mL左右,備用。
1.2.2 NTG誘變方法
NTG配制:NTG結晶50 mg,加助溶劑丙酮1 mL溶解,用pH值6.0的磷酸鹽緩沖液配制成2.5 mg/mL原液。
誘變處理:取0.8 mL菌懸液,按 NTG終濃度0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL 依次加入NTG 原液,用緩沖液補至1 mL,對照只加緩沖液,31℃水浴處理30 min,用生理鹽水稀釋以終止反應,涂皿分離。統(tǒng)計單菌落個數并計算致死率。
1.2.3 N+注入誘變
選擇經NTG誘變后產率最高的突變株作為出發(fā)菌株,制備菌懸液。取5 mL適量稀釋后的菌懸液和5 mL 30%的甘油混合,搖勻后取0.1 mL均勻涂布于無菌平皿中,由無菌風吹干后進行N+注入,以經過真空處理而不注入離子束的菌株作為對照。該工作在中國科學院合肥分院離子束生物工程重點實驗室進行,選擇注入能量為10keV,注入劑量為(20~80)×1011ions/cm2,靶室真空度為10-3Pa。N+注入完畢后,用1 mL無菌水反復沖洗平板上的菌膜使其混合均勻,然后移取0.1 mL于篩選固體培養(yǎng)基中,31℃倒置培養(yǎng)5~7d,統(tǒng)計單菌落個數并計算致死率。
1.2.4 平板初篩方法
篩選培養(yǎng)基是由無機培養(yǎng)基添加1%的植物甾醇制成的,除了植物甾醇幾乎不含有任何碳源成分,因此只有能夠利用植物甾醇的菌株才能在平板中正常生長。將誘變后的菌懸液各取0.1 mL均勻涂布于篩選培養(yǎng)基中,挑選長勢良好的突變株用于下一級篩選。
1.2.5 搖瓶復篩方法
將初篩出來的菌株逐一接種至種子培養(yǎng)基,培養(yǎng)60 h后以10%的接種量轉接至發(fā)酵培養(yǎng)基中,31℃,250 r/min恒溫培養(yǎng)7 d。利用薄層色譜法初步判斷轉化情況,氣相色譜內標法準確測定產率,來驗證菌體的轉化能力。
1.2.6 遺傳穩(wěn)定性實驗
為了檢測突變菌株的遺傳穩(wěn)定性,將復篩所得到的高產突變株每7 d傳代1次,連續(xù)7代,搖瓶發(fā)酵測定產率。
發(fā)酵培養(yǎng)基初始 pH 值分別調為6.5、7.0、7.5、8.0、8.5,接種量為10%,于31℃、250 r/min的恒溫搖床培養(yǎng)7 d后測定產率。
確定最佳pH值后,向發(fā)酵培養(yǎng)基中分別接種6%、8%、10%、12%、14%、16%的種子液,于 31℃、250 r/min的恒溫搖床培養(yǎng)7 d后測定產率。
確定最佳pH值和接種量后,調整搖床轉速分別為180 r/min、200 r/min、220 r/min、240 r/min、260 r/min、280 r/min,于31℃恒溫搖床培養(yǎng)7d后測定產率。
1.4.1 薄層色譜法(TLC)定性分析
用乙酸乙酯以2:1的比例充分萃取發(fā)酵液,9000 r/min離心10 min。取上清液,用定量毛細管取樣5 μL,點于高效G硅膠板。以乙酸乙酯:石油醚=3:7為展開劑展開。展層結束后自然風干薄板,用10%H2SO4為顯色劑噴涂,100℃下加熱顯色至明顯,與標準品比對(見圖1)。
圖1 薄層層析分析圖Fig 1 TLC analysis
1.4.2 氣相色譜內標法(GC)定量檢測
島津GC-2014氣相色譜系統(tǒng):色譜柱為REX-5不銹鋼柱;載氣為N2;載氣流速為1 mL/min;進樣口溫度為300℃,柱溫300℃,F(xiàn)ID檢測器溫度為280℃。含量采用內標法[8]計算,內標物為膽固醇。
相對校正因子的計算:準確稱量相同摩爾量的膽固醇的雄烯二酮標準品,溶于乙酸乙酯中,用20 mL容量瓶定量。進樣得測量結果,計算出相對校正因子。
經計算得出相對校正因子為1.313。
樣品制備:將反應結束后的發(fā)酵液,用2倍體積的乙酸乙酯充分萃取,然后將萃取液旋蒸至少于20 mL,用20 mL容量瓶定量,準確加入與理論產值相同摩爾量的膽固醇標品,進樣得測量結果,計算產品產率。
2.1.1 NTG誘變結果
統(tǒng)計各劑量組生成的單菌落個數,計算不同劑量組的致死率,并每組隨機挑選一定數量長勢良好的單菌落,以出發(fā)菌株為對照,進行搖瓶發(fā)酵篩選后,得到不同劑量組下的正突變率(高于出發(fā)菌株5%以上)。NTG濃度對雄烯二酮產生菌誘變效果的影響見表1。
表1 NTG誘變處理的致死率和正突變率Table 1 The positive lethal rate and mutant rate after NTG mutation
從表1可以看出,致死率隨著NTG濃度的增加而提高,正突變率先隨著誘變菌株死亡率的增加而提高,又后逐漸降低,在NTG濃度為0.6 mg/mL時,正向突變率最大,此時致死率為75.2%?,F(xiàn)代育種理論認為,誘變的微生物致死率在70%~75%時,能夠得到較好的誘變效果,負突變率較低,能得到大量的正突變菌株。因此確定NTG誘變時的最佳濃度為0.6 mg/mL。
在此基礎上對原始菌株進行多次誘變,共篩選出100株長勢良好的突變菌株,進行搖瓶發(fā)酵實驗,并測定產物產率。結果表明,這100株突變菌株中產率明顯提高的有3株,產率分別為65.5%、60.4%、61.9%。將其中產率最高的突變株連續(xù)傳代7次,產率基本保持不變,證明其遺傳穩(wěn)定性良好,將其編號為Mycobacterium sp.N-1,作為N+注入誘變的出發(fā)菌株。
2.1.2 N+注入誘變
以NTG誘變后得到的最高產菌株Mycobacterium sp.N-1為出發(fā)菌株,進行N+注入誘變。N+注入劑量對雄烯二酮產生菌誘變效果的影響見表2。
表2 N+注入誘變處理后的致死率和正突變率Table 2 The positive lethal rate and mutant rate after N+implantation mutation
從表2可以看出,隨著N+注入劑量的增加,菌株死亡率也逐漸增加,當離子劑量為60×1011ions/cm2時,致死率達到75.2%。因此根據現(xiàn)代育種理論選擇離子強度10keV,離子劑量60×1011ions/cm2作為該菌株的最佳離子注入參數。
在此基礎上對菌株Mycobacterium sp.N-1進行多次誘變,共篩選出100株長勢良好的突變菌株,進行搖瓶發(fā)酵實驗,并測定產物產率。這100株突變菌株中產率明顯提高的有3株,產率分別為86.5%、83.9%、82.0%。將產率最高的突變株編號為Mycobacterium sp.N-2,進行連續(xù)傳代實驗。
對得到的高產菌株N-2進行遺傳穩(wěn)定性考察。具體實驗過程:高產菌株單菌落→種子培養(yǎng)基→搖瓶發(fā)酵測雄烯二酮產率,結果如表3所示。連續(xù)傳代7次后產率比較穩(wěn)定,可見菌株N-2是一株穩(wěn)定高產的雄烯二酮產生菌。
表3 突變株N-2的遺傳穩(wěn)定性實驗結果Table 3 The experimental results of genetic stability for mutation strain N-2
挑選經N+注入誘變后性狀大、長勢良好的單菌落進行搖瓶發(fā)酵復篩。結果發(fā)現(xiàn)在注入劑量為60×1011ions/cm2的實驗組中篩選得到高產突變株Mycobacterium sp.N-2,其產率與原始菌株相比提高了37.8%。圖2為突變株N-2轉化產物的GC圖譜,可見雄烯二酮出峰時間在8.9 min左右,膽固醇出峰時間在17.9 min左右。另外底物植物甾醇轉化完全,且?guī)缀鯚o副產物生成,這對后續(xù)純化工藝非常有利。而原始菌株在相同的反應時間內并不能將產物轉化完全,并且隨著轉化時間的延長,副產物的量也隨之增加。
圖2 突變株N-2轉化產物的GC圖譜Fig 2 GC chromatograms of mutation strain N-2 bioconversion
2.4.1 初始pH值對發(fā)酵的影響
培養(yǎng)基的pH值對微生物的生命活動有著很大的影響,主要是對酶的活性產生影響。菌體內含有的酶均有其最適pH值,pH值過高或過低都會使其活性降低,甚至有可能導致酶徹底失活而使轉化不能進行。分別考察pH值6.5、7.0、7.5、8.0、8.5時對誘變菌株發(fā)酵過程的影響,實驗結果如圖3。從圖中可知,pH值對菌株轉化能力有較大影響,初始pH值為7.5時最有利于生長和轉化。
圖3 初始pH值對發(fā)酵過程的影響Fig 3 Effect of initial pH on fermentation process
2.4.2 接種量對發(fā)酵的影響
適當的接種量是正常發(fā)酵的關鍵因素。分別考察接種量為6%、8%、10%、12%、14%、16%時對菌株發(fā)酵過程的影響,實驗結果如圖4。從圖中可知,菌株的最適接種量為12%。接種量低于12%,菌體生長較慢,發(fā)酵周期長,在相同的時間內發(fā)酵產率低。接種量高于12%時菌體雖然生長過快,但是過快的菌體生長會導致營養(yǎng)基質和溶氧不足,菌體容易衰老和自溶,反而不利于產物的生物合成。
圖4 接種量對發(fā)酵過程的影響Fig 4 Effect of incubation volume on fermentation process
2.4.3 搖床轉速對發(fā)酵的影響
搖床轉速的大小能夠影響到培養(yǎng)基中通氣量的多少,而分枝桿菌是好氧菌,若供氧不足會影響微生物的生理代謝和產物生成量。分別考察搖床轉速為180 r/min、200 r/min、220 r/min、240 r/min、260 r/min、280 r/min 時對發(fā)酵過程的影響,實驗結果如圖5。從圖中可知,隨著轉速的不斷增加,菌株降解底物的能力也不斷增加。最終確定最適搖床轉速為260 r/min,此時產率最高。
圖5 轉速對發(fā)酵過程的影響Fig 5 Effect of rotating speed on fermentation process
目前,雄烯二酮的研究內容集中在尋找新的產雄烯二酮菌株[9]或通過基因工程手段對菌株進行分子改造[10],或者采用不同的誘變技術進行選育[11]。Olga V Egorova等人利用菌株對抑菌劑的耐受性篩選出一株突變菌株Mycobacterium sp.VKM Ac-1815D,并對其發(fā)酵條件進一步優(yōu)化,將其產率提高到 70%左右[12]。Vrushali Gulla等人[13]利用UV、NTG、絲裂霉素等方法對一株偶發(fā)分枝桿菌進行誘變選育,得到高產菌株Mycobacterium fortuitum subsp.fortuitum NCIM 5239,產率能達到71.3%。本研究采用NTG法與新型誘變育種手段低能N+注入聯(lián)合誘變選育雄烯二酮高產菌株,其中N+注入誘變在分枝桿菌選育中首次應用,并取得了很好的效果,篩選到一株比原始菌株產率提高了將近37.8%的高產突變株Mycobacterium sp.N-2,且遺傳性狀較為穩(wěn)定。同時通過單因素實驗確定高產突變菌株的最佳發(fā)酵條件為初始pH值7.5,接種量12%,搖床轉速260 r/min。實驗證實這兩種誘變方法聯(lián)合應用在分枝桿菌的育種中是切實可行的。
[1]楊 英,姜紹通.微生物降解甾醇側鏈轉化雄甾-4-烯-3,17-二酮的研究進展[J].微生物學通報,2006,33(6):142-145.
[2]袁超東,董艷苓,杜連祥.分枝桿菌降解大豆甾醇側鏈的發(fā)酵研究[J]. 天津輕工業(yè)學報,2003,18(4):11-13.
[3]王志龍.甾醇側鏈切除的微生物轉化技術[J].工業(yè)微生物,2006,36(3):49-54.
[4]趙 凱,王 穎,王 旋,等.NTG和UV復合誘變選育紫杉醇高產菌株的研究[J].黑龍江大學自然科學學報,2008,25(1):74-76.
[5]余增亮.離子束與生命科學—一個新的研究領域[J].物理,1997,26(6):333-338.
[6]虞 龍,余增亮.一種新型誘變技術在Vc前體(2-KL G)產生菌遺傳改良中的作用[J].高技術通訊,2002,11:41-46.
[7]趙洪英,李 彥,裴鴻嬌,等.N+離子束注入慶大霉素產生菌誘變效應研究[J]. 天津理工學院學報,2001,17(1):14-17.
[8]Vidal M,Becerra J,Mondaca M A,et al.Selection of Mycobacterium sp.strains with capacity to biotransform high concentrations of β-sitosterol[J].Appl Microbiol Biotechnol,2001,57:385-389.
[9]Lin Y L,Song X,F(xiàn)u J,et al.Microbial transformation of phytosterol in corn flour and soybean flour to 4-androstene-3,17-dione by Fusarium moniliforme sheld[J].Bioresource Technology,2009,100:1864-1867.
[10]Wei W,F(xiàn)an S Y,Wang F Q,et al.A new steroid-transforming strain of Mycobacterium neoaurum and cloning of 3-ketosteroid 9α-hydroxylase in NwIB-01 [J].Appl Biochem Biotechnol,2010,162:1446-1456.
[11]Malaviya A,Gomes J.Androstenedione production by biotransformation of phytosterols[J].Bioresource Technology,2008,99(15):6725-6737.
[12]Olga V E,Seraphima A G,Irina F P,et al.Production of androstenedione using mutants of Mycobacterium sp.[J].J Chem Technol Biotechnol,2002,77:141-147.
[13]Vrushali G,Tushar B,Shridhar P.Bioconversion of soysterols to androstenedione by Mycobacterium fortuitum subsp.fortuitum NCIM 5239,a mutant derived from total sterol degrader strain[J].J Chem Technol Biotechnol,2010,85:1135-1141.