付 嘉 熊 斌 司傳平 方艷秋 譚 巖 李繼斌
(濟寧醫(yī)學(xué)院免疫教研室,濟寧272067)
漿細(xì)胞性乳腺炎(Plasma cell mastitis,PCM)是一種非感染性良性乳腺炎癥[1]。PCM的病因至今不完全明了,更多的病理學(xué)的證據(jù)表明在PCM病灶局部浸潤大量漿細(xì)胞、淋巴細(xì)胞、吞噬脂肪的泡沫細(xì)胞等[1,2],提示機體自身免疫應(yīng)答在該病的進展中發(fā)揮重要作用。資料顯示CD4+CD25+Foxp3+調(diào)節(jié)性 T細(xì)胞 (CD4+CD25+Foxp3+regulatory T cell,Treg)數(shù)量減少或功能異常與多種自身免疫病相關(guān)[3-5],但對于 PCM 患者 CD4+CD25+Foxp3+Treg是否有變化國內(nèi)外未見報道。
1.1 臨床資料 本研究PCM患者共58例,年齡25~59歲,平均為(38.6±6.2)歲,均為經(jīng)產(chǎn)婦、非哺乳期婦女。術(shù)前細(xì)針穿刺細(xì)胞學(xué)檢查及術(shù)后冰凍切片檢查確認(rèn)為PCM。按照Hartley的方法根據(jù)臨床表現(xiàn)將 PCM 分為三期[8]:① 急性組 13例(22%):伴有乳房腫塊12例,乳頭溢液5例,乳腺疼痛10例,乳頭內(nèi)陷 6例;②亞急性組 25例(43%):伴有乳房腫塊23例,乳腺疼痛15例,乳頭溢液13例,乳頭內(nèi)陷9例,乳腺瘺形成4例;③慢性組20例(34%):伴有乳房腫塊15例,乳頭溢液12例,乳腺疼痛8例,乳頭內(nèi)陷15例,乳腺瘺形成9例,橘皮樣外觀10例,淋巴結(jié)腫大9例,見表1。
1.2 主要儀器與試劑 流式細(xì)胞儀FACSCalibur(BD公司);抗人 PE-Cy5-anti-CD4、Alexa Fluor488-anti-CD25、PE-anti-CD127及同型對照(均為 eBioscience)、TRIZOL(Invitrogen),第一鏈cDNA合成試劑盒和 Oligo(dT)引物(均為 Fermentas);SYBR Green PCR Master Mix(Toyobo);實時熒光定量PCR檢測儀 ABI Prism 7900(Applied Biosystems);人TGF-β檢測試劑盒(eBioscience)。
1.3 方法
1.3.1 人CD4+CD25+CD127-Treg細(xì)胞的檢測無菌取人抗凝靜脈血,肝素抗凝。取100 μl全血,分別加入抗人PE-Cy5-anti-CD4、Alexa Fluor488-anti-CD25、PE-anti-CD127 各5 μl,另設(shè)同型對照管,補償管,短時渦旋后4℃避光孵育20~30分鐘,加入紅細(xì)胞裂解液2 ml,短時渦旋后室溫孵育15分鐘。以2 ml PBS 1 000 r/min離心洗滌5分鐘,棄上清,將細(xì)胞懸浮于0.5 ml PBS洗滌液中,振蕩混勻后上機檢測,圈定淋巴細(xì)胞為R1門內(nèi)細(xì)胞,CD4+細(xì)胞為R2門內(nèi)細(xì)胞,測定CD25+CD127-細(xì)胞占 CD4+細(xì)胞的百分率。
1.3.2 實時熒光定量PCR檢測人PBMC中Foxp3表達 引物設(shè)計:Foxp3引物P1:5'-GTGGCATCATCCGACAAGG-3'和 P2:5'-TGTGGAGGAACTCTGGGAAT-3',GAPDH 引物 P3:5'-AGAAGGCTGGGGCTCATTTG-3'和 P4:5'-AGGGGCCATCCACAGTCTTC-3'。用Trizol試劑提取人PBMC總mRNA,用DNaseⅠ去除痕量DNA,分光光度計檢測RNA濃度。用第一鏈cDNA合成試劑盒和Oligo(dT)引物合成Foxp3 cDNA,用SYBR Green PCR Master Mix試劑及ABI Prism 7900熒光定量PCR儀定量檢測cDNA?;虻南鄬Ρ磉_量用△△CT法。GAPDH作為標(biāo)準(zhǔn)化的內(nèi)參照,無模板樣本作為陰性對照。
1.3.3 ELISA法檢測人血漿TGF-β含量 無菌取人抗凝靜脈血,肝素抗凝。吸取血漿層凍于-80℃?zhèn)溆?。使用人TGF-β檢測試劑盒檢測血漿TGF-β含量,按照說明書操作。
2.1 各進展期PCM患者的臨床表現(xiàn) 統(tǒng)計各進展期PCM患者臨床表現(xiàn),其中急性期13例(22%),亞急性期25例(43%),慢性期20例(34%)。各期PCM患者都出現(xiàn)乳房腫塊、乳房溢液、乳腺疼痛和乳頭內(nèi)陷等癥狀,亞急性期PCM患者還形成乳腺瘺(4/25),慢性期患者還出現(xiàn)橘皮樣外觀和淋巴結(jié)腫大等癥狀(見表1)。
表1 PCM患者在各期的臨床表現(xiàn)Tab.1 Clinical manifestation of patients with plasma cell mastitis during three stages
2.2 PCM患者外周血中CD4+CD25+CD127-T細(xì)胞百分率變化 流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果顯示,三組PCM患者外周血CD4+CD25+CD127-T細(xì)胞在CD4+T細(xì)胞中的百分率均較正常組降低(P<0.05),其中急性期PCM組下降明顯(P<0.01)。乳腺癌組CD4+CD25+CD127-T細(xì)胞百分率與對照組相比,明顯升高(P<0.05)。見圖1。
2.3 PCM患者外周血PBMC中轉(zhuǎn)錄因子Foxp3表達變化 亞急性組PCM患者外周血PBMC中轉(zhuǎn)錄因子Foxp3表達與正常組相比降低(P<0.05),急性期PCM組Foxp3表達下降明顯(P<0.01)。乳腺癌組外周血PBMC中轉(zhuǎn)錄因子Foxp3表達與對照組相比,明顯升高(P<0.05)。見圖2。
2.4 PCM患者血漿TGF-β水平變化 三組PCM患者血漿TGF-β水平與正常組相比均降低(P<0.05),其中急性期PCM組血漿TGF-β水平下降明顯(P<0.01)。乳腺癌組血漿TGF-β水平與對照組相比,明顯升高(P<0.05)。見圖3。
圖1 PCM患者外周血中CD4+CD25+CD127-T細(xì)胞百分率變化Fig.1 Detection of CD4+CD25+CD127-cells in acute PCM,subacute PCM and chronic PCM
圖2 PCM患者外周血Foxp3 mRNA的表達Fig.2 Foxp3 mRNA expression in patients with PCM
圖3 PCM患者血漿TGF-β水平Fig.3 TGF-β concentration in plasma from patients with PCM
調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cells,Treg)可根據(jù)來源不同分為自然 Treg(nTreg)和適應(yīng)性 Treg(iTreg)。nTreg在胸腺中分化、成熟,主要來源于CD4+CD25-胸腺細(xì)胞,在CD4+T細(xì)胞的自然選擇過程中生成并獲得CD4+CD25+Foxp3+表型。iTreg來自于外周的CD4+T細(xì)胞,包括三個亞群:Tr1、Th3和 Foxp3+表型 iTreg[7]。CD4+CD25+Treg 是調(diào)節(jié)性T細(xì)胞中最受關(guān)注的一群,其職能是維持機體自身耐受、控制移植排斥和超敏反應(yīng),在感染和腫瘤時抑制效應(yīng)細(xì)胞功能,并防止自身免疫病的發(fā)生[9-12]。CD4+CD25+Treg占人和小鼠外周血CD4+T細(xì)胞的5% ~10%,除高表達CD25(IL-2受體α鏈)外,還表達 CD127-、CD45RBlow、GITR、CTLA-4、LAG-3、CCR4、CCR7、CD62Lhigh及 neuropilin-1 等表面分子[7]。叉頭/翼狀螺旋轉(zhuǎn)錄因子 Foxp3(Forkhead/winged helix transcription factor)對CD4+CD25+Treg細(xì)胞在胸腺內(nèi)發(fā)育和功能維持是必需的[13]。而Treg的另一個重要標(biāo)志CD127-(IL-7Ra-)常被用于區(qū)別于效應(yīng)性 CD4+T 細(xì)胞及其分離[6,7]。CD4+CD25+Treg的靶細(xì)胞涉及 CD4+CD25-T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞、B細(xì)胞、單核細(xì)胞和DC,其作用于靶細(xì)胞的方式有:分泌抑制性細(xì)胞因子TGF-β1、IL-35和IL-10;細(xì)胞-細(xì)胞直接接觸的溶細(xì)胞作用;干擾靶細(xì)胞代謝;調(diào)節(jié)DC的成熟及功能[7]。
漿細(xì)胞性乳腺炎(PCM)是一種以非周期性乳房疼痛、乳頭溢液、乳頭凹陷、乳暈區(qū)腫塊、非哺乳期乳房膿腫、乳頭部瘺管為主要臨床表現(xiàn)的炎癥樣特殊類型乳腺良性疾患,占乳房良性病變的4% ~5%。近年來發(fā)病率呈逐年上升趨勢[2]。PCM臨床表現(xiàn)復(fù)雜,故而命名也不盡相同,如乳管周圍型乳腺炎、乳管導(dǎo)管擴張癥等,有學(xué)者認(rèn)為每種病名僅反映其疾病過程的某一病理階段。根據(jù)Hartley的方法可將PCM分為三期[8]:急性期:具有乳腺急性炎癥的表現(xiàn),可在乳暈周圍出現(xiàn)紅腫、疼痛,伴輕度發(fā)熱,全身中毒癥狀不明顯;亞急性期:急性炎癥已消退,遺留下硬結(jié)或腫塊,也可繼發(fā)感染形成乳腺瘺;慢性期:乳房腫塊縮小,可出現(xiàn)乳頭內(nèi)陷,甚至橘皮樣改變或淋巴結(jié)腫大,膿腫反復(fù)發(fā)作、破潰或形成竇道,腫塊可持續(xù)數(shù)年不等。PCM病理學(xué)證據(jù)表明乳腺導(dǎo)管周圍出現(xiàn)脂肪壞死及大量漿細(xì)胞浸潤,淋巴細(xì)胞彌漫性浸潤,其中以漿細(xì)胞浸潤更為明顯,另有數(shù)量不等的泡沫狀組織細(xì)胞、多核巨細(xì)胞和上皮樣細(xì)胞形成肉芽腫[14]。將PCM患者手術(shù)切除的乳腺病灶區(qū)組織勻漿接種于BALB/c小鼠,可建立PCM的動物模型[15]。提示PCM是一種自身免疫反應(yīng)參與的疾病。
由于PCM的臨床表現(xiàn)及輔助檢查無特異性,故極易誤診,其中1/3病例被誤診為乳腺癌。故而,在對PCM進行鑒別診斷時,排除乳腺癌是很重要的一個方面。研究顯示乳腺癌患者CD4+CD25+Treg數(shù)量明顯升高,參與癌癥的進展[16]。為研究在自身免疫病中發(fā)揮重要作用的CD4+CD25+Treg是否參與PCM的疾病發(fā)生與進展,我們采用流式細(xì)胞術(shù)檢測三組不同進展期PCM患者及乳腺癌對照組患者外周血CD4+CD25+CD127-Treg細(xì)胞百分率;并以熒光定量PCR檢測轉(zhuǎn)錄因子Foxp3表達,ELISA檢測血漿TGF-β含量。結(jié)果顯示,三組PCM患者外周血CD4+CD25+CD127-Treg數(shù)量、外周血PBMC中Foxp3表達及血漿TGF-β水平均下降(P<0.05),其中急性PCM組下降最為明顯(P<0.01),提示PCM的疾病發(fā)生及進展可能涉及Treg功能紊亂及重新分布。結(jié)果同時顯示與PCM臨床癥狀易發(fā)生混淆的乳腺癌患者外周血中CD4+CD25+CD127-Treg數(shù)量、外周血PBMC中Foxp3表達及血漿TGF-β水平均升高(P<0.05),與報道一致[16]。本研究顯示CD4+CD25+Treg在漿細(xì)胞乳腺炎疾病進展中發(fā)揮作用,并且對PCM患者CD4+CD25+Treg數(shù)量的檢測也可為乳腺癌的鑒別診斷提供線索。
1 Ming J,Meng G,Yuan Q et al.Clinical characteristics and surgical modality of plasma cell mastitis:analysis of 91 cases[J].Am Surg,2013;79(1):54-60.
2 高雅軍,馬祥君,汪 潔 et al.漿細(xì)胞性乳腺炎的研究進展[J].中華婦幼臨床醫(yī)學(xué)雜志,2012;8(6):792-795.
3 Thiruppathi M,Rowin J,Li Jiang Q et al.Functional defect in regulatory T cells in myasthenia gravis[J].Ann N Y Acad Sci,2012;12(74):68-76.
4 Fujio K,Okamura T,Sumitomo S et al.Regulatory cell subsets in the control of autoantibody production related to systemic autoimmunity[J].Ann Rheum Dis,2013;72(2)85-89.
5 Nishimoto T,Kuwana M.CD4(+)CD25(+)Foxp3(+)regulatory T cells in the pathophysiology of immune thrombocytopenia[J].Semin Hematol,2013;50(1):43-49.
6 Liu W,Putnam A L,Yu Z X et al.CD127 expression inversely correlates with Foxp3 and suppressive function of human CD4+Treg cells[J].J Exp Med,2006;203(12):1701-1711.
7 Elaine V Louren?o,AntonioLa Cava.Natural regulatory T cells in autoimmunity[J].Autoimmunity,2011;44(1):33-42.
8 Hartley M N,Stewart J,Benson E A et al.Subareolar dissection for duct ectasia and periareolar sepsis[J].Br J Surg,1991;78(10):1187-1188.
9 Wing K,Sakaguchi S.Regulatory T cells exert checks and balances on self tolerance and autoimmunity [J].Nat Immunol,2010;11(1):7-13.
10 Burrell B E,Nakayama Y,Xu J et al.Regulatory T cell induction,migration,and function in transplantation [J].J Immunol,2012;189(10):4705-4711.
11 Maazi H,Lam J,Lombardi V et al.Role of plasmacytoid dendritic cell subsets in allergic asthma [J].Allergy,2013;68(6):695-701.
12 Lal A,Chan L,Devries S et al.FOXP3-positive regulatory T lymphocytes and epithelial FOXP3 expression in synchronous normal,ductal carcinoma in situ,and invasive cancer of the breast[J].Breast Cancer Res Treat,2013;139(2):381-390.
13 Ohkura N,Kitagawa Y,Sakaguchi S.Development and maintenance of regulatory T cells[J].Immunity,2013;38(3):414-423.
14 左文述.現(xiàn)代乳腺腫瘤學(xué)[M].第2版.濟南:山東科技出版社,2006:1395-1397.
15 Yu J J,Bao S L,Yu S L et al.Mouse model of plasma cell mastitis[J].J Transl Med,2012;10(1):11.
16 Sisirak V,F(xiàn)aget J,Gobert M et al.Impaired IFN-α production by plasmacytoid dendritic cells favors regulatory T-cell expansion that may contribute to breast cancer progression [J].Cancer Res,2012;72(20):5188-5197.