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    聯(lián)合應用CD3/CD28單克隆抗體對小鼠T淋巴瘤細胞EL4活化的影響①

    2013-11-28 02:03:40劉廣超馬遠方
    中國免疫學雜志 2013年6期
    關鍵詞:單克隆細胞周期淋巴瘤

    婁 強 張 薇 劉廣超 馬遠方

    (河南大學醫(yī)學院河南省抗體藥物工程實驗室細胞與分子免疫重點實驗室,開封475004)

    T細胞的充分活化需要雙信號刺激,第一信號由TCR/CD3識別抗原提呈細胞(Antigen presenting cell,APC)表面的抗原肽-MHC復合物啟動,第二信號由T細胞和APC間共刺激分子的相互作用啟動,其中B7/CD28是最重要的協(xié)同刺激分子。單獨的CD3抗體刺激會使T細胞失能;單獨的CD28抗體也不能刺激T細胞活化[1,2]。聯(lián)合應用CD3/CD28抗體研究人類和小鼠T細胞體外活化的方法一直被廣泛應用。雖然許多細胞表面受體可以通過TCR增強信號,但CD28的確比其他共刺激分子更加有效。已有報導聯(lián)合應用CD3/CD28抗體刺激人外周血單個核細胞(PBMC),使其在體外得到擴增活化[3],并且CD28共刺激能明顯加強CD3誘導的小鼠脾臟T細胞的增殖,使IL-2的分泌量上調(diào),并誘導T細胞信號轉導通路多種基因的mRNA發(fā)生變化[4]。已知不同濃度的CD3單抗和CD28單抗、刺激的不同時間等因素均對人T淋巴細胞的增殖產(chǎn)生影響,第一信號(CD3單抗)呈濃度依賴性地促使T淋巴細胞增殖,濃度達到峰值(12.5 μg/ml)后,再加大濃度也不能使其作用增加;第二信號(CD28單抗)則表現(xiàn)為雙向調(diào)節(jié),高于或低于最佳濃度都使其刺激T細胞增殖的水平降低。T細胞單獨接受抗CD3抗體24小時或抗CD28抗體16小時后,T細胞對相應的另一信號刺激呈低反應性[5]。聯(lián)合應用CD3/CD28單克隆抗體對T淋巴瘤細胞活化影響的模式有待進一步探索。

    EL4屬于小鼠T淋巴瘤細胞系,來源于由9,10-二甲基-1,2苯并蒽誘生的C57/BL/6N小鼠T淋巴瘤細胞,曾應用于H-2抗體和CD3抗體共刺激T細胞活化的研究[6]。EL4細胞分為 PMA敏感型和PMA抵抗型,PMA抵抗型EL4細胞能夠分泌IL-2,而PMA敏感型EL4細胞不分泌IL-2。評價T細胞活化最重要的因素即為細胞分泌IL-2的水平,因此可以應用PMA敏感型EL4細胞研究T細胞活化的模式。在本研究中,我們將從IL-2及細胞核轉錄因子的分泌、細胞增殖與細胞周期三個方面分析EL4細胞的活化能力。

    1 材料與方法

    1.1 細胞和試劑 小鼠淋巴瘤細胞EL4(購自北京鼎國昌盛生物技術有限責任公司)為懸浮生長,用DMEM基礎培養(yǎng)基(Gibco)加入10%無支原體胎牛血清FBS(浙江天杭生物科技有限公司),于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。維持細胞濃度在0.1×106~1×106個/ml之間,2~3天換液一次。

    1.2 EL4細胞的活化及其細胞因子IL-2的誘生96孔酶標板放入超凈臺中紫外照射半個小時以上。將抗CD3(sc-18871,Santa cruz)和 CD28抗體(sc-12727,Santa cruz)用PBS稀釋至不同濃度包被其中,4℃過夜,將抗體吸出,PBS洗一遍,拍干孔內(nèi)液體,加入EL4細胞 (2×105個/200 μl),PMA 組無需包被,將PMA(50 ng/ml)直接加入到細胞培養(yǎng)液中即可,37℃、5%CO2培養(yǎng) 24、48、72 小時分別收集細胞培養(yǎng)上清。

    1.3 EL4細胞分泌IL-2水平的ELISA檢測 按Mouse IL-2 sunnyELISA試劑盒(購自聯(lián)科生物技術有限公司)說明測定IL-2的含量。準備所有的試劑盒標準品,洗液洗板兩次,浸泡板條15分鐘,每孔加入50 μl樣本稀釋液,15分鐘內(nèi)加入標準品、樣品和對照品,加入50 μl檢測抗體,室溫孵育3小時,洗板6次,加入100 μl過氧化物酶,室溫孵育45分鐘,洗板6次,加入100 μl顯色底物,避光,室溫孵育10~30分鐘,加入100 μl終止液,30分鐘內(nèi),在450 nm波長檢測OD值。Varloskan Flash多功能酶標儀(Thermo 3001)測定EL4細胞培養(yǎng)上清中IL-2的含量。

    1.4 細胞增殖實驗 按細胞增殖與毒性檢測試劑盒7Sea-CCK-8(上海七海復泰生物科技有限公司)說明測定EL4細胞活化前后增殖情況。細胞的活化方法同上,此時加入IL-2單克隆抗體(sc-34797,Santa cruz)刺激組(50 μg/ml)。每孔接種4 000個細胞(200 μl/孔),37℃、5%CO2培養(yǎng)24、48、72 小時后,每孔加入20 μl 7Sea-CCK-8溶液,在細胞培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)孵育1~4小時,用多功能酶標儀測定450 nm處的吸光度。

    1.5 細胞周期實驗 按細胞周期與凋亡檢測試劑盒(上海七海復泰生物科技有限公司)說明檢測CD3/CD28抗體或PMA刺激對EL4細胞周期的影響。1 000 r/min離心5分鐘沉淀細胞后,用1 ml預冷的PBS重懸,再用1 000 r/min離心5分鐘沉淀細胞,加入1 ml預冷的70%乙醇輕輕混勻,4℃固定過夜,1 000 r/min離心5分鐘沉淀細胞后,用1 ml預冷的PBS重懸,再用1 000 r/min離心5分鐘沉淀細胞,加入碘化丙啶染色液0.5 ml,輕輕混勻重懸細胞,37℃避光溫育30分鐘后,上流式細胞儀檢測。

    1.6 RNA的提取 收集細胞,加入1 ml Trizol(Invitrogen),充分混勻用來破碎細胞,加入三氯甲烷(洛陽昊華化學試劑廠)200 μl,15~30℃放置2分鐘,13 000 r/min,4℃離心15分鐘。取上清加入無水乙醇1 ml,混勻,13 000 r/min,4℃離心15分鐘,棄上清。加入75%酒精(DEPC水配制)1 ml,洗滌離心10分鐘,傾去上清,用吸水紙吸干殘余酒精,加入約50 μl DEPC水混勻,58℃ 10分鐘,加入 DNA裂解酶,37℃ 15分鐘,75℃ 5分鐘,最后加入RNA酶抑制劑(康為世紀),紫外分光光度計(DU640,Beckman Coulter)測RNA的濃度。

    1.7 cDNA的合成 逆轉錄試劑盒(康為世紀)RNA 模板 1 ng ~ 5 μg,5 × RT buffer 4 μl,0.1 mol/L,DTT 2 μl,dNTP mix(10 mmol/L)1 μl,隨機引物(100 μmol/L)1 μl,super RT(200 U/μl)1 μl,無RNA酶 DEPC水補足至總體系為20 μl。42℃、50分鐘,70℃、15分鐘,紫外分光光度計測cDNA的濃度,置-20℃或-80℃凍存?zhèn)溆谩?/p>

    1.8 Real time PCR反應 將 cDNA樣品稀釋為200 ng/μl加入 1 μl,2 × SYBR Green Real time PCR Master Mix(TOYOBO)10 μl,10 × Plus 溶液 2 μl,上下游引物(均為 10 μmol/L)2.4 μl,RNase-Free water 4.6 μl,每管 20 μl反應體系,每個樣品 3 個復孔。置于實時定量PCR儀(corbett research RG-6000)進行PCR反應,設置程序為:95℃ 5秒,55℃10秒,72℃ 15秒,擴增40個循環(huán),收集熒光。計算每組每個基因的ΔCt,再按公式:ΔΔCt=ΔCt(組2)-ΔCt(組1),計算兩組中每個基因的 ΔΔCt,通過 2-ΔΔCt計算組2與組1對應基因的表達差異。

    1.9 統(tǒng)計學方法 采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件進行t檢驗,P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。

    2 結果

    2.1 CD3/CD28抗體在不同濃度及不同時間點刺激EL4分泌IL-2水平(pg/ml)比較 小鼠淋巴瘤細胞EL4在未受到任何刺激的情況下分泌IL-2的水平很低,經(jīng)抗CD3(25 μg/ml)抗體和抗CD28(2 μg/ml)抗體刺激48小時后,EL4分泌IL-2的水平顯著升高(62.54 ±2.19)pg/ml,P <0.05,見表1。

    2.2 聯(lián)合應用CD3/CD28抗體對EL4細胞增殖的影響 采用CCK-8法觀察了CD3/CD28抗體對EL4細胞增殖的影響。CD3/CD28抗體作用于EL4細胞至72小時時,隨著CD3/CD28抗體濃度的增加,對細胞增殖的促進作用逐漸增強。同時加入IL-2抗體并不影響EL4細胞的增殖(圖1)。

    表1 聯(lián)合應用CD3/CD28單克隆抗體對EL4細胞分泌IL-2(pg/ml)的影響Tab.1 Influence of combined application of CD3/CD28 monoclonal antibody on IL-2(pg/ml)secreted by EL4 cells

    圖1 IL-2抗體及聯(lián)合應用CD3/CD28單克隆抗體對EL4細胞增殖的影響Fig.1 Effect of IL-2 antibody and combined application of CD3/CD28 monoclonal antibody on EL4 cell proliferation

    2.3 聯(lián)合應用CD3/CD28抗體對EL4細胞周期的影響 CCK-8法顯示EL4細胞經(jīng)過CD3/CD28抗體刺激后,增殖能力顯著增加(P<0.05),進而通過流式細胞儀檢測CD3/CD28抗體對EL4細胞周期的影響。CD3/CD28抗體刺激組與未刺激組相比,EL4細胞周期未出現(xiàn)明顯的G1期阻滯(圖2)。

    圖2 聯(lián)合應用CD3/CD28單克隆抗體對EL4細胞周期的影響Fig.2 Effect of combined application of CD3/CD28 monoclonal antibody on EL4 cell cycle

    圖3 聯(lián)合應用CD3/CD28單克隆抗體對EL4細胞IL-2及核轉錄因子NF-κB,NF-AT表達的影響Fig.3 Effect of combined application of CD3/CD28 monoclonal antibody on the expression of IL-2 and nuclear transcription factors NF-κB, NF-AT in EL4 cells

    2.4 聯(lián)合應用CD3/CD28抗體刺激對EL4細胞IL-2及核轉錄因子基因表達影響的定量分析 為探討CD3/CD28抗體介導的IL-2調(diào)節(jié)的分子機制,在EL4細胞培養(yǎng)體系中聯(lián)合加入抗CD3/CD28單克隆抗體,通過競爭性PCR定量檢測其對IL-2 mRNA及轉錄因子NF-κB和 NF-AT的影響。結果表明,抗CD3/CD28抗體可明顯促進 IL-2、NF-κB和 NF-AT mRNA 合成(P <0.05,圖3)。

    3 討論

    在本研究中,我們發(fā)現(xiàn)包被CD3/CD28抗體于細胞培養(yǎng)板上刺激T淋巴瘤EL4細胞活化的效果比在培養(yǎng)液中加入可溶性CD3/CD28抗體更明顯。這可能是由于EL4細胞接觸的包被CD3/CD28抗體有限,從而更容易刺激細胞增殖;并且,包被CD3抗體可能使EL4細胞表面CD3分子交連,使其胞內(nèi)區(qū)互相靠近,胞內(nèi)區(qū)的ITAM(免疫受體酪氨酸活化基序)易于被蛋白酪氨酸激酶(PTK)磷酸化,進而刺激EL4細胞的活化。CD3抗體通過激活多種蛋白酪氨酸激酶,再經(jīng)一系列信號傳遞激活轉錄因子調(diào)節(jié)基因表達,使細胞活化[7]。CD28通過 PI3K、Grb2、A-SMase、PKC-θ等多種信號分子傳遞活化信號,亦可通過Itk、MPK等傳導活化抑制信號,從而調(diào)控T細胞的活化、增殖等作用。已知多種細胞因子參與T細胞增殖和分化過程,包括IL-2、NF-AT、NF-κB 等[8,9],未激活 T 細胞僅表達低親和力 IL-2R,而激活的T細胞可表達高親和力IL-2R并分泌IL-2。通過自分泌及旁分泌作用,IL-2與T細胞表面IL-2R結合,介導T細胞增殖和分化[10,11]。我們發(fā)現(xiàn)CD3/CD28單克隆抗體共刺激EL4細胞明顯增加IL-2及核轉錄因子的表達,為進一步評價EL4細胞作為研究T細胞活化的模型細胞提供了重要的參考價值,也對T細胞活化信號轉導通路的研究有重要意義。

    聯(lián)合應用CD3/CD28單克隆抗體活化人PBMC[12]、人T細胞、小鼠脾臟細胞及EL4細胞等不同的細胞需要抗體刺激的濃度不同,這可能與細胞對抗原提呈細胞提呈不同抗原反應的能力不同有關。如果游離的CD3單抗?jié)舛冗^大,可能導致由CD3抗體導致的CD3受體交連后傳遞抑制信號,細胞結合過多CD3抗體不但不會刺激T細胞,而且會導致細胞凋亡。我們發(fā)現(xiàn),單純應用CD3單抗或者CD28單抗刺激EL4細胞后,不能顯著促進IL-2的分泌,而聯(lián)合應用CD3/CD28單抗能夠明顯刺激EL4細胞分泌IL-2。EL4細胞經(jīng)過CD3/CD28抗體刺激后,增殖能力顯著增加,而細胞周期卻不受明顯影響,這可能是因為EL4細胞本身屬于無限增殖狀態(tài)的細胞系,其不需要成熟為分化完全的細胞,也不需要參與免疫應答。

    本研究中應用的小鼠T淋巴瘤EL4細胞株自身不分泌作為T細胞活化標志的IL-2,與原代T細胞相比不需要細胞分離分選等提取過程,可以更方便的應用于體外T細胞的活化的研究;另外,EL4細胞在未受到任何刺激的情況下分泌IL-2的水平很低,經(jīng)聯(lián)合應用CD3/CD28抗體刺激后,分泌IL-2的水平顯著升高,所以認定未經(jīng)抗體刺激的EL4細胞為非活化的T細胞,為T細胞體外增殖活化及信號轉導通路研究提供了細胞模型。

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    12 駱 群,呂 明,于 鳴et al.抗CD28抗體協(xié)同刺激增強抗CD3抗體體外激活T淋巴細胞并降低TGF-β的表達[J].中國實驗血液學雜志,2006;14(3):547-551.

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