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    MSTN RNAi雙元表達載體構建及效果試驗

    2013-11-22 05:22:44隋世慧
    中國獸醫(yī)雜志 2013年7期
    關鍵詞:成肌細胞雙酶電泳

    胡 蘭,隋世慧,吳 丹

    (沈陽農(nóng)業(yè)大學畜牧獸醫(yī)學院,遼寧 沈陽110866)

    肌肉生成抑制素基因(myostatin,MSTN)是1997年美國的John Hopkins大學醫(yī)學院的一個研究小組在研究轉化生長因子-β(TGF-β)時發(fā)現(xiàn)的一類生長因子,被命名為生長/分化因子-8(GDF-8)。由于GDF-8是一種能夠對肌肉生長起負調控作用的分泌蛋白,所以又命名為肌肉生成抑制素。McPherron研究發(fā)現(xiàn),MSTN基因缺失鼠肌肉增大,骨骼肌肌群分布更廣泛,體重約是野生鼠的2倍[2]。Kambadur發(fā)現(xiàn),雙肌牛中該基因發(fā)生突變,結果在同樣喂食條件下,雙肌牛比普通牛多提供30% 的肉產(chǎn)品,極大地提高了飼料轉化效率[3]。

    MSTN基因主要通過抑制成肌細胞的增殖與分化促進肌肉的生長[4],任何能夠抑制其表達的方法都會影響到動物體肌肉的生成。2002年,Lin J等建立了 MSTN基因敲除鼠模型[5],2010年,Jain H等報道了利用RNA干擾法完成了羊成纖維細胞MSTN基因缺失模型的建立[6]。

    本試驗旨在根據(jù)RNA干擾基因表達的原理,構建高效抑制MSTN基因表達的RNAi雙元表達載體,建立非基因水平上的 MSTN“Konck-out”模型,從而為進一步研究該基因的作用機理、有效控制畜禽肌肉生長,以及治療肌營養(yǎng)不良等疾病提供重要的試驗依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 試驗動物 制備雞原代成肌細胞時取材于El4海藍雞雞胚(雌雄不限),雞胚由沈陽農(nóng)業(yè)大學種雞場提供。

    1.1.2 菌株和質粒 工程菌株 DH5α、scs110、質粒pHANNIBAL、質粒pEGFP-N1均為本實驗室保存產(chǎn)品;TA克隆載體pMD-18Tsimple vector,購自寶生物工程(大連)有限公司。

    1.1.3 工具酶和主要試劑 Western blotting試劑盒、限制性內切酶和DNA Ladder Marker等,均購自寶生物工程(大連)有限公司;一抗為GDF-8,購自SCBT公司;二抗為HRP-兔抗羊IgG,購自北京華特生生物公司。

    1.1.4 引物 引物一:上游5′-CTCGAGCTGGCAGAGTATTGATGTG-3′(引入XhoⅠ酶切位點);

    下 游 5′-GGTACCCTGGGATTTGCTTTGT-GT-3′(引入KpnⅠ酶切位點);

    引 物 二:上 游 5′-GGATCCCTGGCAGAGTATTGATGTG-3′(引入BamHⅠ酶切位點);

    下 游 5′-ATCGATCTGGGATTTGCTTTGTGT-3′(引入ClaⅠ酶切位點)。

    1.2 方法

    1.2.1 目的片段的PCR擴增 反應條件如下:94℃預變性2min,94℃ 30s、55℃ 30s、72℃ 1 min,30個循環(huán),72℃延伸10min,將PCR產(chǎn)物分別命名為M1和M2。

    1.2.2 TA克隆 PCR產(chǎn)物經(jīng)電泳、克隆、測序,將鑒定正確的克隆命名為p-M1和p-M2。

    1.2.3 目的片段的亞克隆 雙酶切pHANNIBAL、p-M1和p-M2,電泳回收、酶切鑒定、連接,將已插入正向和反向目的片段的中間載體命名為pHA-M1-M2。

    1.2.4 MSTN RNAi雙元表達載體的構建 用BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切pHA-M1-M2和pEGFPN1,電泳回收相應的目的片段,連接,轉化,卡那抗性篩選、提取質粒,單、雙酶切鑒定。

    1.2.5 成肌細胞培養(yǎng) 常規(guī)方法培養(yǎng)14日齡鴨胚成肌細胞,轉染1h后,再加入完全培養(yǎng)基至5mL/孔,繼續(xù)培養(yǎng)48h。

    1.2.6 轉染細胞中MSTN蛋白表達檢測 轉染后48h,SDS-PAGE電泳分離蛋白,蛋白質轉移到PVDF膜,30mA恒流過夜,封閉過的膜加入一抗室溫孵育1.5h,加入HRP標記的二抗室溫孵育1 h,經(jīng)X膠片曝光顯影。

    2 結果與分析

    2.1 MSTN RNAi雙元表達載體目的片段的獲得以MSTN cDNA為模版,PCR擴增產(chǎn)物電泳圖(圖1)可見清晰條帶,分別命名為 M1和 M2。M1和M2克隆后經(jīng)單、雙酶切(圖2)鑒定,序列測定結果與預期片段相符。

    圖1 PCR擴增產(chǎn)物電泳

    為了獲得構建MSTN RNAi雙元表達載體所需的目的片段,分別利用KpnⅠ和XhoⅠ對p-M1單、雙酶切,分別利用ClaⅠ和BamHⅠ對p-M2單、雙酶切,電泳結果(圖3)與預期完全一致。回收兩個雙酶切片段。

    2.2 目的片段亞克隆的鑒定結果 試驗中以pHANNIBAL為中間載體,將XhoⅠ/KpnⅠ雙酶切回收的片段正向插入pHANNIBAL,經(jīng)回收、電泳鑒定(圖4)為陽性的質粒命名為pHA-M1;然后將經(jīng)ClaⅠ/BamHⅠ雙酶切回收的片段反向插入質粒pHA-M1,電泳鑒定(圖5)為陽性的質粒命名為目的序列并命名為pHA-M1-M2。

    圖5 pHA-M1-M2經(jīng)XhoI和BamHI的單、雙切電泳圖

    2.3 MSTN RNAi雙元表達載體pEGFP-N1-M1-M2的構建 用BamHⅠ/XhoⅠ雙酶切重組質粒pHA-M1-M2和表達載體pGEFP-N1,連接、轉化、培養(yǎng)、提質粒后對重組質粒進行單、雙酶切鑒定(圖6),雙酶切后電泳檢測出現(xiàn)了4.7kb和1.5kb左右的兩個片段,結果與設計一致。借助中間載體的幾次亞克隆,成功構建了含有MSTN-RNAi表達盒的雙元表達載體pEGFP-N1-M1-M2(圖7)。

    圖6 pEGFP-N1-M1-M2 酶切鑒定電泳圖

    2.4 熒光蛋白的表達檢測 將已構建的pEGFPN1-M1-M重組質粒轉染成肌細胞,48h后,在熒光顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)有綠色熒光如(圖8),說明成功轉染。

    2.5 pEGFP-N1-M1-M 對 MSTN 蛋白表達的影響 轉染48h后,SDS-PAGE蛋白電泳結果(圖9)顯示對照組Ⅰ(空白組)和對照組Ⅱ(空載體組)在42kD處有一明顯蛋白條帶,而試驗組在42kD處幾乎看不見有蛋白條帶。Western blot對成肌細胞MSTN蛋白表達結果(圖10)表明,pEGFP-N1-M1-M2轉染48h后,能夠明顯抑制成肌細胞中MSTN基因的表達。

    3 討論

    本試驗以TA載體為克隆載體,pHANNIBAL為中間載體,表達載體選用了pEGFP-N1-M1-M2。pHANNIBAL是含有丙酮酸磷酸激酶(PDK)內含子序列的亞克隆載體,在內含子的兩側各有一個多克隆位點,該中間載體內含子邊界序列在形成發(fā)夾RNA(hpRNA)結構中十分關鍵,也是產(chǎn)生RNAi的關鍵所在[7]。將目的片段從TA克隆載體上切下后,以正、反兩個方向插到中間載體上,經(jīng)表達能夠形成完整的發(fā)夾結構。該發(fā)夾結構在Dicer酶的作用下被切成長度在19~22nt的siRNA雙鏈,siRNA雙鏈產(chǎn)生后,siRNA結合到核糖核酸酶復合物上被切割成具有同源序列的基因轉錄體,最終導致基因沉默效應[8]。

    pEGFP-N1-M1-M2轉染成肌細胞48h后,可檢測到綠色熒光蛋白表達,該雙元表達載體可明顯抑制成肌細胞MSTN基因的表達。該試驗為有效抑制成肌細胞MSTN基因的表達提供了一條新的途徑。但是,該雙元表達載體是否對動物體其他細胞的蛋白生成有影響,如何將其應用于畜牧生產(chǎn)或者某些疾病的臨床治療等諸多問題還有待進一步研究。

    [1] Lee S J,Mcpherron A C.Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-beta superfamily member[J].Nature,1997,387:83-90.

    [2] Mcpherron A C,Lee S J.Suppression of body fat accumulation in myostatin deficient mice[J].Clin intrest,1997,109(5):595-601.

    [3] Kambadur R,Sharma M,Smith T P,etal.Mutations in myostatin in double-muscled Belgian Blue and Piedmontese cattle[J].Genome Res,1997,7(9):910-916.

    [4] Joulia-Ekaza D,Cabello G.Myostatin regulation of muscle development:Molecular basis,natural mutations,physiopathological aspects[J].Experimental Cell Research,2006,312(13):2401-2414.

    [5] Lin J,Arnold HB,Della-Fera MA,etal.Myostatin knockout in mice increases myogenesis and decreases adipogenesis[J].Biochem Biophys Res Commun,2002,291(3):701-706.

    [6] Jain H,Singh S,Kadam M,etal.Knockdown of the myostatin gene by RNA interference in caprine fibroblast cells[J].J Biotechnol,2010,145(2):99-102.

    [7] Helterline D L,Garikipati D,Stenkamp D L,etal.Embryonic and tissue-specific regulation of myostatin-1and-2gene expression in zebrafish[J].Gen Comp Endocrinol,2011,151(1):90-97.

    [8] Hamada M,Ohtsuka T,Kawaida R,etal.Effects on RNA interference in gene expression(RNAi)in cuLtured mammalian cells of mismatches and the introduction of chemical modifications at the 3’-ends of siRNAs[J].Antisense Nucleic Acid Drug Dev,2002,12:301-309.

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