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    硫脲殼聚糖銅配合物與鯡魚精DNA相互作用的研究

    2013-10-25 10:23:38李小芳馮小強
    天然產(chǎn)物研究與開發(fā) 2013年10期
    關(guān)鍵詞:共軛伏安吸收光譜

    李小芳,馮小強*,楊 聲

    1天水師范學(xué)院生化學(xué)院,天水 741001;2定西師專,定西 743000

    DNA是生命中重要的遺傳物質(zhì),同時也是很多藥物的靶點。藥物與DNA相互作用的研究不僅有助于揭示藥物的作用機理,同時對于新藥的研發(fā)也具有重要的意義[1]。銅離子具有抗炎、殺菌、抗癌、抗凝血等藥理作用。許多生物酶都依靠與銅元素的反應(yīng)來激發(fā)活性,從而完成在生物體中對新陳代謝過程的催化作用。因此,銅配合物的合成及生物活性的研究成為一個焦點領(lǐng)域。硫脲殼聚糖銅(Thiourea-chitosan-Cu,簡稱 TUCS-Cu),對 E.coli和 St.a(chǎn)ureus具有顯著的抑菌性能[2]。為了揭示其抑菌機理,探討TUCS-Cu與DNA作用模式及其生物活性之間的關(guān)系,有助于人們對TUCS-Cu與DNA相互作用方式的理解,同時在分子和細胞水平上研究病因?qū)ふ揖哂锌鼓[瘤活性的藥物有著重要的意義[3],為研究TUCS-Cu在基因治療領(lǐng)域的應(yīng)用提供參考。

    1 實驗部分

    1.1 材料與儀器

    TUCS-Cu(制備方法見參考文獻[2]),用 1.0%(v/v)HAc溶解;鯡魚精DNA美國Sigma公司產(chǎn)品,配制0.1 mg/mL貯備液備用。UV-2450紫外-可見分光光度計(日本島津);CHI660B電化學(xué)工作站(上海辰華)。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 循環(huán)伏安行為

    實驗在單室電解池中進行,三電極系統(tǒng):工作電極為玻碳電極(GCE),參比電極為飽和甘汞電極(SCE),對電極為鉑絲電極。

    1.2.2 紫外吸收光譜

    在1 cm×1 cm比色皿中加入0.1 mg/mL的DNA溶液 4 mL,用 TUCS-Cu滴定,搖勻,放置 5 min,以試劑空白為參比,掃描吸收光譜。滴定時每次加入體積為5 μL。

    1.2.3 熒光光譜

    比色皿中加入0.1 mg/mL的DNA溶液3 mL和NR溶液0.05 mL,用TUCS-Cu溶液進行滴定,以550 nm為激發(fā)波長,EX=EM=5 nm,測定熒光光譜。滴定時每次加入體積為5 μL。

    1.2.4 粘度測定

    DNA溶液粘度用烏氏粘度計測定,測定時固定DNA濃度為0.1 mg/mL,以不同的R(CTUCS-Cu/CDNA)加入配合物,溫度恒定在25℃,作用30 min進行測量,得到(η/η0)1/3與配合物濃度關(guān)系。η為 DNA溶液在加入配合物時的粘度,η0為DNA溶液的粘度。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 TUCS-Cu與DNA作用的循環(huán)伏安行為

    圖1 掃速對TUCS-Cu電化學(xué)影響Fig.1 Effect of scan rate on the electrochemistry of TUCS-Cu

    在0.1v/s的掃描速度下,TUCS-Cu在-0.2V附近有一還原峰,在0.258V和0.506V處有兩個氧化峰,分別對應(yīng)于Cu(Ⅰ)和Cu(Ⅱ)的氧化峰。從不同掃描速度下獲得的循環(huán)伏安圖可見(圖1a),氧化還原峰電流隨著掃描速度的增大而增大(0.01~0.15v/s),并與掃描速度的平方根呈現(xiàn)很好的線性關(guān)系y=1.05+8.56x(R=0.9979)(圖1b),表明中心銅離子在電極上的反應(yīng)過程主要由擴散過程控制。

    在4 mL 1.0 mg/mL的 TUCS-Cu溶液中,用DNA滴定,每次加入體積為10 μL,搖勻,放置 5 min,TUCS-Cu與DNA在稀溶液中相互作用的循環(huán)伏安曲線如圖2所示。發(fā)現(xiàn)在配合物溶液中加入DNA后,循環(huán)伏安曲線發(fā)生了明顯的變化,TUCS-Cu配合物的氧化峰電流明顯降低且沒有新的氧化還原峰出現(xiàn),氧化還原峰電流急劇降低,且在0.506V的氧化峰電位發(fā)生正移,故峰電位差ΔE增大。Bard等提出,當(dāng)金屬配合物與DNA發(fā)生作用時,如果峰電位向負方向偏移,則金屬配合物與DNA發(fā)生靜電作用,如果峰電位向正方向偏移,則發(fā)生插入作用[4],說明TUCS-Cu以嵌插作用與DNA分子作用形成了非電活性化合物[5]。由于該非電活性化合物在電極上沒有電化學(xué)響應(yīng),而配合物與DNA相互作用導(dǎo)致溶液中游離配合物分子的濃度降低,使得單位時間內(nèi)遷移到電極表面的配合物分子數(shù)量減少或擴散速度減小,從而導(dǎo)致峰電流減小。

    圖2 TUCS-Cu與DNA作用的循環(huán)伏安圖Fig.2 Cyclic voltammetry figure of TUCS-Cu with DNA

    2.2 TUCS-Cu與DNA相互作用的紫外吸收光譜

    加入TUCS-Cu后,DNA體系的吸收光譜如圖3所示。DNA在258 nm處有最大吸收峰,TUCS-Cu對DNA吸收光譜產(chǎn)生了明顯的增色效應(yīng),且最大吸收波長紅移至275 nm附近,說明TUCS-Cu與DNA發(fā)生了相互作用。根據(jù)Long理論,增色效應(yīng),最大吸收波長發(fā)生紅移是該物質(zhì)與DNA發(fā)生嵌插作用的標(biāo)志[6]。明顯的增色效應(yīng)說明TUCS-Cu與堿基對之間的距離很近,即TUCS-Cu可能插入到DNA的堿基對中,從而引起DNA堿基對與嵌插的TUCSCu分子間產(chǎn)生較強的電子相互作用。

    圖3 TUCS-Cu對DNA紫外吸收光譜的影響Fig.3 Effect of TUCS-Cu on the UV absorption spectra of DNA

    圖4 TUCS-Cu對NR-DNA熒光光譜的影響Fig.4 Effect of TUCS-Cu on the fluorescence spectra of NR-DNA

    2.3 TUCS-Cu與DNA相互作用的熒光光譜

    中性紅(NR)為一共軛平面稠環(huán)分子,能專一性地插入DNA雙螺旋的堿基對之間,使熒光顯著增強。TUCS-Cu存在下DNA-NR體系熒光強度的變化如圖5所示。TUCS-Cu在此條件下無熒光,TUCS-Cu對DNA-NR體系熒光具有增強效應(yīng)。熒光通常是發(fā)生于具有剛性平面結(jié)構(gòu)的π-電子共軛的分子中,隨著π-電子共軛度和分子平面度的增大,熒光效率也將增強。分子共平面性越大,π-電子共軛度越大;即任何有益于提高π-電子共軛度的結(jié)構(gòu)改變,都將提高熒光效率。說明TUCS-Cu的熒光與NR類似,它能專一地嵌入DNA雙螺旋的堿基對之間,使熒光顯著增強,進一步說明了TUCS-Cu是以插入方式與DNA發(fā)生作用。

    2.4 DNA溶液的粘度

    圖5 不同濃度TUCS-Cu對DNA粘度的影響Fig.5 Effects of increased amounts of TUCS-Cu on the viscosity of DNA

    粘度一般被認為是確定配合物與DNA結(jié)合模式最有力的證據(jù)。當(dāng)TUCS-Cu存在時,DNA的相對粘度降低,且隨配合物濃度的增大呈現(xiàn)降低的趨勢,如圖5所示,表明TUCS-Cu與DNA發(fā)生了相互作用,這種插入方式使DNA得雙螺旋發(fā)生扭結(jié),導(dǎo)致其粘度降低[7]。

    3 結(jié)論

    采用循環(huán)伏安、紫外光譜和熒光光譜法研究了TUCS-Cu與鯡魚精DNA的相互作用。結(jié)果表明,TUCS-Cu與DNA之間存在嵌插作用,而生成一種非電活性超分子復(fù)合物。

    1 Smits KM,Schouten JS,Smits LJ,et al.A review on the design and reporting of studies on drug-gene interaction.J Clin Epidemiol,2005,58:651-654.

    2 Li XF(李小芳),F(xiàn)eng XQ(馮小強),Yang S(楊聲),et al.preparation,Characterization and antibacterial activity of Thiourea-chitosan-copper(II)complex.Food Sci(食品科學(xué)),2011,32(7):57-60.

    3 Yu LL(于嵐嵐),Yang R(楊冉),Bai XX(白希希),et al.Spectroscopic study of the interaction between camptothecin and DNA.Chin J Lumin(發(fā)光學(xué)報),2011,32:1197-1203.

    4 Zhang F(張芳),Zhang QQ(張前前),Zhu CJ(祝成堅),et al.Synthesis and DNA binding spectroscopy studies of Cu(II)-Thr-Phen.Spectro Spectral Anal(光譜學(xué)與光譜分析),2005,25:1439-1442.

    5 Pasternack PF,Gibbs FJ,Villatrnaca J.Interactions of porphyrins with nucleic acids.J Biochem,1983,22:2406-2414.

    6 Long EC ,Barton JK.On demonstrating DNA inter-calation.Acc Chem Res,1990,23:273-281.

    7 Liu J,Lu TB,Li H,et al.DNA-bing and cleavage studies of a dinuclear copper(II)complex with a 26-membered exazamacrocycle.Transit Met Chem,2002,27:686-690.

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