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    大孔吸附樹脂分離純化Pneumocandin B0的研究

    2013-10-15 10:14:50謝新宇
    化學(xué)與生物工程 2013年11期
    關(guān)鍵詞:吸收率去離子水大孔

    謝新宇,孔 鵬,冷 鳳,張 煒

    (微生物藥物國家工程研究中心 河北省工業(yè)微生物代謝工程技術(shù)研究中心華北制藥集團(tuán)新藥研究開發(fā)有限責(zé)任公司,河北 石家莊050015)

    卡泊芬凈(Caspofungin)是一種廣譜抗真菌藥物,由美國Merck公司開發(fā),2001年上市[1]??ú捶覂舻淖饔脵C(jī)制是非競(jìng)爭(zhēng)性地抑制真菌細(xì)胞壁的β-(1,3)-D-葡聚糖的合成,從而破壞細(xì)胞壁的完整性,最終導(dǎo)致真菌細(xì)胞溶解、死亡[2]。該藥物對(duì)于臨床常見的念珠菌屬和曲霉菌屬均有良好的抗菌效果,同時(shí)由于其特殊的作用機(jī)制,該類藥物還具有較高的安全性[3]。

    天然產(chǎn)物Pneumocandin B0(PB0)經(jīng)側(cè)鏈修飾后得到的環(huán)狀六肽母核是合成卡泊芬凈的主要原料,PB0分子式為C50H80N8O17,分子量1065.21,結(jié)構(gòu)式見圖1[4]。目前關(guān)于PB0分離純化的報(bào)道較少,提取工藝較為復(fù)雜。作者采用大孔樹脂吸附法提取分離發(fā)酵液中的PB0,效果較好。

    圖1 Pneumocandin B0結(jié)構(gòu)式Fig.1 The structural formula of Pneumocandin B0

    1 實(shí)驗(yàn)

    1.1 試劑與儀器

    PB0發(fā)酵液,華北制藥新藥研發(fā)中心;PB0標(biāo)準(zhǔn)品,自制。

    大孔吸附樹脂 XAD-4、XAD-1600,羅門哈斯公司;LX-18、LX-20,西安藍(lán)曉科技有限公司;HZ801、HZ818、HZ820、HZ841,上海華震科技有限公司;乙腈(色譜純),美國Merck公司;乙醇(工業(yè)級(jí)),滄州興隆化工有限公司;去離子水,自制;其它試劑均為國產(chǎn)分析純。

    高效液相色譜儀,Shimadzu公司;攪拌器,上海司樂儀器有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 樹脂的預(yù)處理與再生

    預(yù)處理方法:樹脂用乙醇充分浸泡24h以上,期間間歇攪拌(除去樹脂表面制孔劑、色素、雜質(zhì)等),之后用大量去離子水洗至洗滌液加水不再產(chǎn)生白色渾濁為止;再用4BV 1mol·L-1NaOH 溶液攪拌浸泡4h(除去酸性物質(zhì)),用去離子水洗至中性;再用4BV 1mol·L-1HCl溶液攪拌浸泡4h(除去堿性物質(zhì)),用去離子水洗至中性。

    再生方法與預(yù)處理方法基本相同。

    1.2.2 發(fā)酵液預(yù)處理

    PB0發(fā)酵液經(jīng)真空抽濾后用去離子水洗滌,得到菌絲體;菌絲體用2BV乙醇攪拌浸泡3h,真空抽濾,得到PB0浸提液;浸提液加去離子水調(diào)至乙醇體積分?jǐn)?shù)為30%,HPLC檢測(cè)其純度為13.3%。

    1.2.3 樹脂靜態(tài)吸附量與解吸收率的測(cè)定

    稱取8種預(yù)處理完畢的大孔吸附樹脂各2g(為濾干后濕重,下同),置于250mL錐形瓶中,分別加入PB0浸提液150mL,常溫低速攪拌3h,過濾,檢測(cè)濾液中PB0的質(zhì)量濃度;取過濾后樹脂加入150mL乙醇,在相同條件下進(jìn)行解吸,檢測(cè)解吸液中PB0的質(zhì)量濃度。根據(jù)式(1)、(2)計(jì)算樹脂對(duì)PB0的靜態(tài)吸附量和解吸收率:

    式中:Q為樹脂靜態(tài)吸附量,μg·g-1;ρ0為原液質(zhì)量濃度,μg·mL-1;ρ1為吸附殘液質(zhì)量濃度,μg·mL-1;V1為加樣體積,mL;m 為樹脂質(zhì)量,g;D 為解吸收率,%;ρ2為解吸液質(zhì)量濃度,μg·mL-1;V2為解吸液體積,mL。

    1.2.4 樹脂靜態(tài)洗脫實(shí)驗(yàn)

    稱取預(yù)處理好的5份HZ818樹脂各2g,置于250mL錐形瓶中,加入過量PB0浸提液吸附至飽和,過濾。取濾干樹脂分別加入150mL 30%、40%、50%、60%、70%乙醇,常溫低速攪拌3h,過濾,檢測(cè)洗脫液中PB0的質(zhì)量濃度,根據(jù)式(2)計(jì)算不同體積分?jǐn)?shù)乙醇對(duì)HZ818樹脂的解吸收率。

    1.2.5 樹脂動(dòng)態(tài)解吸實(shí)驗(yàn)

    取預(yù)處理好的3份HZ818樹脂各200mL,濕法裝入3根玻璃柱(Φ∶H=1∶7)。取同一批號(hào)的PB0浸提液上樣,上樣流速為200mL·h-1(即1BV·h-1),HPLC檢測(cè)流出液濃度,當(dāng)柱出口PB0濃度接近上樣液濃度10%時(shí)停止上樣,取600mL40%乙醇按相同流速洗柱。3根樹脂柱分別用75%、85%、95%乙醇解吸,解吸流速控制為100mL·h-1(即0.5BV·h-1),解吸液每50mL(即0.25BV)收集為一瓶,HPLC監(jiān)測(cè)解吸液PB0含量。合并收集PB0濃度大于100μg·mL-1的解吸液,用HPLC峰面積歸一化法測(cè)定純度。

    1.3 色譜條件

    色譜柱:Hypersil C18(4.6mm×250mm,5μm);流動(dòng)相為乙腈-水 (50∶50,體積比);流速1.0mL·min-1;柱溫40℃;檢測(cè)波長(zhǎng)210nm;進(jìn)樣量10μL。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 樹脂的選擇

    8種大孔吸附樹脂的靜態(tài)吸附量和解吸收率見表1 。

    表1 8種大孔吸附樹脂的靜態(tài)吸附量和解吸收率Tab.1 Static adsorption amount and desorption yield of eight kinds of macroporous adsorptive resins

    由表1 可以看出,HZ818樹脂對(duì)PB0的靜態(tài)吸附量和解吸收率最高,分別達(dá)10 436μg·g-1和95.3%,表明其可以很好地分離PB0。故選取HZ818樹脂作為吸附樹脂進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    2.2 洗脫條件的選擇

    洗脫劑是影響大孔吸附樹脂吸附分離的重要因素,不同洗脫劑對(duì)于大孔吸附樹脂有不同的溶脹度,洗脫液中各溶質(zhì)的組成也有所不同。以不同體積分?jǐn)?shù)乙醇進(jìn)行HZ818樹脂的洗脫,解吸收率見圖2。

    圖2 不同體積分?jǐn)?shù)乙醇的解吸收率曲線Fig.2 Yield of static desorption with different volume fractions of ethanol

    由圖2可以看出,70%乙醇對(duì)PB0有較好的洗脫效果,故可選用70%以上乙醇作為解吸劑;50%乙醇洗脫會(huì)造成PB0較多的損失,影響解吸收率;40%乙醇的PB0解吸收率僅有2.3%且洗脫液呈淺黃色,HPLC檢測(cè)其中含有較多雜質(zhì),是比較理想的雜質(zhì)洗脫劑。故樹脂吸附飽和后先用40%乙醇洗脫部分色素和極性較大的雜質(zhì),再用較高體積分?jǐn)?shù)乙醇解吸。進(jìn)行動(dòng)態(tài)解吸實(shí)驗(yàn),不同體積分?jǐn)?shù)乙醇的解吸效果比較見表2 。

    2.3 解吸條件的確定

    表2 不同體積分?jǐn)?shù)乙醇解吸效果比較Tab.2 The comparison of desorption efficiencies of ethanol with different volume fractions

    由表2 可以看出,75%乙醇解吸不完全,拖尾較嚴(yán)重,不適合作為解吸劑;85%、95%乙醇解吸基本不拖尾,而95%乙醇解吸收率比85%乙醇雖略有提高,但其解吸液色譜純度較85%乙醇解吸液明顯下降,溶液色度也較深,這說明當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)過高時(shí),大量的雜質(zhì)一同被解吸下來。綜合考慮,宜選取85%乙醇作為解吸劑。

    3 結(jié)論

    研究了用大孔吸附樹脂從發(fā)酵液中提取Pneumocandin B0的工藝條件。從8種大孔吸附樹脂中篩選出的大孔吸附樹脂HZ818可以很好地分離PB0,靜態(tài)吸附量達(dá)10 436μg·g-1。用 HZ818樹脂柱吸附飽和后,先用40%乙醇洗滌、再用85%乙醇解吸,解吸收率達(dá)到91.6%,PB0濃度富集20倍以上,色譜純度由13.3%提高至78.6%,為后續(xù)的精制工藝奠定了基礎(chǔ)。該吸附-洗滌-解吸工藝簡(jiǎn)單易行、成本低、環(huán)保,適合工業(yè)化生產(chǎn)。

    [1]李岷,沈永年,呂桂霞,等.棘白菌素類抗真菌藥[J].中國真菌學(xué)雜志,2009,4(4):249-256.

    [2]Denning D W.Echinocandin antifungal drugs[J].Lancet,2003,362(9390):1142-1151.

    [3]Deresinski S C,Stevens D A.Caspofungin[J].Clin Infect Dis,2003,36(11):1445-1457.

    [4]滕云,陳正杰,鄭玲輝,等.棘白菌素類抗真菌藥物的結(jié)構(gòu)與微生物合成[J].中國醫(yī)藥工業(yè)雜志,2010,41(10):776-782.

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