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    黃芩總黃酮在Caco-2細(xì)胞上的吸收特征

    2013-09-14 09:59:00馮志強(qiáng)陳孝健姚美村
    中成藥 2013年1期
    關(guān)鍵詞:滲透系數(shù)表觀黃芩

    張 蕾, 馮志強(qiáng),, 陳孝健, 姚美村

    (1.廣州中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院,廣東廣州510006;2.中山大學(xué)藥學(xué)院,廣東廣州510080)

    中藥有效成分口服吸收部位和機(jī)制的探討是提高中藥口服給藥生物利用度、研究開(kāi)發(fā)其口服給藥制劑的基礎(chǔ)?,F(xiàn)代藥理學(xué)表明,黃芩中的總黃酮是其藥理活性的主要藥效成分?,F(xiàn)建立黃芩總黃酮胃腸道吸收機(jī)制的Caco-2細(xì)胞模型,以HPLC法測(cè)定黃芩苷、漢黃芩苷、漢黃芩素和千層紙素A的濃度,對(duì)黃芩總黃酮吸收機(jī)制進(jìn)行初步研究。

    Caco-2細(xì)胞模型 (Caco-2 cellmodel)來(lái)源于人類(lèi)結(jié)腸腺癌組織,以普通的培養(yǎng)條件培養(yǎng)成熟的Caco-2細(xì)胞即可形成與小腸上皮細(xì)胞相同的細(xì)胞極性和致密的單細(xì)胞層組織,其形態(tài)和功能上與人體的小腸上皮細(xì)胞相似[1]。利用Caco-2細(xì)胞模型,可在體外進(jìn)行藥物的攝?。?]、轉(zhuǎn)運(yùn)[3-4]、代謝[5]等過(guò)程研究,是探索藥物吸收機(jī)制和高通量篩選的有效工具,并已被國(guó)內(nèi)外廣泛用于研究各種活性物質(zhì)體外吸收的各個(gè)環(huán)節(jié)。本研究運(yùn)用Caco-2細(xì)胞模型,首次對(duì)黃芩總黃酮的吸收機(jī)制進(jìn)行研究,為其制劑研究、口服給藥等提供信息。

    1 儀器與試藥

    1.1 儀器 SW-CJ-2F雙人雙面超凈工作臺(tái),蘇州凈化設(shè)備有限公司;CO-150型CO2培養(yǎng)箱,NBS公司;Millicell-ERS跨膜電阻儀,Millipore公司;IX51型倒置顯微鏡,OLYMPUS公司;飛鴿高速離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠;Precisa XS225A萬(wàn)分之一分析天平;Dionex P680高效液相色譜儀,UVD170 U檢測(cè)器。

    1.2 試藥 0.25%胰蛋白酶 -0.02%EDTA、DMEM培養(yǎng)基、青霉素和鏈霉素,Gibco公司;L-谷氨酰胺,MBCHEM公司;胎牛血清、非必需氨基酸,Hyclone公司;Hanks緩沖溶液 (HBSS,自制);黃芩苷對(duì)照品 (中國(guó)藥品生物制品檢定所,批號(hào):110715-200212)、漢黃芩素對(duì)照品 (中國(guó)藥品生物制品檢定所,批號(hào):1514-200202);漢黃芩苷對(duì)照品 (西安融升生物科技有限公司,批號(hào):091126,純度>98%);千層紙素A(自制,純度>98%);色譜乙腈 (Merk公司)。其余試劑為分析純。

    1.3 材料 12孔Transwell細(xì)胞培養(yǎng)板、25 cm2卡式細(xì)胞培養(yǎng)瓶,Corning公司。

    1.4 細(xì)胞 Caco-2細(xì)胞株,中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù) (原代來(lái)源于美國(guó)典型菌種保藏中心ATCC,American Type Culture Collection)實(shí)驗(yàn)中,所用細(xì)胞代數(shù)為35~45代。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 溶液的配制

    2.1.1 對(duì)照品貯備液 分別精密稱(chēng)取黃芩苷、漢黃芩苷、漢黃芩素和千層紙素A對(duì)照品適量,用色譜甲醇配制成質(zhì)量濃度分別為1 000、14.1、112、107μg/mL的對(duì)照品貯備液。

    2.1.2 供試品溶液的制備 精密稱(chēng)取黃芩總黃酮噴霧干燥粉末適量,用pH6.5的HBSS溶解并稀釋成400μg/mL,臨用前配制,用于Caco-2細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)。

    2.2 分析方法的建立

    2.2.1 色譜條件 Phenomenex Luna C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5μm);流動(dòng)相為乙腈 (A)-0.1%甲酸水 (B)梯度洗脫,程序?yàn)?→5 min,32%→35%A,5→15 min,35%→50%A,15→25 min,50%→50%A;體積流量1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)275 nm;柱溫為室溫;進(jìn)樣量20μL

    2.2.2 專(zhuān)屬性試驗(yàn) 分別進(jìn)樣空白基質(zhì) [在細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)試驗(yàn)給藥前,用HBSS緩沖液將Caco-2細(xì)胞沖洗3次,最后一次置于37℃培養(yǎng)箱溫孵30 min,然后收集腸腔側(cè) (AP側(cè))到基底側(cè) (BL側(cè))的溫孵液混合、混合對(duì)照溶液和供試品溶液以考察分析方法的專(zhuān)屬性。結(jié)果表明,各待測(cè)組分與相鄰色譜峰分離度良好,空白基質(zhì)在相應(yīng)保留時(shí)間處無(wú)雜質(zhì)干擾。典型色譜圖見(jiàn)圖1。

    2.2.3 線性關(guān)系考察 分別精密量取黃芩苷、漢黃芩苷、漢黃芩素和千層紙素A對(duì)照貯備液適量,用空白HBSS緩沖液配制成黃芩苷濃度為1.12、2.24、5.60、22.4、56.0、112μmol/L,漢黃芩苷濃度為 0.050 8、0.101 6、0.254、1.016、2.54、5.08μmol/L,漢黃芩素濃度為 0.134、0.268、0.67、2.68、6.7、13.4μmol/L,千層紙素A濃度為0.13、0.26、0.65、2.6、6.5、13.0μmol/L的混合系列對(duì)照品溶液,在上述色譜條件下進(jìn)樣分析,以濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),采用加權(quán)最小二乘法進(jìn)行線性回歸,計(jì)算回歸方程,黃芩苷為y=28 667C-5 673(r=0.992 8);漢黃芩苷為y=46 964C+1 698(r=0.992 1);漢黃芩素為y=22 375C+468(r=0.997 9);千層紙素A為y=19 649C -469(r=0.998 4)。

    2.2.4 準(zhǔn)確度與精密度 用空白HBSS緩沖液以及空白基質(zhì)分別配置低、中、高3個(gè)濃度的QC樣本,每一濃度進(jìn)行3樣本分析,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算QC樣本濃度,計(jì)算方法的精密度 (RSD)和準(zhǔn)確度 (RE),結(jié)果見(jiàn)表1。

    圖1 典型色譜圖Fig.1 Typical HPLC chrom atogram s

    表1 準(zhǔn)確度和精密度試驗(yàn)結(jié)果Tab.1 Results of accuracy and precision

    2.3 Caco-2細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)

    2.3.1 細(xì)胞培養(yǎng)[6-9]用DMEM完全培養(yǎng)液將復(fù)蘇后的Caco-2細(xì)胞培養(yǎng)在25 cm2卡式細(xì)胞培養(yǎng)瓶,置于37℃ 培養(yǎng)箱 (通入5%CO2,相對(duì)濕度在90%)中培養(yǎng)。隔天換液,當(dāng)細(xì)胞融合度達(dá)到80%以上,用0.25%胰蛋白酶-0.02%EDTA消化液進(jìn)行消化,按1∶3的比例傳代。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的Caco-2細(xì)胞,調(diào)節(jié)密度為8×104~2×105個(gè)/cm2,接種0.5 mL到12孔Transwell板AP側(cè),BL側(cè)則加入1.5 mL培養(yǎng)液。接種后一周內(nèi)隔天換液,1周后每天換液,培養(yǎng)至21 d。檢測(cè)堿性磷酸酶活性和各孔跨膜電阻 (均大于500Ω/cm2),細(xì)胞形成緊密單層后即可用于轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)。

    2.3.2 表觀滲透系數(shù) (Papp)及表觀滲透率(PDR)的計(jì)算 表觀滲透系數(shù) (apparent drug permeability coefficient,Papp)的計(jì)算公式為:

    表觀滲透率 (滲透方向率,PDR)的計(jì)算公式為:

    其中,PappB→A為受試藥物從BL到AP側(cè)的表觀滲透系數(shù),PappA→B為受試藥物從AP到BL側(cè)的表觀滲透系數(shù)。

    2.3.3 雙向轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn) 取符合轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)的Transwell板,吸棄培養(yǎng)板中舊的培養(yǎng)液,加入37℃預(yù)熱的HBSS蕩洗3次,于最后一次置培養(yǎng)箱中溫孵30min后,收集空白基質(zhì),進(jìn)行雙向轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)。在AP→BL側(cè)的轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)中,加0.5 mL供試品溶液到AP側(cè)作為供給池,1.5 mL的pH為7.4的空白HBSSBL側(cè)作為接收池;在BL→AP側(cè)轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)中,則將1.5 mL藥物加到BL側(cè)作為供給池,0.5 mL空白HBSS到AP側(cè)作為接收池,置于培養(yǎng)箱中。分別于15、30、60、90、120、180 min從接收池吸取 100μL轉(zhuǎn)運(yùn)液 (12 000 r/min離心5 min,取上清液),同時(shí)用空白HBSS補(bǔ)足,每個(gè)時(shí)間點(diǎn)設(shè)3個(gè)平行孔。結(jié)果見(jiàn)圖2和表2。

    圖2 時(shí)間對(duì)4個(gè)黃酮類(lèi)成分轉(zhuǎn)運(yùn)量AP→BL和BL→AP的影響 (n=3, ± s)Fig.2 Effect of time on Caco-2 cell transport of flavonoids from bidirection(n=3, ± s)

    表2 4種黃酮類(lèi)成分在Caco-2細(xì)胞中雙向轉(zhuǎn)運(yùn)的P app值(n=3, ± s)Tab.2 P app value of flavonoids from bidirection(n=3, ± s)

    表2 4種黃酮類(lèi)成分在Caco-2細(xì)胞中雙向轉(zhuǎn)運(yùn)的P app值(n=3, ± s)Tab.2 P app value of flavonoids from bidirection(n=3, ± s)

    化合物 P app/(1×10-6 cm·s-1)P app A→B P app B→A PDR黃芩苷 1.65±0.38 1.23±0.24 0.75漢黃芩苷 1.58±0.21 1.22±0.16 0.77漢黃芩素 1.57±0.15 1.27±0.07 0.80千層紙素A 5.74±0.18 5.13±0.19 0.89

    3 討論

    3.1 在Caco-2細(xì)胞模型中,可以通過(guò)測(cè)定藥物不同濃度下在細(xì)胞內(nèi)的轉(zhuǎn)運(yùn)量、滲透系數(shù)Papp值以及表觀滲透率,而確定藥物的轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制。若藥物的轉(zhuǎn)運(yùn)量隨濃度和時(shí)間的增加而增大,則提示該藥物以被動(dòng)擴(kuò)散為主要轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制;若表觀滲透率小于1.5,即AP→BL的Papp值與BL→AP的Papp值大致相同,兩者比值約為1,也可確定被動(dòng)擴(kuò)散為藥物的主要轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制;而若藥物的表觀滲透率大于1.5,則提示藥物可能存在主動(dòng)轉(zhuǎn)運(yùn)。另外,藥物的表觀滲透系數(shù)Papp值>10-6cm/s,說(shuō)明藥物的吸收良好;若Papp值 <10-7cm/s,則藥物的吸收較差 (吸收<1%)。

    3.2 本研究中,黃芩提取物總黃酮給藥Caco-2細(xì)胞單層后,4種黃酮類(lèi)成分從AP側(cè)到BL側(cè)的表觀滲透系數(shù) Papp值在1 ×10-6~6 ×10-6cm/s,說(shuō)明藥物吸收良好;轉(zhuǎn)運(yùn)量呈現(xiàn)一定的時(shí)間依賴(lài)性,且PDR值均約為1,提示4種黃酮類(lèi)成分均以被動(dòng)擴(kuò)散為主要轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制,與小柴胡湯復(fù)方中黃芩苷、漢黃芩苷、漢黃芩素、千層紙素A的被動(dòng)轉(zhuǎn)運(yùn)方式一致[10]。另外,黃芩苷單體給藥AP→BL的Papp值為0.664±0.103[11],而本研究黃芩提取物中黃芩苷AP→BL 的 Papp為 (1.65 ±0.38) ×10-6cm/s,黃芩提取物中其它成分可促進(jìn)黃芩苷的吸收;文獻(xiàn)[12]表明千層紙素A單體給藥AP→BL的Papp值與BL→AP的Papp值均為1×10-6cm/s(PDR值均約為0.79),本研究黃芩提取物中千層紙素A AP→BL的 Papp值與 BL→AP的 Papp值均為5×10-6cm/s(PDR值均約為0.89),由此可見(jiàn),黃芩提取物中其它成分的存在亦促進(jìn)了千層紙素A的吸收,但其作用并無(wú)方向性。

    3.3 中藥黃芩在臨床上用途廣泛,并且在許多方劑中均有配伍使用,這就意味著它與其它配伍組分存在著廣泛的相互作用。利用Caco-2細(xì)胞單層模型來(lái)研究單體及整體給藥后主要藥效成分的腸吸收,為其在胃腸道介導(dǎo)的藥物相互作用的系統(tǒng)性深入研究等奠定了基礎(chǔ)。

    [1]楊秀偉,楊曉達(dá),王 瑩,等.中藥化學(xué)成分腸吸收研究中Caco-2細(xì)胞模型和標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程的建立[J].中西醫(yī)結(jié)合學(xué)報(bào),2007,5(6):634-641.

    [2]王素軍,李曉天,王廣基,等.LC-MS法測(cè)定槐果堿及其在Caco-2細(xì)胞上的攝取特性[J].中國(guó)新藥雜志,2007,16(1):49-52.

    [3]朱狄峰,趙筱萍,程翼宇.丹參素在Caco-2細(xì)胞單層模型中的跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)研究[J].中國(guó)中藥雜志,2006,31(18):1517-1521.

    [4]馮志強(qiáng),謝智勇,廖瓊峰,等.氧化槐果堿在Caco-2細(xì)胞模型中的吸收機(jī)制研究[J].中國(guó)中藥雜志,2011,36(17):2399-2403.

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    [11]王玉秀,賈金萍,王玉璧,等.Caco-2細(xì)胞模型比較黃芩苷和黃芩苷滴丸在小腸的吸收[J].中國(guó)藥物應(yīng)用與監(jiān)測(cè),2010,7(6):344-346.

    [12]馮志強(qiáng),謝智勇,廖瓊峰,等.千層紙素A在Caco-2細(xì)胞模型中的吸收機(jī)制研究[J].中南藥學(xué),2011,9(7):481-485.

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