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    白細胞介素13抗體對支氣管哮喘小鼠氣道炎癥的影響

    2013-09-07 09:14:50溫建立劉勝華
    中國醫(yī)科大學學報 2013年3期
    關鍵詞:耦聯(lián)效價多肽

    溫建立,劉勝華

    (貴州省遵義醫(yī)學院第三附屬醫(yī)院重癥監(jiān)護室,貴州 遵義 563002)

    白細胞介素 13(interleukin-13,IL-13)是由活化的Th2細胞產生的調節(jié)過敏性炎癥的重要細胞因子[1,2]。IL-13通過結合二聚體受體激活下游信號通路,在支氣管哮喘(以下簡稱哮喘)發(fā)病中起重要作用。它可誘發(fā)氣道高反應性(airway high reactivity,AHR)IgE增高及黏液分泌增多等變態(tài)反應,同時與杯狀細胞增生和上皮細胞下纖維性化相關。研究表明,抑制IL-13可有效緩解哮喘癥狀。本研究擬采用B細胞表位技術制備抗IL-13抗體,探討抗IL-13抗體在哮喘治療中的應用價值。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    新西蘭大耳白兔和雄性BALB/C小鼠購自軍事醫(yī)學科學院動物中心;匙孔戚血藍蛋白(keyhole limpet hemocyanin,KLH)、雞卵蛋白(ovalbumin,OVA)、弗氏完全佐劑及弗式不完全佐劑購自Sigma公司;HRP標記羊抗兔IgG和ECL顯色試劑盒購自中杉金橋公司;細胞因子檢測試劑盒購自深圳晶美公司;其他試劑為國產或進口分析純。

    1.2 方法

    1.2.1 抗原表位分析:利用Ensembl數(shù)據庫和抗體設計軟件(Dragonfly)分析IL-13蛋白的二級結構、疏水性、親水性、抗原性及表面可及性等特點,選擇IL-13特異的片段作為擬合成的多肽,用于制備針對全蛋白的多克隆抗體。

    1.2.2 免疫原及抗體純化凝膠制備:IL-13多肽片段由北京三博生物科技有限公司合成(純度>98%),在合成多肽的C末端加一半胱氨酸用于與KLH的耦聯(lián)。將IL-13多肽片段溶于PBS緩沖液中,加入已溶解的KLH蛋白,0.3%的戊二醛耦聯(lián)2 h,甘氨酸溶液終止反應[3]。IL-13片段與活化凝膠耦聯(lián):連接緩沖液(50 mmol/L Tris,5 mmol/L EDTA)溶解合成的 IL-13多肽,加入凝膠混合30 min,以封閉液封閉30 min完成抗體純化凝膠制備。

    1.2.3 IL-13多克隆抗體制備:通過皮下多點注射方式免疫新西蘭大耳白兔,多肽-KLH耦聯(lián)物免疫劑量為100 μg/次。每2周免疫1次,共免疫4次。其中,首次免疫與弗氏完全佐劑乳化混勻,第2~4次免疫與弗式不完全佐劑乳化混勻。耳緣靜脈采血測定抗體效價,符合要求時,頸動脈取血,分離抗血清,保存于-20℃。

    1.2.4 IL-13多克隆抗體純化:采用親和層析法??寡褰涍^硫酸銨沉淀,PBS透析后與肽連接凝膠4℃混合過夜,裝柱。以甘氨酸溶液洗脫2~3次,合并收集的洗脫液,經過PBS透析后,BCA法測定蛋白濃度。純化的抗體分裝保存于-20℃。

    1.2.5 抗體效價及特異性檢測:通過間接ELISA方法測定抗體效價。多肽-KLH耦聯(lián)物最終包被濃度為 0.5 μg/mL,包被量 100 μL/孔;5%脫脂奶粉 37 ℃封閉2 h,OBST洗滌3次,每次3~5 min;加入倍比稀釋的抗體孵育1 h,PBST洗滌;二抗為HRP標記的山羊抗兔IgG,37℃反應30 min;PBST充分洗滌后顯色5~10 min,2 mol/L硫酸終止反應。在450 nm波長處測OD值。以S/N>2.1為陽性值。

    1.2.6 動物哮喘模型建立及分組:取6~8周齡雄性BALB/c小鼠,每只小鼠于第1天和第8天腹腔注射30 μg OVA(溶于 100 μL PBS)和等體積氫氧化鋁,以后每隔1周霧化吸入5%OVA,20 min/次,共4次。根據哮喘激發(fā)前尾靜脈注射抗體不同將小鼠分為:(1)兔IgG組:霧化吸入前1 h靜脈注射兔IgG(20 μg/只);(2)IL-13抗體組:霧化吸入前 1 h靜脈注射兔 IL-13 多克隆抗體(20 μg/只);(3)PBS 組:霧化吸入前1 h靜脈注射等量PBS緩沖液。陰性對照組用生理鹽水代替OVA進行腹腔注射。

    1.2.7 支氣管肺泡灌洗液(bronchial alveolar lavage fluid,BALF)細胞計數(shù)及細胞因子水平檢測:給予小鼠氣管插管,用預冷的PBS緩沖液灌洗肺組織2次,每次1 mL,收集合并灌洗液,4℃1 000 r/min離心5 min,分離上清和細胞沉淀。用0.8 mL Hank液重懸細胞沉淀,測定細胞總數(shù)。涂片,Wright-Giemsa染色,細胞分類計數(shù)。眼眶采血,離心分離血清,EILSA法測定小鼠血清中細胞因子水平,按照試劑盒說明書進行操作。

    1.2.8 肺組織切片檢查:取小鼠肺組織,10%甲醛緩沖液浸泡48 h,制成石蠟包埋切片,嗜依紅和蘇木精染色后觀察肺組織病理變化。

    1.3 統(tǒng)計學分析

    2 結果

    2.1 多肽序列選擇

    通過軟件對IL-13蛋白的二級結構、柔韌性、親水性、抗原性和表面可及性進行綜合分析,IL-13蛋白第12~26氨基酸序列LTKELIEELSNITQ可作為IL-13的抗原表位。

    2.2 多肽抗體效價、純度及特異性檢測結果

    將合成多肽與KLH耦聯(lián)并免疫新西蘭大耳白兔,ELISA法免疫3次檢測血清抗體效價達到1︰104。免疫周期結束后,采用親和層析方法純化抗體,抗體濃度達到3.25 g/mL;純化后抗體效價達到1︰105。

    2.3 細胞計數(shù)和細胞因子檢測

    細胞計數(shù)結果如表1所示:經OVA誘導哮喘后,IL-13組、兔IgG組和PBS組小鼠的BALF中細胞數(shù)量顯著高于陰性對照組小鼠(P<0.01);IL-13抗體組的BALF中細胞數(shù)量少于PBS組和兔IgG組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),而兔IgG組和PBS組小鼠BALF中細胞總數(shù)差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。提示IL-13參與哮喘發(fā)生,IL-13中和抗體可抑制哮喘病程發(fā)展。

    表1 小鼠BALF中細胞計數(shù)及分類(n=8)Tab.1 Categorization and count of leucocytes in BALF of mice(n=8)

    通過ELISA法測定BALF中細胞因子,結果如表2所示:與陰性對照組相比,PBS組和兔IgG組細胞因子 IL-4、IL-5顯著升高(P<0.01),而 γ-IFN 顯著降低(P<0.01);IL-13抗體組BALF中IL-4、IL-5顯著低于PBS組和兔IgG組(P<0.05),γ-IFN明顯高于PBS組和兔IgG組(P<0.05),進一步證實了IL-13抗體的中和作用。

    表2 小鼠BALF中細胞因子含量(pg/mL,n=8)Tab.2 Cytokine levels of BALF in mice(pg/mL,n=8)

    2.4 肺組織病理檢查結果

    病理檢查結果如圖1所示:OVA誘導哮喘組(IL-13組、兔IgG組、PBS組)與陰性對照組比較,支氣管和血管炎癥及肺氣腫程度明顯。IL-13抗體組小鼠支氣管和肺泡炎癥較兔抗IgG組和PBS組明顯減輕。

    3 討論

    支氣管哮喘是由肥大細胞、嗜酸性粒細胞和T淋巴細胞等多種細胞參與的慢性呼吸系統(tǒng)疾病,主要表現(xiàn)為氣道高反應和氣道非特異性炎性反應。目前主要應用激素治療哮喘,但激素治療有一定的缺陷,如容易產生依賴性和耐藥性。同時,激素作用的非特異性也限制了其應用。因此,尋找新的治療途徑成為哮喘研究的熱點。

    研究認為,Th2細胞因子IL-13與哮喘病情發(fā)展密切相關[4],它能促進趨化因子產生,上皮下纖維化,杯狀細胞增生及氣道黏液增多,并激活中性粒細胞和肥大細胞,參與氣道重建。隨著人們對IL-13研究的深入,IL-13在哮喘中的作用日益受到人們的重視,探索抑制IL-13的方法可為治療哮喘提供新的途徑。研究表明,阻斷IL-13可緩解哮喘癥狀。Lively等[5]發(fā)現(xiàn),通過IL-13 RNA干擾可減弱氣道炎癥和氣道高反應,Lee等[6]利用化學修飾干擾RNA也得到類似結果,Bree等[7]通過IL-13抗體阻斷IL-13可改善食蟹猴哮喘癥狀,Ma等[8]利用IL-13肽段制備的疫苗能夠減輕氣道炎癥狀。

    本研究通過序列分析選擇了IL-13特有的抗原表位,與KLH耦聯(lián)制備抗IL-13抗體??贵w效價達到1︰105,通過親和層析方法獲得的抗體純度達到80%以上,且該抗體能特異識別IL-13全蛋白,而不與其他蛋白發(fā)生反應,說明通過抗原表位制備的抗體具有較高特異性。用制備的抗體治療小鼠哮喘模型,結果表明該抗體能有效減輕IL-13引起的炎性反應,說明制備的抗體能夠中和IL-13,緩解哮喘癥狀。

    [1]Kasaian MT,Tan XY,Jin M,et al.Interleukin-13 neutralization by two distinct receptor blocking mechanisms reduces immunoglobulin E responses and lung inflammation in cynomolgus monkeys[J].Pharmacol Exp Ther,2008,325(3):882-892.

    [2]Kearley J,Buckland KF,Mathie SA,et al.Resolution of allergic inflammation and airway hyperreactivity is dependent upon disruption of the T1/ST2-IL-33 pathway[J].Am J Respir Crit Care Med,2009,179(9):772-781.

    [3]朱風尚,黃志剛,胡鶯,等.抗PIWIL2蛋白多克隆抗體的制備、鑒定及初步應用[J].第二軍醫(yī)大學學報,2008,9(29):1034-1037.

    [4]Vogel G.Interleukin 13 is key role in asthma shown [J].Science,1998,282(5297):2168-2169.

    [5]Lively TN,Kossen K,Balhorn A,et al.Effect of chemically modified IL-13 short interfering RNA on development of airway hyperresponsiveness in mice[J].J Allergy Clin Immunol,2008,121(1):88-94.

    [6]Lee CC,Huang HY,Chiang BL.Lentiviral-mediated interleukin-4 and interleukin-13 RNA interference decrease airway inflammation and hyperresponsiveness[J].Hum Gene Ther,2011,22 (5):577-586.

    [7]Bree A,Schlerman FJ,Wadanoli M,et al.IL-13 blockade reduces lung inflammation after Ascaris suum challenge in cynomolgus monkeys[J].J Allergy Clin Immunol,2007,119(5):1251-1257.

    [8]Ma Y,HayGlass KT,Becker AB,et al.Novel recombinant interleukin-13 peptide-based vaccine reduces airway allergic inflammatory responses in mice[J].Am J Respir Crit Care Med,2007,176(5):439-445.

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