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    牦牛不同臟器中?;撬崽崛」に噧?yōu)化及含量分析

    2013-09-06 10:59:04余群力張文華
    食品工業(yè)科技 2013年2期
    關(guān)鍵詞:自溶?;撬?/a>魷魚

    陳 騁,張 麗,韓 玲,*,余群力,張文華

    (1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州 730070;2.寧夏廈華肉食品有限公司,寧夏中衛(wèi)755000)

    ?;撬幔═aurine),化學(xué)名稱為β-氨基乙磺酸(NH2-CH2-CH2-SO3H),1827年首次從牛膽汁中分離出來,又稱牛膽素、牛膽酸[1]。牛磺酸是人重要的營養(yǎng)素,對調(diào)節(jié)機(jī)體中樞、消化、生殖、免疫和內(nèi)分泌等系統(tǒng)生理功能有重要的作用[2-3]。隨著我國西部藏區(qū)畜牧產(chǎn)業(yè)的發(fā)展,臟器等牛副產(chǎn)物的產(chǎn)量日趨增加。根據(jù)國家統(tǒng)計局及農(nóng)業(yè)部的資料,2010年屠宰牦牛約為189.7萬頭,體重350kg左右,其臟器總產(chǎn)量約為6萬t[4-5]。然而,牦牛肝臟很可能富含?;撬?,如果能夠從牦牛臟器中提取天然?;撬?,確定最佳的提取工藝,對于提高牦牛臟器綜合利用效率具有極其重要的意義,同時還可以緩解人工合成?;撬崴鶐淼陌踩碍h(huán)境問題[6]。此外,目前尚無針對牦牛臟器中?;撬崽崛〖昂糠治龅臋?quán)威方法,相關(guān)的國家標(biāo)準(zhǔn)及行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)均屬空白,無法準(zhǔn)確分析牦牛臟器中?;撬岬暮浚y以評估其市場前景。因此,優(yōu)化牦牛臟器中牛磺酸的提取方法,可以為建立牦牛臟器中?;撬岬臋z測標(biāo)準(zhǔn)提供理論基礎(chǔ)。目前,國內(nèi)外已有關(guān)于動物機(jī)體中提取天然牛磺酸的研究報道,其主要研究對象為海產(chǎn)貝類或其他水產(chǎn)品[7]。2000年,錢俊青等[8]研究了珍珠貝母體中提取?;撬岬墓に?。2005年,李和生等[9]研究了從蛤蜊中提取?;撬岬墓に嚒?010年,楊廣會等[3]研究了從魷魚肝臟中提取牛磺酸的工藝。然而,目前尚未見針對牦牛臟器中?;撬崽崛」に囇芯康膱蟮?。本研究采用均勻?qū)嶒炘O(shè)計法,針對青海海北地區(qū)牦牛內(nèi)臟(心臟、肝臟、肺臟、腎臟)中?;撬岬奶崛」に噮?shù)進(jìn)行優(yōu)化,并以最佳工藝進(jìn)行心臟、肝臟、肺臟和腎臟四種臟器中牛磺酸提取,采用紫外可見分光光度法測定其含量,分析海北牦牛4種臟器中?;撬岷?,以期為今后進(jìn)一步利用牦牛臟器中?;撬豳Y源,開發(fā)高附加值產(chǎn)品提供科學(xué)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    青海海北藏族自治州成年牦牛臟器(心臟、肝臟、肺臟、腎臟)樣品采后在-20℃條件下冷凍保存,一周內(nèi)進(jìn)行實驗;?;撬針?biāo)準(zhǔn)品 上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;732型強(qiáng)酸性陽離子交換樹脂 河北華眾化工有限公司;乙酰丙酮 北京奧博星生物技術(shù)有限公司;甲醛 天津市化學(xué)試劑六廠;氫氧化鈉、濃鹽酸、醋酸鈉 天津市化學(xué)試劑三廠;以上試劑均為分析純。

    756P型紫外可見分光光度計 上海光譜儀器有限公司;JJ-2B型組織搗碎機(jī) 金壇市醫(yī)療儀器有限公司;L5000型高速臺式離心機(jī) 長沙湘儀離心機(jī)儀器有限公司;PHS-3C型酸度計 上海佑科儀器儀表有限公司;LE-52型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;離子交換柱(25mm×30cm)深圳市深泉科技有限公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 牦牛臟器中?;撬岷繙y定

    1.2.1.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 使用牛磺酸標(biāo)準(zhǔn)品分別配制0.00、0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45mg/mL的?;撬針?biāo)準(zhǔn)溶液,在最大吸收波長400nm[7]處依次測定吸光值,以吸光值(Y)對?;撬針?biāo)準(zhǔn)溶液濃度(X)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線并求得回歸方程。

    1.2.1.2 顯色劑的配制 吸取1.0mol·L-1的醋酸鈉溶液10.0mL,依次加入0.4mL乙酰丙酮、1.0mL甲醛,并加蒸餾水稀釋至25.0mL,實驗當(dāng)天配制[9]。

    1.2.1.3 樣品測定 ?;撬崤c乙酰丙酮和甲醛經(jīng)加熱反應(yīng)生成N-取代基2,6-二甲基-3,5-二乙?;?1,4-二氫吡啶,該配合物顯黃色。從待測樣品中吸取1mL(1.2.2.2)收集的溶液,10倍稀釋。吸取2mL稀釋液,加入1mL顯色劑,100℃下水浴15min,隨后冷卻至室溫,于400nm波長下測定其吸光值[10]。

    1.2.1.4 牛磺酸含量計算公式

    式中:X—吸光值;0.0026—?;撬針?biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程的截距;1.9929—?;撬針?biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程的斜率;10—稀釋倍數(shù),用于吸光值測定時溶液(1mL)中?;撬釢舛龋╩g/mL)換算為牛磺酸質(zhì)量(mg);25—體積比,用于吸光值測定時溶液(1mL)中?;撬豳|(zhì)量(mg)換算為過柱時溶液中?;撬岬馁|(zhì)量(mg);5—體積比,用于過柱后溶液中牛磺酸質(zhì)量(mg)換算為濃縮液中?;撬岬馁|(zhì)量(mg)。

    1.2.2 牦牛臟器?;撬崽崛」に噧?yōu)化

    1.2.2.1 ?;撬崽崛」に嚵鞒?牦牛臟器→勻漿→自溶→提取→除蛋白→脫色濃縮→過柱除雜→待測。

    1.2.2.2 操作要點 a.前處理:稱取原料25.0g,按1∶4(m∶v)加入蒸餾水,置于組織搗碎機(jī)中勻漿,至糜狀[3]。

    b.自溶:采用2mol/L的鹽酸溶液調(diào)勻漿后組織液pH至5.5,組織液隨后置于50℃水浴鍋內(nèi),恒溫水浴20h[3]。

    c.提取:自溶結(jié)束后,調(diào)水浴鍋溫度至80℃,繼續(xù)恒溫提取50min,隨后采用四層細(xì)紗布過濾,收集濾液[3]。

    d.除蛋白:除酸性蛋白:采用1∶1(v∶v)的鹽酸調(diào)濾液pH至3.5,4500r/min下離心20min,收集上清液;

    除堿性蛋白:采用5mol/L的氫氧化鈉調(diào)除去酸性蛋白后上清液pH至8.5,4500r/min下離心20min,收集上清液[9-10]。

    e.脫色濃縮:上清液中加入適量活性炭(每100mL加入2~3g)進(jìn)行脫色,過濾后置于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,待上清液濃縮至50mL,采用2mol/L的鹽酸溶液調(diào)濃縮液pH至4.5[10]。

    f.去除其他雜質(zhì):離子交換柱:除去蛋白質(zhì)及色素后,提取液中仍然含有干擾?;撬釡y定的甘氨酸、賴氨酸等氨基酸,當(dāng)?;撬崧倭鹘?jīng)強(qiáng)酸性陽離子交換樹脂時,這些氨基酸會保留到樹脂上,而?;撬岜幌疵撓聛淼玫椒蛛x[6]。本實驗采用732型強(qiáng)酸性陽離子樹脂進(jìn)行濕法裝柱,樹脂填充高度4cm,除去管中氣泡待用[11]。

    g.過柱:吸取10mL(e)中收集的濃縮液緩慢注入732型強(qiáng)酸性陽離子樹脂交換柱,采用蒸餾水進(jìn)行洗脫,每次5mL,共3次,收集此溶液25mL,即為待測樣品[9]。

    1.2.2.3 牦牛臟器中?;撬崽崛」に噧?yōu)化 采用均勻?qū)嶒炘O(shè)計方法針對料液比、自溶溫度、提取溫度、提取時間4個因素組合實驗,進(jìn)行?;撬崽崛」に噧?yōu)化。

    a.因素水平的確立:本實驗4因素中,料液比(m∶v)水平范圍分別為1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶5、1∶6;自溶溫度水平范圍為30、35、40、45、50、55℃;提取溫度水平范圍為70、75、80、85、90、95℃;提取時間水平范圍為30、40、50、60、70、80min。

    b.因素水平均勻?qū)嶒炘O(shè)計:本實驗采用4因素6水平的均勻設(shè)計U6(46),因素水平表如表1所示。

    表1 均勻設(shè)計因素水平表Table 1 Factors and levels of the uniform design

    c.驗證實驗:對均勻?qū)嶒炘O(shè)計獲得的理論最佳工藝參數(shù)進(jìn)行驗證,參照(1.2.2.2)牛磺酸提取方法,采用直觀分析法從均勻?qū)嶒炘O(shè)計的實驗結(jié)果中選出理論最佳工藝參數(shù)針對青海海北牦牛肝臟進(jìn)行牛磺酸提取,測定其含量,與回歸方程計算的預(yù)測值進(jìn)行比較、驗證。

    1.2.3 牦牛不同臟器中?;撬岷糠治?以(2.2,2.3)確定的?;撬嶙罴烟崛」に噮?shù),對青海海北牦牛臟器(心臟、肝臟、肺臟、腎臟)中的?;撬徇M(jìn)行提取,并測定其含量。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程的確定

    ?;撬針?biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示。

    圖1 ?;撬針?biāo)準(zhǔn)溶液濃度與吸光值關(guān)系曲線Fig.1 Standard curve of taurine

    回歸方程為:Y=1.9929X-0.0026,R2=0.997,說明?;撬針?biāo)準(zhǔn)溶液濃度在0.00~0.45mg/mL的范圍內(nèi)與吸光值呈良好的線性關(guān)系。

    2.2 牛磺酸最佳提取工藝

    根據(jù)表1中的均勻設(shè)計方案,對牦牛肝臟中的?;撬徇M(jìn)行提取,并測定其含量,結(jié)果如表2所示。

    表2 均勻設(shè)計實驗結(jié)果(n=12)Table 2Results of uniform design experiment(n=12)

    根據(jù)表2結(jié)果,以牛磺酸提取量為因變量,液料比(X1)、自溶溫度(X2)、提取溫度(X3)、提取時間(X4)為自變量,采用IBM SPSS Statistics 19軟件對實驗結(jié)果進(jìn)行多元線性和二次多項式逐步回歸分析,得回歸方程:

    Y=-3.731+0.246X3+0.001X1X4+0.001X2X4-0.002X32

    對方程進(jìn)行顯著性檢驗,R2=0.998,F(xiàn)=150723.36(p<0.01),說明該方程具有顯著意義。進(jìn)一步對各項系數(shù)進(jìn)行顯著性檢驗,結(jié)果如表3所示。

    由表3可知,方程各項系數(shù)中,提取溫度(X3),提取溫度的二次方(X32)以及自溶溫度、提取時間的交互作用(X2X4)的影響均為極顯著(p<0.01);料液比、提取時間的交互作用(X1X4)的影響為顯著(p<0.05)。由于方程中各項系數(shù)單位不一致不能直接進(jìn)行比較,故對回歸系數(shù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化,各項標(biāo)準(zhǔn)化系數(shù)如表4所示。

    表3 回歸項系數(shù)檢驗Table 3 Regression coefficient test

    表4 標(biāo)準(zhǔn)化回歸系數(shù)Table 4 The standardized regression coefficient

    由表4可知,各因素對牦牛肝臟中?;撬崽崛∮绊憦?qiáng)弱的順序為:提取溫度(X3)>自溶溫度、提取時間交互作用(X2X4)>料液比、提取時間交互作用(X1X4)。其中,提取溫度為牛磺酸提取中最主要的影響因素,自溶溫度、提取時間為次要因素,而料液比的影響最小。

    提取溫度是影響牦牛臟器中牛磺酸提取的最主要因素,提取時間和自溶溫度為次要因素,與楊光輝等[3]的研究結(jié)果一致,其在魷魚肝臟中?;撬崽崛」に嚄l件的研究中發(fā)現(xiàn)提取溫度為影響魷魚肝臟中?;撬崽崛〉闹饕蛩?,提取時間為次要因素,且80℃下提取50min為最佳組合,與本實驗(2.2)確定的75℃下提取60min的最佳組合在同一梯度區(qū)間。陳秋虹等[5]研究發(fā)現(xiàn)?;撬崽崛囟葢?yīng)控制在70℃左右,溫度過高,可溶性蛋白質(zhì)溶出變性,溶液粘度增大,反而影響牛磺酸的提取量。因此,本實驗確定牦牛臟器中?;撬岬淖罴烟崛囟葹?5℃,提取時間為60min。

    自溶溫度為影響?;撬崽崛〉牧硪淮我蛩?,(2.2)中最佳自溶溫度為55℃,楊光輝等[3]在針對魷魚肝臟中?;撬崽崛〉难芯堪l(fā)現(xiàn),55℃下自溶22h,?;撬岬奶崛×孔罡撸瑫r發(fā)現(xiàn)自溶時間超過20h后,?;撬岬奶崛×考眲∠陆?,與本實驗結(jié)果一致。

    料液比對牦牛臟器中牛磺酸的影響最小,楊光輝等[3]、錢俊青等[8]、李和生等[9]在針對不同原料中?;撬崽崛〉难芯恐芯l(fā)現(xiàn)料液比為最小影響因素,這主要是由于?;撬峋哂辛己玫乃苄?。

    因此,牦牛臟器中牛磺酸理論最佳提取工藝為:料液比為1∶3(m∶v),自溶溫度為55℃,提取溫度為75℃,提取時間60min。

    2.3 最優(yōu)工藝參數(shù)驗證

    預(yù)測值:針對(2.2)獲得的牛磺酸提取理論最優(yōu)工藝:料液比1∶3(m∶v),自溶溫度55℃,提取溫度75℃,提取時間60min代入(2.2)獲得的回歸方程,得到?;撬岷款A(yù)測值為6.95mg/g。

    驗證:采用(2.2)獲得的理論最優(yōu)提取工藝參數(shù),對青海海北牦牛肝臟中的?;撬徇M(jìn)行提取,并測定其含量,做3次平行,實際測得牛磺酸含量為(6.90±0.10)mg/g。

    通過驗證實驗發(fā)現(xiàn),青海海北牦牛肝臟中?;撬岬念A(yù)測值為6.95mg/g,實際含量為6.90mg/g,二者僅相差0.05mg/g。因此,青海海北牦牛臟器中牛磺酸最佳提取工藝參數(shù)為:料液比為1∶3(m∶v),自溶溫度為55℃,提取溫度為75℃,提取時間60min。

    2.4 牦牛不同臟器中?;撬岷糠治?/h3>

    采用(2.2,2.3)確定的最佳工藝參數(shù),分別對青海海北牦牛肝、腎、心、肺四種臟器中的?;撬徇M(jìn)行提取,并測定其含量,結(jié)果如圖2所示。

    圖2 不同臟器牛磺酸含量Fig.2 Taurine content of yak organs

    對4種臟器中?;撬岷窟M(jìn)行Duncan’s新復(fù)極差多重比較,發(fā)現(xiàn)青海海北牦牛4種臟器之間?;撬岷烤嬖跇O顯著的差異,肝臟含量(7.02mg/g)極顯著高于其他臟器(p<0.01),腎臟中含?;撬?.59mg/g顯著、極顯著高于肺臟(4.46mg/g)和心臟(2.50mg/g)中?;撬岷浚╬<0.05,p<0.01)。

    肝臟和腎臟中?;撬岬母吆恐饕怯捎诟闻K是牛磺酸最主要的合成器官,腎臟是牛磺酸排泄的器官[12],實驗結(jié)果符合牛磺酸在哺乳動物機(jī)體中的代謝及分布特點。盡管青海海北牦牛肝臟中?;撬岷?.02mg/g略低于魷魚肝臟(7.36mg/g)[3],但以我國每年加工魷魚約20萬t[13]計算,魷魚肝臟約占魷魚體重的15%[3],即每年可用來提取?;撬岬聂滛~肝臟為3萬t左右,而牦牛肝臟約占牦牛平均體重(360kg)的1.2%,以2010年全國牦牛屠宰量189.7萬頭計算,可用于?;撬崽崛〉年笈8闻K就達(dá)8萬t,遠(yuǎn)高于魷魚肝臟原料量。因此,牦牛肝臟資源豐富,可以作為天然?;撬岬牧己脕碓础4送?,牦牛腎臟中牛磺酸含量(5.59mg/g)遠(yuǎn)低于牦牛和魷魚肝臟中含量,但高于蛤蜊中?;撬岷浚?.85mg/g)[9],也可作為天然?;撬彷^好的來源。

    3 結(jié)論

    本實驗選用青海海北牦牛肝臟、心臟、肺臟和腎臟為原料,通過優(yōu)化?;撬嶙罴烟崛」に?,并對不同臟器中牛磺酸含量進(jìn)行分析,得到以下結(jié)論:

    3.1 牦牛臟器中?;撬岬淖罴烟崛」に噮?shù):料液比為1∶3(m∶v),自溶溫度為55℃,提取溫度為75℃,提取時間60min。

    3.2 海北牦牛不同臟器中,肝臟含量(7.02mg/g)極顯著高于其他臟器(p<0.01),腎臟中含?;撬?.59mg/g顯著、極顯著高于肺臟(4.46mg/g)和心臟(2.50mg/g)中?;撬岷浚╬<0.05,p<0.01)。

    因此,牦牛肝臟和腎臟中蘊含著豐富的?;撬豳Y源,采用科學(xué)的提取方法,在滿足對天然牛磺酸需求的同時,也實現(xiàn)了牦牛副產(chǎn)物的綜合開發(fā)利用,帶動畜牧業(yè)循環(huán)經(jīng)濟(jì)的健康發(fā)展。

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