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    響應(yīng)曲面法優(yōu)化大腸菌群初發(fā)酵培養(yǎng)基

    2013-09-04 10:21:52呂肖楠姜瞻梅鄭冬梅韓佳彤
    食品工業(yè)科技 2013年19期
    關(guān)鍵詞:酵母粉大腸菌群乳糖

    呂肖楠,田 然,姜瞻梅,鄭冬梅,韓佳彤,田 波

    (東北農(nóng)業(yè)大學(xué)乳品科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,食品學(xué)院,黑龍江哈爾濱150030)

    大腸菌群是指一群在37℃、24h能夠發(fā)酵乳糖、產(chǎn)酸產(chǎn)氣、需氧或兼性厭氧的革蘭氏陰性無(wú)芽孢桿菌[1],廣泛存在于人類和動(dòng)物的腸道中,并且隨糞便廣泛分布。作為評(píng)價(jià)食品衛(wèi)生質(zhì)量指標(biāo)的重要標(biāo)準(zhǔn)之一,大腸菌群具有重要的衛(wèi)生學(xué)意義[2]。目前,針對(duì)大腸菌群的檢測(cè),國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法[3]和國(guó)外檢測(cè)方法[4]中常使用的初發(fā)酵培養(yǎng)基為 LST培養(yǎng)基。但是,使用初發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行發(fā)酵常具有遲緩性、準(zhǔn)確性低等缺點(diǎn)。因此,發(fā)展一種快速、準(zhǔn)確的大腸菌群發(fā)酵培養(yǎng)基是十分必要的。本文在標(biāo)準(zhǔn)LST培養(yǎng)基基礎(chǔ)上,對(duì)培養(yǎng)基中碳源和氮源不同配比對(duì)大腸菌群生長(zhǎng)速率的影響作用進(jìn)行研究,利用Box-Behnken響應(yīng)曲面法優(yōu)化培養(yǎng)基[5-7],旨在提高大腸菌群的發(fā)酵速率,為近一步研究快速檢測(cè)大腸菌群的方法奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    大腸桿菌(Escherichia coli)由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室選育、保藏;營(yíng)養(yǎng)肉湯:蛋白胨10g/L,牛肉粉3g/L,氯化鈉5g/L,pH7.2;營(yíng)養(yǎng)瓊脂:蛋白胨10g/L,牛肉粉3g/L,氯化鈉5g/L,瓊脂15g/L,pH7.2~7.4;LST 培養(yǎng)基:胰蛋白胨 20g/L,氯化鈉5g/L,乳糖5g/L,磷酸氫二鉀2.75g/L,磷酸氫二鉀2.75g/L,月桂基硫酸鈉 0.1g/L,pH6.8~7.0;胰蛋白胨、牛肉粉、酵母粉 生物純,北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;瓊脂粉 生物純,日本Solaribio公司;乳糖分析純,天津市東方衛(wèi)生材料廠;氯化鈉、氫氧化鈉 分析純,天津市凱通化學(xué)試劑有限公司。

    AL204/01型電子天平 梅特勒-托利多(上海)有限公司;HVE-50高溫高壓滅菌鍋、BHC-1100ⅡA2生物安全柜 北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司;HPS-160生化培養(yǎng)箱 哈爾濱東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司;PB-10 pH測(cè)定儀 廣州浩賽電子儀器有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 菌種活化 將大腸桿菌母種在無(wú)菌條件下接種到營(yíng)養(yǎng)瓊脂斜面培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)24h后,放入4℃冰箱待用。

    1.2.2 菌懸液制備 挑取斜面保藏的菌種2~3環(huán)接種于9mL營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基中,培養(yǎng)18~24h后,放入4℃冰箱中待用。

    1.2.3 培養(yǎng)基優(yōu)化方法

    1.2.3.1 乳糖濃度的確定 以LST培養(yǎng)基為基礎(chǔ),保持其它組分不變,向其中添加不同濃度的乳糖,37℃培養(yǎng)24h,以大腸菌群菌落總數(shù)為指標(biāo),計(jì)數(shù)方法參照 GB 4789.2-2010[8],確定乳糖最適添加量。

    1.2.3.2 胰蛋白胨濃度的確定 以LST培養(yǎng)基為基礎(chǔ),保持其它組分不變,分別向培養(yǎng)基中添加不同濃度的胰蛋白胨,37℃培養(yǎng)24h,以大腸菌群菌落總數(shù)為指標(biāo),計(jì)數(shù)方法參照 GB 4789.2-2010[8],確定胰蛋白胨最適添加量。

    1.2.3.3 酵母粉濃度的確定 以LST培養(yǎng)基為基礎(chǔ),保持其它組分不變,分別向培養(yǎng)基中添加不同濃度的胰蛋白胨,37℃培養(yǎng)24h,以大腸菌群菌落總數(shù)為指標(biāo),計(jì)數(shù)方法參照 GB 4789.2-2010[8],確定酵母粉最適添加量。

    1.2.3.4 響應(yīng)面分析實(shí)驗(yàn) 依據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,以乳糖、胰蛋白胨和酵母粉濃度為自變量A、B、C,以其最佳濃度為自變量中心點(diǎn)值,設(shè)計(jì)三因素三水平的響應(yīng)面分析實(shí)驗(yàn),見表1。

    表1 Box-Behnken實(shí)驗(yàn)因素與水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken design

    2 結(jié)果與討論

    2.1 乳糖濃度優(yōu)化

    選取乳糖作為培養(yǎng)基的碳源,考察了不同濃度的乳糖對(duì)大腸菌群發(fā)酵速率的影響。以37℃,培養(yǎng)24h后的菌落總數(shù)作為評(píng)價(jià)指標(biāo),結(jié)果見圖1。

    圖1 不同乳糖濃度對(duì)大腸菌群菌落總數(shù)的影響Fig.1 Influence of different concentration of lactose on the TVCs of coliform group

    由圖1可知,乳糖濃度較小時(shí)菌落數(shù)較少,濃度較高時(shí)會(huì)抑制菌體的生長(zhǎng)。當(dāng)乳糖濃度為0.5g/100mL時(shí),菌落總數(shù)達(dá)到最優(yōu)值4.7×106cfu/mL。在發(fā)酵的過(guò)程中,乳糖具有雙效的作用,既作為碳源為菌體的生長(zhǎng)提供營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),同時(shí)又作為誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)大腸菌群產(chǎn)生β-半乳糖苷酶分解乳糖。乳糖濃度較低時(shí),無(wú)法滿足菌體生長(zhǎng)的需要,使其生長(zhǎng)發(fā)育受到影響,同時(shí),無(wú)法誘導(dǎo)大腸菌群產(chǎn)生β-半乳糖苷酶。隨著乳糖濃度的增加,培養(yǎng)基的滲透壓不斷增加反而會(huì)抑制菌體的生長(zhǎng)和β-半乳糖苷酶的表達(dá)。因此,選取乳糖濃度為0.5g/100mL較為合適。在此濃度時(shí),既能保證菌體的正常生長(zhǎng),又能起到高效的誘導(dǎo)作用。

    2.2 胰蛋白胨濃度優(yōu)化

    保持LST培養(yǎng)基中的其它成分不變,向其中添加不同濃度的胰蛋白胨,37℃培養(yǎng)24h后進(jìn)行菌落計(jì)數(shù),得到較優(yōu)的胰蛋白胨濃度,結(jié)果如圖2所示。

    圖2 不同胰蛋白胨濃度對(duì)大腸菌群菌落總數(shù)的影響Fig.2 Influence of different concentration of tryptone on the TVCs of coliform group

    由圖2可以看出,胰蛋白胨的濃度對(duì)大腸菌群菌體生長(zhǎng)有重要作用。隨著胰蛋白胨添加量的增加,大腸菌群菌落總數(shù)有明顯的提高,但添加量達(dá)到1.5g/100mL后繼續(xù)增加其濃度,菌落數(shù)呈現(xiàn)出下降趨勢(shì)。在大腸菌群生長(zhǎng)的過(guò)程中,胰蛋白胨作為氮源的同時(shí)也可提供碳源,為大腸菌群提供必需的生長(zhǎng)元素和生長(zhǎng)因子,但添加濃度過(guò)高會(huì)抑制大腸菌群的生長(zhǎng),因此選取較優(yōu)的胰蛋白胨濃度為1.5g/100mL。

    2.3 酵母粉濃度優(yōu)化

    保持LST培養(yǎng)基中的其它成分不變,向其中添加不同濃度的酵母粉,37℃培養(yǎng)24h后進(jìn)行菌落計(jì)數(shù),得到較優(yōu)的酵母粉濃度,結(jié)果如圖3所示。

    圖3 不同酵母粉濃度對(duì)大腸菌群菌落總數(shù)的影響Fig.3 Influence of different concentration of yeast powder on the TVCs of coliform group

    由圖3可知,隨著酵母粉濃度的提高,菌落總數(shù)呈現(xiàn)出逐漸上升趨勢(shì),而當(dāng)酵母粉濃度超過(guò)0.3g/100mL時(shí),菌落總數(shù)隨著酵母粉濃度的增加而呈現(xiàn)出下降趨勢(shì)。酵母粉富含蛋白質(zhì)、氨基酸、B族維生素和生長(zhǎng)因子等物質(zhì),能夠?yàn)槲⑸锏纳L(zhǎng)補(bǔ)充氮源和各種維生素及生長(zhǎng)因子[9]。較低濃度的酵母粉對(duì)大腸菌群的生長(zhǎng)并沒(méi)有明顯的促進(jìn)作用,隨著濃度的增加,酵母粉對(duì)大腸菌群的生長(zhǎng)促進(jìn)作用逐漸加強(qiáng)。繼續(xù)增加酵母粉的添加量,由于培養(yǎng)基中滲透壓增加以及溶氧能力減弱,大腸菌群的生長(zhǎng)受到抑制。因此,選取酵母粉的最佳濃度為0.3g/100mL。

    2.4 響應(yīng)曲面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化結(jié)果

    2.4.1 模型的建立與分析 依據(jù)方法1.2.3.2進(jìn)行Box-Behnken實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果見表2。

    表2 Box-Behnken實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 2 Results of response surface experiments

    表3 回歸方程方差分析Table 3 Analysis results of regression and variance

    利用Design Export軟件[10]對(duì)表1中的大腸菌群菌落總數(shù)進(jìn)行回歸分析與回歸擬合,得到響應(yīng)值Y與變量A、B、C之間的回歸方程為Y=10.2-0.062A+0.21B-0.13C-0.1AB-0.075AC-0.075BC-0.53A2-0.43B2-0.3C2?;貧w方程方差分析結(jié)果見表3。

    據(jù)表3可知,模型方程中的常量p<0.0001,表明此模型顯著[11]。模型的失擬項(xiàng)p=0.9136,說(shuō)明失擬不顯著,回歸模型適合[12]。模型的相關(guān)系數(shù) R2=0.9929,表明模型與實(shí)際情況的擬合度較好。A、B、C三個(gè)因素的一次項(xiàng)、二次項(xiàng)以及AB、AC、BC的交互作用對(duì)菌落總數(shù)都有顯著影響,其中因素B、C以及AB、AC、BC的交互作用對(duì)菌落總數(shù)有極顯著影響。

    2.4.2 響應(yīng)面的優(yōu)化與分析 根據(jù)回歸方程所作的響應(yīng)曲面圖如圖4~圖6所示。

    圖4 乳糖濃度和胰蛋白胨濃度對(duì)大腸菌群細(xì)菌總數(shù)的響應(yīng)曲面圖Fig.4 Response surface of concentration of lactose and tryptone on the TVCs of coliform group

    由圖4可知,乳糖、胰蛋白胨和酵母粉的濃度對(duì)大腸菌落菌落數(shù)都有較大的影響。乳糖、胰蛋白胨和酵母粉任意兩者之間的交互作用都顯著。在培養(yǎng)基中其它成分不變的條件下,隨著三者濃度的不斷升高,大腸菌群菌落總數(shù)皆呈現(xiàn)出先增大后逐漸減小的趨勢(shì)。由此說(shuō)明大腸菌群生長(zhǎng)需要適宜的碳氮比,過(guò)高或過(guò)低濃度的碳源或氮源都會(huì)影響大腸菌群的生長(zhǎng)。在適宜的濃度條件下,大腸菌群能夠達(dá)到最佳的生長(zhǎng)狀態(tài)。使用Design-expert 7.0軟件分析對(duì)回歸方程求解得到A=0.5,B=1.64,C=0.29,此時(shí)Y值預(yù)測(cè)為1.025×107cfu/mL。由此,可以初步確定較適宜的培養(yǎng)基組成為乳糖0.5g/100mL,胰蛋白胨1.64g/100mL,酵母粉0.29g/100mL。在此條件下,大腸菌群菌落總數(shù)達(dá)到最佳值為1.025×107cfu/mL。

    圖5 乳糖濃度和酵母粉濃度對(duì)大腸菌群細(xì)菌總數(shù)的響應(yīng)曲面圖Fig.5 Response surface of concentration of lactose and yeast powder on the TVCs of coliform group

    圖6 胰蛋白胨濃度和酵母粉濃度對(duì)大腸菌群細(xì)菌總數(shù)的響應(yīng)曲面圖Fig.6 Response surface of concentration of tryptone and yeast powder on the TVCs of coliform group

    2.4.3 模型驗(yàn)證實(shí)驗(yàn) 在此優(yōu)化條件下進(jìn)行3次驗(yàn)證性實(shí)驗(yàn),得到的大腸菌群實(shí)際菌落總數(shù)結(jié)果見表4,可知平均值為1.033×107cfu/mL,該值與理論預(yù)測(cè)值相差0.84%,說(shuō)明通過(guò)響應(yīng)曲面法優(yōu)化得到的參數(shù)準(zhǔn)確可靠,具有可行性。

    表4 模型驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 4 Results of model validation test

    3 結(jié)論

    本實(shí)驗(yàn)在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,對(duì)大腸菌群初發(fā)酵培養(yǎng)基成分進(jìn)行了優(yōu)化,通過(guò)Box-Behnken響應(yīng)曲面法對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行優(yōu)化,得到影響大腸菌群菌落總數(shù)的二次多項(xiàng)式回歸模型。最終得到的優(yōu)化培養(yǎng)基組成為:乳糖0.5g/100mL,胰蛋白胨1.64g/100mL,酵母粉0.29g/100mL,在此條件下可以得到大腸菌群菌落總數(shù)的最佳值1.025×107cfu/mL,對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行驗(yàn)證,得到的實(shí)際值為1.033×107cfu/mL,與理論預(yù)測(cè)值基本一致。本實(shí)驗(yàn)為進(jìn)一步研究大腸菌群快速檢測(cè)方法奠定了基礎(chǔ)。

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