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    米渣蛋白肽的新型酶解工藝及產(chǎn)品結構表征

    2013-09-04 10:13:02董瑞晨王深旗黎文建趙士強
    食品工業(yè)科技 2013年4期
    關鍵詞:解液溶解性粒徑

    董瑞晨,王深旗,熊 華,黎文建,趙士強,張 忠

    (南昌大學食品科學與技術國家重點實驗室,江西南昌330047)

    大米糖漿制備過程得到的米渣中含有大約50%~70%的蛋白質(zhì)[1],但由于蛋白發(fā)生熱變性,其水溶性很差,難以在食品加工中被廣泛應用,目前大多用作動物飼料[2]。米渣蛋白擁有較全的氨基酸配比,是非常難得的優(yōu)質(zhì)植物蛋白[3-4]。有研究發(fā)現(xiàn),蛋白質(zhì)并非需在腸道中水解為游離氨基酸后才能被機體所吸收利用,而主要是以短肽形式被吸收,且機體對短肽吸收代謝速度較游離氨基酸快[5-7]。小分子肽在人體消化道可直接被人體吸收利用,溶解性好、黏度低、酸及熱穩(wěn)定性好,還具有抗氧化、降血壓等多種生理功能[8]。目前,酶解法已取代酸解法、堿解法等,成為制備米渣蛋白肽的主要方法[9-10]。單一酶解法制備的米渣蛋白肽分子量大、溶解性和乳化能力等功能性質(zhì)欠佳。胰蛋白酶(TRYP)作為特異性強的蛋白酶,為大米蛋白酶解常用酶之一。TRYP酶選擇性水解蛋白中由賴氨酸或精氨酸的羧基所構成的肽鏈,水解得到的賴氨酸與精氨酸所表現(xiàn)出的感官特性有輕度苦味[11-13]。而蛋白在復合蛋白酶(PROT)的外切肽酶及內(nèi)切肽酶的共同作用下水解成為小分子肽[14],最大限度避免了苦味肽產(chǎn)生,其水解條件也相對溫和;同時復合蛋白酶比單一蛋白酶有更高效率和經(jīng)濟性[15]。本文將米渣進行預處理得到濃縮蛋白,經(jīng)復合酶解,對酶解液進行脫色[16],然后采用噴霧干燥得到米蛋白肽粉末,其流動性良好、易溶于水[17],而后對米渣蛋白肽的分子結構表征[18],考察相關理化和功能性質(zhì)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    米渣 江西恒天實業(yè)有限公司;脂肪酶(1500U/g)、中溫α-淀粉酶(3000U/g)諾維信(中國)公司;福林酚試劑 北京鼎國昌盛生物技術責任有限公司;胰蛋白酶(TRYP,4000U/g),復合蛋白酶(PROT,3000U/g)諾維信公司;SDS 美國Sigma公司,分析純;硫酸鉀、硫酸銅、氫氧化鈉、鹽酸、無水碳酸鈉、TCA等其他試劑 分析純。

    U-1800紫外可見掃描儀 西安森冉生物工程有限公司;HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市富華電器有限公司;FA1004電子天平 上海上平儀器公司;飛鴿牌LXJ-IIB離心機、IKA RH basic 1磁力攪拌器 江西鼎技科學儀器有限公司;DGG-9123AD臺式電熱恒溫鼓風干燥箱 上海森信實驗儀器有限公司;JJ-1精密增力電動攪拌器 上海浦東物理光學儀器廠;雷磁PHS-3C pH計 上海精科儀器有限公司;QZP-8移動式高速離心噴霧干燥機 無錫市林洲干燥機廠;KDY-9820凱氏定氮儀 廈門精藝興業(yè)科技有限公司;FSH-Ⅱ高速電動勻漿機 江蘇金壇市環(huán)宇科學儀器廠;FT-IR Nicolet 5700傅立葉紅外光譜儀 美國尼高力公司;PSA NANO 2590型納米粒度儀 英國馬爾文公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 米渣蛋白肽的制備工藝

    1.2.1.1 米渣前處理制備米渣蛋白 向購買的米渣中加入脂肪酶和淀粉酶以除去殘余的脂質(zhì)和淀粉,得到蛋白含量高的濃縮米渣蛋白[19]。其工藝流程如下:以固液比1∶6加水(準確稱取200g米渣加入1200mL蒸餾水)→調(diào)節(jié)溫度40℃及pH5.0→加入0.2%脂肪酶反應1.5h→升溫至50℃,調(diào)節(jié)pH6.0→加入0.8%中溫α-淀粉酶反應1.5h→離心,緩慢傾去上清液→以固液比1∶11加水,在溫度65℃下水洗1.0h→離心,傾去上清液→相同條件下重復水洗兩次。

    1.2.1.2 最佳酶解條件的確定 采用TRYP酶和PROT酶協(xié)同酶解米渣蛋白,可以獲得分子粒徑分布較小的短肽。其工藝流程為:米渣蛋白→加酶→加水→調(diào)節(jié)pH→調(diào)溫→酶解→滅酶→離心→酶解液→脫色→噴霧干燥→米渣蛋白肽粉。以米渣蛋白肽中的溶解蛋白的含量以及短肽的含量為評價指標,對酶解工藝進行優(yōu)化。確定最佳的酶配比、酶解固液比、酶解溫度、酶解pH和反應時間等條件。

    1.2.1.3 測定方法 采用凱氏定氮法測定米渣等樣品中蛋白的含量,采用福林酚法測定酶解液上清液的溶解性蛋白含量,具體步驟參照GB/T 5009.5-2003食品中蛋白質(zhì)的測定。采用TCA沉淀法測定短肽含量(MW<1ku)。具體操作為:稱取一定量的米渣蛋白肽置于干凈燒杯中,加入25mL 15%的TCA溶液,攪拌均勻后以10000r/min離心5min,取上清液,過濾,取定量濾液至消化管中,用半微量凱氏定氮法測定短肽含量。

    1.2.2 米渣蛋白肽酶解條件的正交優(yōu)化實驗設計 米渣經(jīng)過前處理除去脂肪、糖類后,最終得到蛋白含量為85.58%的米渣濃縮蛋白。綜合考慮實驗過程中的酶解效率和經(jīng)濟性,確定選擇TRYP酶與PROT酶的比例為3∶2。在此條件下進一步探究酶解固液比、酶解時間、酶解溫度及pH對酶解效果的影響,確定最佳酶解條件。根據(jù)單因素實驗結果,分別選擇酶解固液比1∶8、1∶9、1∶10、酶解溫度45、50、55℃、酶解pH7.5、8.0、8.5、酶解時間2.5、3.0、3.5h,以酶解后酶解液中溶解性蛋白含量為指標,進行L9(34)正交實驗。具體正交設計見表1。

    表1 正交實驗影響因素及水平Table 1 Design of orthogonal test table

    1.2.3 紅外吸收光譜測定米渣蛋白肽 蛋白樣品受到頻率連續(xù)變化的FT-IR光照射時,分子會吸收某些頻率的輻射,并由其振動或轉動運動引起偶極矩的凈變化,產(chǎn)生分子振動和轉動能級從基態(tài)到激發(fā)態(tài)的躍遷而產(chǎn)生吸收光譜。采用KBr壓片法,樣品及KBr經(jīng)干燥處理后,分別稱取約5mg樣品及200mg純KBr,充分混合后于球磨機中研磨,邊研磨邊使樣品與KBr充分混勻(約2min),直至粒度小于2μm,然后將研磨混勻的混合物放入模具中,于7.0×107Pa下壓成透明薄片,以KBr空白壓片作參比,掃描范圍4000~400cm-1,儀器分辨率4cm-1,掃描32次。分別測定米渣蛋白經(jīng)TRYP酶和PROT酶協(xié)同處理前后的紅外吸收光譜。

    1.2.4 米渣蛋白肽分子粒徑分布的測定 不同粒徑范圍內(nèi)所含粒子的個數(shù)或質(zhì)量,稱為粒徑分布,也稱粒子的分散度。本實驗方法所制得的米渣蛋白肽為均勻、穩(wěn)定、粒徑小的近球形顆粒,適用于粒度儀分析。在優(yōu)化的工藝條件下酶解米渣蛋白,離心后取其上清液,通過PSA NANO 2590型納米粒度儀対酶解液進行測定,可以準確地反映所制備米渣蛋白肽的粒徑大小及分布情況。

    1.2.5 米渣蛋白肽分子的掃描電鏡觀察 掃描電鏡(SEM)能直接觀察大試樣的原始表面,觀察試樣各個區(qū)域的細節(jié)及生物試樣。將酶解液脫色后經(jīng)噴霧干燥得到米渣蛋白肽粉,取少量蛋白肽產(chǎn)品通過高分辨率掃描電鏡觀察其分子的外形輪廓和表面結構。

    2 結果與討論

    2.1 米渣蛋白肽酶解條件的正交優(yōu)化結果分析

    表2為正交實驗的極差分析結果,可以看出四因素對溶解性蛋白含量的影響程度依次為:C>A>D>B,理論酶解最佳工藝組合為:A2B2C2D2,即酶解固液比1∶9、酶解溫度50℃、酶解pH8.0、酶解時間3.0h。驗證實驗表明,米渣蛋白經(jīng)此最佳工藝處理后,所得酶解液中的溶解性蛋白含量為23.49%,高于正交表中的9組實驗結果,也遠高于酶解前的4.35%。同時測得經(jīng)此工藝處理后,酶解液中的短肽含量為16.35%,而酶解前短肽含量僅為0.97%。得到的米渣蛋白肽酶解液為澄清透明的淡紅色液體,粘度小,低苦澀味。說明工藝組合A2B2C2D2為最佳酶解工藝組合,酶解效果較好。

    表2 實驗設計及結果Table 2 Experimental design and results

    2.2 米渣蛋白肽的紅外光譜圖

    圖1 米渣蛋白肽FT-IR圖譜Fig.1 The FT-IR spectra of rice residue protein

    由圖1可明顯看出米渣蛋白的特征吸收峰,經(jīng)TRYP酶和PROT酶協(xié)同酶解處理前后米渣蛋白的FT-IR圖有所差異。以酶解處理前的米渣蛋白(見圖1(a))為例,波數(shù)3288.37cm-1為胺基-NH2、羧基-COOH伸縮振動峰;2963.08cm-1為飽和C-H伸縮振動吸收峰;1399.43cm-1為C-H彎曲振動特征峰;1078.07cm-1為C-O、C-N伸縮振動峰;621.50cm-1為烯烴C-H面外彎曲振動峰。由圖1(b)可以看出酶解后米渣蛋白肽的特征吸收峰均出現(xiàn)小幅的偏移,還有部分波數(shù)在1500~1000cm-1范圍內(nèi)的吸收峰消失,說明可能有部分雜質(zhì)基團在酶解過程中被除去。另外,特征吸收峰尖銳且穩(wěn)定,可推斷所制備米渣蛋白肽為較純凈的蛋白肽粉末,所含基團主要為胺基-NH2、羧基-COOH及烷基C-H等。

    2.3 米渣蛋白肽的粒徑分布圖

    圖2 米渣蛋白肽粒徑分布狀況Fig.2 The particle size distribution of rice residue peptide

    圖2結果顯示,米渣蛋白肽分子粒徑分布在110.1~356.2nm范圍之間,其中在198.0nm的含量最高,為

    36.4 %,平均粒徑為233.5nm,而且其粒徑分布比較均勻,顆粒較小,分布范圍較窄,表明米渣蛋白酶解充分,經(jīng)過酶解裂解為相對分子質(zhì)量較小的肽段,最終形成均勻、穩(wěn)定的小顆粒。

    2.4 米渣蛋白肽的掃描電鏡圖

    圖3 米渣蛋白肽SEM圖Fig.3 The SEM photograph of rice residue peptide

    圖3顯示了米渣蛋白肽的SEM圖,可見米渣蛋白肽分子彼此團聚交聯(lián)在一起,成為直徑較大的不規(guī)則球體顆粒,表面凹凸不平,部分球體還存在破孔現(xiàn)象。球體的直徑約為150μm,應為大量小分子肽團聚交聯(lián)所致。

    3 結論

    采用新型的酶解工藝后,米渣蛋白中溶解性蛋白含量及短肽含量明顯升高,有助于人體吸收。最佳酶解工藝條件為:胰蛋白酶與復合蛋白酶配比為3∶2、酶解固液比1∶9、溫度50℃、pH8.0、時間3.0h。由此得到的蛋白肽產(chǎn)品的溶解性蛋白含量從4.35%升高至23.49%,小分子短肽含量從0.97%提高到16.35%。對產(chǎn)品結構表征發(fā)現(xiàn),其特征吸收峰尖銳且穩(wěn)定,雜峰較少,表明采用此工藝制得的蛋白肽較純;溶解液粒徑分布均勻,粒徑平均為233.5nm;SEM顯示小分子蛋白肽容易團聚包裹在一起形成不規(guī)則球狀顆粒。

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