文朝慧 王軍平 何蘇琴
(1甘肅出入境檢驗(yàn)檢疫局,甘肅蘭州 730020;2甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,甘肅蘭州730070)
番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病菌——丁香假單胞桿菌番茄致病變種Pseudomonas syringaepv.tomato(Okabe)Young,Dye et Wilkie為假單胞菌科假單胞菌屬丁香假單胞細(xì)菌,引起番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病,可為害番茄的葉、莖、花、葉柄和果實(shí)。因其危害的嚴(yán)重性,番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病菌在2007年已列入《中華人民共和國進(jìn)境植物檢疫性有害生物名錄》以及《全國農(nóng)業(yè)植物檢疫性有害生物名單,2006》。番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病又稱番茄細(xì)菌性斑疹病、葉斑病,已在30多個(gè)國家有發(fā)生的報(bào)道,可造成5%~75%的產(chǎn)量損失(Yunis et al.,1980)。本試驗(yàn)從表現(xiàn)番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病癥狀的番茄上分離病原細(xì)菌,通過致病性測定、形態(tài)特征和16S rDNA序列測定對菌株進(jìn)行鑒定,并利用特異性引物對已鑒定菌株及植物發(fā)病組織進(jìn)行目標(biāo)細(xì)菌的PCR擴(kuò)增,旨在對番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病病原菌分子檢測方法進(jìn)行驗(yàn)證,達(dá)到對病害進(jìn)行快速檢測的目的。
2011年7~8月在甘肅省河西地區(qū)采集細(xì)菌性斑點(diǎn)病癥狀明顯的番茄果實(shí),分裝在潔凈塑料袋中,保存于4 ℃冰箱5~7 d。同一個(gè)樣品一部分用于分離病原細(xì)菌,另一部分用于提取發(fā)病組織總DNA進(jìn)行PCR檢測。
依據(jù)田間自然發(fā)病癥狀進(jìn)行病害癥狀描述。
金氏B培養(yǎng)基(KB):蛋白胨20.0 g,甘油10.0 mL,K2HPO41.5 g,MgSO4·7H2O 1.5 g,瓊脂 17.0 g,蒸餾水1 000 mL。
LB培養(yǎng)液:胰蛋白胨10.0 g,酵母提取物5.0 g,NaCl 10.0 g,蒸餾水1 000 mL。
磷酸鹽緩沖液(PBS):NaCl 8.0 g, Na2HPO4·2H2O 1.15 g,KH2PO40.2 g,KCl 0.2 g, 蒸餾水 1 000 mL, pH 7.2~7.4。
引物:①細(xì)菌 16S rDNA 通用引物 PF:5′-AGAGTTTGATCATGGCTCAG-3′,PR:5′-ACGGTTACCTTGTTACGACTT-3′;②擴(kuò)增Pseudomonas syringaepv.tomato hrpZPst基因片段的特異性引物 MM5F/MM5R(Zaccardelli et al.,2005),MM5F:5′-GAACGAGCTGAAGGAAGACA-3′,MM5R:5′-CAGCCTGGTTAGTCTGGTTA-3′。PCR引物委托寶生物工程(大連)有限公司合成。
試劑:TaqDNA聚合酶、dNTP、100 bp ladder DNA marker、瓊脂糖凝膠回收試劑盒、Escherichia coliDH5α感受態(tài)細(xì)胞、pMD18-T載體和植物基因組提取試劑盒為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品;其他化學(xué)試劑為國產(chǎn)分析純。
采用平板劃線分離法(方中達(dá),1998)。用無菌解剖刀切取番茄果實(shí)病健交界部位組織,75%酒精消毒1 min,經(jīng)無菌水沖洗3~5次后置于無菌培養(yǎng)皿中切碎,加無菌水浸泡20 min左右,然后用接種環(huán)蘸取該組織液在KB培養(yǎng)基上劃線,28 ℃恒溫培養(yǎng)。長出明顯可見單菌落后,挑取少許菌膿在KB培養(yǎng)基上再次劃線,做純化培養(yǎng)。純化菌株在KB培養(yǎng)基上28 ℃培養(yǎng)24 h,觀察細(xì)菌形態(tài)及培養(yǎng)性狀,并在紫外燈下觀察是否產(chǎn)生熒光。
16S rDNA 基因序列測定:挑取KB平板上生長24 h的新鮮單菌落至LB培養(yǎng)液中,28 ℃、180 r·min-1振蕩培養(yǎng) 24 h,取 800 μL 菌液,8 000 r·min-1離心 5 min,收集菌體,用 1.5 mL 0.01 mol·L-1pH7.4 的PBS緩沖液重懸,離心洗滌3次后用800 μL 滅菌雙蒸水重懸。所得菌體98℃處理5 min,于冰上放置5 min,4 ℃存放備用。擴(kuò)增引物為細(xì)菌16S rDNA通用引物PF/PR。PCR 反應(yīng)體系:10×PCR 緩沖液 5.0 μL,25 mmol·L-1MgCl25.0 μL,2.5 mmol·L-1dNTPs 2.0 μL,10 μmol·L-1PF、PR 各 1.0μL,TaqDNA 聚合酶(5 U·μL-1) 0.3 μL,模板(細(xì)菌裂解液) 2.0 μL,ddH2O 補(bǔ)足體積至 50 μL。PCR 擴(kuò)增程序:94 ℃ 5 min;94 ℃ 45 s,55 ℃ 45 s,72 ℃ 2 min,30 個(gè)循環(huán);72℃ 10 min。
分離細(xì)菌的特異性分子檢測:用引物MM5F/MM5R擴(kuò)增hrpZPst基因片段,預(yù)期擴(kuò)增產(chǎn)物大小532 bp。以雙蒸水為陰性對照。PCR反應(yīng)體系:10×PCR緩沖液 2.5 μL,2.5 mmol·L-1dNTPs 1 μL,10 μmol·L-1MM5F、MM5R 各 1 μL,TaqDNA 聚 合 酶(5 U·μL-1) 0.3μL, 模 板(細(xì)菌裂解液) 2.0 μL,ddH2O補(bǔ)足體積至25 μL。PCR擴(kuò)增程序:94℃ 5 min;94℃ 30 s,55℃ 30 s,72 ℃ 1 min,35 個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min。
PCR反應(yīng)結(jié)束后,取8μL擴(kuò)增產(chǎn)物用1.0% 瓊脂糖凝膠電泳檢測并記錄結(jié)果。擴(kuò)增產(chǎn)物由柱式瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒回收純化后與克隆載體pMD18-T連接,轉(zhuǎn)化E. coliDH5α感受態(tài)細(xì)胞,進(jìn)行藍(lán)白斑篩選。挑取白斑,進(jìn)行PCR鑒定,篩選出含有目標(biāo)外源片段的重組克隆,送金唯智生物科技(北京)有限公司進(jìn)行雙向序列測定。測序結(jié)果與GenBank中已登錄的細(xì)菌基因序列進(jìn)行BLAST比對。
選取2個(gè)已鑒定的代表性菌株在無菌栽培的番茄苗上噴霧接種測定致病性(任欣正,1994)。接種菌液濃度為1×106cfu·mL-1,噴霧接種到6~7葉期的番茄葉片上,以接種無菌水為對照,接種后的植物材料置保濕桶中保濕48 h,保持28 ℃。每天觀察發(fā)病情況,待植株發(fā)病后從病斑上再次分離病原細(xì)菌。
檢測所用的番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病菌、番茄潰瘍病菌、成團(tuán)泛菌、假單胞桿菌、金黃桿菌、短小桿菌和不動(dòng)桿菌均分離自甘肅河西地區(qū)的番茄病果;分別制備所有供試細(xì)菌的裂解液為模板進(jìn)行特異性引物的PCR擴(kuò)增,以驗(yàn)證MM5F/MM5R引物的特異性。PCR擴(kuò)增體系及擴(kuò)增程序與1.4相同。
利用植物基因組提取試劑盒提取番茄發(fā)病組織總DNA,紫外分光光度計(jì)檢測所提取DNA的純度,并將DNA濃度調(diào)至約20 ng·μL-1。以此DNA為模板,用引物MM5F/MM5R進(jìn)行PCR擴(kuò)增,檢測病樣中的細(xì)菌。
番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病的染病葉柄和莖產(chǎn)生黑色斑點(diǎn),易連成斑塊,周圍無黃色暈圈(圖1-a);染病葉片產(chǎn)生近圓形或不規(guī)則斑點(diǎn),深褐色至黑色,周緣具黃色暈圈(圖1-b、c);幼嫩綠果染病,初現(xiàn)稍隆起的黑褐色小斑點(diǎn)(圖1-d),隨著病害的發(fā)展,果實(shí)近成熟時(shí),圍繞斑點(diǎn)的組織仍保持較長時(shí)間綠色,病斑不潰腐,病斑周圍黑色,中間色淺,呈黃棕色,并有輕微隆起,但病斑整體凹陷(圖1-e~i);田間濕度大時(shí),病斑周圍可見浸潤環(huán),病斑上可產(chǎn)生灰白色菌膿(圖1-f)。
分離純化的9個(gè)細(xì)菌菌株革蘭氏染色陰性,菌體桿狀,無莢膜,無芽孢,大小為(0.5~1.0)μm×(1.5~5.0)μm。菌株在KB培養(yǎng)基上28 ℃培養(yǎng)2 d,形成圓形淡黃綠色菌落,菌落全緣,表面光滑,不透明,黏稠狀,菌落直徑2~3 mm。在 紫外燈下觀察產(chǎn)生黃綠色熒光。
以供試菌株裂解液為模板進(jìn)行16S rDNA 的PCR擴(kuò)增,得到約1.5 kb的PCR產(chǎn)物,擴(kuò)增產(chǎn)物轉(zhuǎn)化連接后進(jìn)行雙向測序,測序結(jié)果表明,該片段長1 502 bp。將測定的序列(登錄號(hào):JQ945223)在NCBI進(jìn)行BLAST比對,該序列與GenBank中已有P. syringaepv.tomato的16S rDNA序列同源性達(dá)99%。結(jié)合菌落、菌體形態(tài)特征、革蘭氏染色及致病性測定結(jié)果,將該菌株鑒定為丁香假單胞桿菌番茄致病變種(P. syringaepv.tomato)。
檢測引物MM5F/MM5R在分離純化的9個(gè)菌株(表1)中均擴(kuò)增出預(yù)期大小的特異性片段(圖2),隨機(jī)選取擴(kuò)增產(chǎn)物轉(zhuǎn)化連接后進(jìn)行雙向測序,所得序列與GenBank中P. syringaepv.tomato的特異性序列同源性達(dá)100%,表明9個(gè)菌株均為P. syringaepv.tomato。
供試菌株噴霧接種后第5天開始出現(xiàn)癥狀,葉片上產(chǎn)生深褐色不規(guī)則斑點(diǎn)。發(fā)病后取葉部病組織再分離,獲得菌落及革蘭氏染色特征與原純培養(yǎng)一致的細(xì)菌。
圖1 番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病自然發(fā)病癥狀
引物MM5F/MM5R能從供試的Pseudomonas syringaepv.tomato7個(gè)菌株中特異地?cái)U(kuò)增出一條530 bp左右的條帶,而其他供試菌株及空白對照無擴(kuò)增條帶或擴(kuò)增出非特異性條帶(表1,圖3)。表明該引物具有特異性,可以將P.syringaepv.tomato與番茄可能攜帶的其他細(xì)菌區(qū)分開。
圖2 引物MM5F/MM5R的PCR擴(kuò)增結(jié)果
分別從番茄發(fā)病組織提取總DNA,用引物MM5F/MM5R 進(jìn)行PCR檢測,電泳結(jié)果顯示,所有7個(gè)病樣均產(chǎn)生清晰的特異性擴(kuò)增條帶(圖4),因此該引物對為Pseudomonas syringaepv.tomato快速檢測的特異性引物。
表1 試驗(yàn)所用細(xì)菌菌株
圖3 引物MM5F/MM5R的特異性檢測
圖4 自然感病番茄PCR檢測
番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病已在我國的部分省份和地區(qū)發(fā)現(xiàn)(馮凌云 等,2000;趙廷昌 等,2001;趙子俊 等,2001;王曉輝 等,2006;楊春泉 等,2008;李志棟,2010),為局限性發(fā)生。病菌在田間通過雨水、昆蟲、農(nóng)事操作進(jìn)行傳播(趙廷昌 等,1999),播種帶菌種子,幼苗即可發(fā)病,田間只要有10%的植株發(fā)病,就可傳播至整個(gè)地塊,造成流行。
在甘肅省,鄧剛等(2008)報(bào)道2006~2007年間張掖地區(qū)番茄大面積發(fā)生番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病類似病害,發(fā)病率達(dá)40%~100%。筆者在調(diào)查中發(fā)現(xiàn),2000年12月,蘭州市紅古區(qū)一農(nóng)場的3.33 hm2日光溫室番茄中,約有2.67 hm2不同程度發(fā)生番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病類似病害;2004年11月,榆中縣和平鎮(zhèn)一農(nóng)場的1 334 m2日光溫室中,正值開花期的番茄嚴(yán)重感染細(xì)菌性斑點(diǎn)病類似病害;2011年 8月,張掖市的辣椒上也有該病害的發(fā)生。鑒于目前該病害有蔓延和加重的趨勢,為防止番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病向非疫區(qū)的傳播蔓延,應(yīng)提高對病害的識(shí)別能力,嚴(yán)格執(zhí)行檢疫措施,加強(qiáng)種子檢疫。
特異性是檢測特定病原菌所必需的條件。hrpZ基因是植物病原細(xì)菌所獨(dú)有的基因,其編碼產(chǎn)物與致病性有關(guān)(James & Alan,1997),研究表明該基因是丁香假單胞菌致病變種快速鑒定的理想分子指標(biāo)(Zaccardelli et al.,2005),引物MM5F/MM5R擴(kuò)增的目的片段是P. syringaepv.tomato的hrpZ基因。利用引物MM5F/MM5R對分離自番茄病果的16種細(xì)菌菌株進(jìn)行特異性擴(kuò)增,可從P. syringaepv.tomato中擴(kuò)增得到一條530 bp左右的條帶,而其他供試菌株無擴(kuò)增條帶或僅有非特異性條帶出現(xiàn),驗(yàn)證了該引物具有特異性,可以將P. syringaepv.tomato與番茄可能攜帶的其他細(xì)菌區(qū)分開,可作為分子檢測的特異性引物。
與常規(guī)細(xì)菌學(xué)鑒定試驗(yàn)相比,hrpZ基因的分子鑒定具有快速、易操作、結(jié)果客觀等優(yōu)勢。利用擴(kuò)增hrpZPst基因片段的引物MM5F/MM5R,可以直接從植物組織總DNA中擴(kuò)增出番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病病菌的特異性條帶,能快速檢測病原細(xì)菌,便于及時(shí)對病害進(jìn)行防控。
鄧剛,屈星,陳秀蓉,楊成德,薛莉.2008.甘肅番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病病原菌鑒定.植物保護(hù),34(5):47-51.
方中達(dá).1998.植病研究方法.北京:農(nóng)業(yè)出版社:179-218.
馮凌云,趙廷昌,孫福在,劉秋,王玉山.2000.遼寧省發(fā)生番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)?。|寧農(nóng)業(yè)科學(xué),(1):57-58.
李志棟.2010.內(nèi)蒙古加工型番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病病原鑒定及種子帶菌檢測技術(shù)的研究〔碩士論文〕.呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué).
任欣正.1994.植物病原細(xì)菌的分類和鑒定.北京:農(nóng)業(yè)出版社:86-106.
王曉輝,李國英,任毓忠,薛小偉,黃素芳.2006.新疆加工番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病病原鑒定.西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),15(2):72-74.
楊春泉,陳宜修,林玉,蔡學(xué)清,邱思鑫,劉春瑩,胡方平.2008.福建省番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病的病原鑒定.福建農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,37(6):12-16.
趙廷昌,于莉,孫福在,馮凌云.1999.番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病及其防治.植物保護(hù),25(4):56-56.
趙廷昌,孫福在,宋文生.2001.番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病病原菌鑒定.植物病理學(xué)報(bào),31(1):37-42.
趙子俊,林忠敏,趙曉軍,趙廷昌,孫福在.2001.山西發(fā)生番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)?。脖<夹g(shù)與推廣,21(7):37.
James R A,Alan C.1997.The type Ⅲ (Hrp) secretion pathway of plant pathogenic bacteria:trafficking harpins,Avr proteins,and death.Journal of Bacteriology,179:5655-5662.
Yunis H,Bashan Y,Okon Y,Henis Y.1980.Weather dependence yield losses and control of bacterial speck of tomato caused byPseudomonas tomato.Plant Disease,64:937-939.
Zaccardelli M,Spasiano A,Bazzi C,Merighi M.2005.Identification andin plantadetection ofPseudomonas syringaepv.tomatousing PCR amplification ofhrpZPst.Eur J Plant Pathol ,111:85-90.