夏海濱, 李 星
(陜西師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,陜西 西安710062)
miRNA是近年來發(fā)現(xiàn)的廣泛存在于真核生物中的一類長18~26個(gè)核苷酸的內(nèi)源性非編碼小分子RNA,可通過與靶mRNA的3′UTRs(Untranslated Regions)近乎完全互補(bǔ)結(jié)合,在轉(zhuǎn)錄后水平使其降解或者與之不完全互補(bǔ)結(jié)合在翻譯水平抑制蛋白合成,從而在基因表達(dá)中發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用[1].miRNA最早是在線蟲中觀察到的,包括lin-4和let-7[1]基因,線蟲的發(fā)育由這些基因所調(diào)控.隨后miRNA被發(fā)現(xiàn)在包括從線蟲到果蠅以及人的多種組織中存在[2].目前,已發(fā)現(xiàn)6 000多個(gè)miRNA,其中包括超過600個(gè)人類的miRNA[3].其中約1/3的蛋白編碼基因受miRNA調(diào)控[4].miRNA的主要功能是調(diào)節(jié)生物體生長、發(fā)育和疾病發(fā)生過程中有關(guān)基因的表達(dá).近來多項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn),若干miRNA在各種腫瘤組織中的表達(dá)水平有不同程度上調(diào)或下調(diào),這一現(xiàn)象表明miRNA在腫瘤細(xì)胞中表達(dá)水平的異常,是腫瘤發(fā)生、發(fā)展的重要影響因素.
miRNA的生成依次在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中進(jìn)行,包括5個(gè)重要步驟:在細(xì)胞核中,編碼miRNA基因在RNA polⅡ (RNA polymeraseⅡ)的作用下,轉(zhuǎn)錄出具有莖-環(huán)結(jié)構(gòu)的初級miRNA(primiRNA).Pri-miRNA在RNA聚合酶ⅢDrosha和輔助因子雙鏈RNA可吸附蛋白(Digeorge Syndrome Critical Region gene 8,DGCR8)的聯(lián)合剪切作用下,形成長度為60~70nt并含有莖環(huán)結(jié)構(gòu)的雙鏈RNA,即 前體miRNA(Pre-miRNA)[3].Pre-miRNA在依賴Ran-GTP的Exportin5作用下從細(xì)胞核轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞質(zhì)中.在細(xì)胞質(zhì)中,RNA轉(zhuǎn)移內(nèi)切酶Dicer在TRBP和Ago2的協(xié)助下識別premiRNA雙鏈的5′末端磷酸基及3′末端突出.Dicer剪切發(fā)夾樣pre-miRNA形成22bp不完全互補(bǔ)的雙鏈.成熟的miRNA與其互補(bǔ)鏈結(jié)合成雙螺旋結(jié)構(gòu),當(dāng)雙螺旋打開后,其中的一條會(huì)與RNA誘導(dǎo)沉默復(fù)合物(RNA-induced Silencing Complex,RISC)結(jié)合,形成非對稱RISC復(fù)合體 (Asymmetric RISC Assembly).該非對稱RISC復(fù)合物能夠與目標(biāo)靶mRNA相結(jié)合[5].
近年研究發(fā)現(xiàn)約50%已知的miRNAs與多種人類腫瘤相關(guān),表明其在腫瘤發(fā)生中具有重要作用.從已證實(shí)功能的miRNA來看,它們實(shí)際上可作為致癌基因或抑癌基因而發(fā)揮作用.據(jù)報(bào)道有些miRNA在腫瘤中表達(dá)是降低的,包括let-7、miR-15a/miR-16-1、miR-34、miR-10、miR-125、miR-143/miR-145等.有些miRNA在腫瘤中的表達(dá)是升高的,包括miR-17-92、miR-20、miR-21、miR-155等.下面將介紹至今研究較為深入的與腫瘤發(fā)生發(fā)展相關(guān)的miRNA.
let-7最早在線蟲中發(fā)現(xiàn),它能夠調(diào)控細(xì)胞的分化和增殖的時(shí)序.研究發(fā)現(xiàn)let-7基因家族的表達(dá)水平在肺癌、卵巢癌、乳腺癌等多種腫瘤細(xì)胞中顯著下調(diào),而且肺癌和乳腺癌中l(wèi)et-7a的表達(dá)水平與患者的生存時(shí)間呈正相關(guān)[6].let-7家族編碼的miRNA是第一個(gè)被發(fā)現(xiàn)的可以調(diào)節(jié)表達(dá)原癌基因RAS蛋白的miRNA.Johnson等在線蟲中利用RNA干擾技術(shù),發(fā)現(xiàn)let-7能負(fù)調(diào)控其靶蛋白RAS[7].此后Kumar等[8]通過實(shí)驗(yàn)證實(shí)let-7可直接調(diào)控c-Myc的表達(dá),并且發(fā)現(xiàn)let-7可與其靶基因RAS和c-Myc互補(bǔ)配對而下調(diào)RAS、c-Myc的表達(dá),抑制其翻譯過程.目前研究已證實(shí)let-7miRNA表達(dá)譜在腫瘤細(xì)胞與正常細(xì)胞中存在明顯差異,因此let-7 miRNA在腫瘤早期診斷方面可能有重要意義.Guled的研究表明,在惡性間皮瘤中,let-7b的表達(dá)呈上調(diào)趨勢,與此同時(shí)let-7e的表達(dá)量則進(jìn)行下調(diào)[9].這提示let-7基因家族成員在同一細(xì)胞中具有不同的潛在的分化調(diào)節(jié)作用.
研究發(fā)現(xiàn)miR-15和miR-16位于慢性淋巴白血?。–hronic Lymphocytic Leukemia,CLL)患者中易丟失的約30kb染色體片段中.在約50%的外套細(xì)胞淋巴瘤(Mantle Cell Lymphoma)、16%~40%的多發(fā)性骨髓瘤(Multiple Myeloma)和60%的前列腺癌(Prostate Carcinoma)中可檢測到這樣的缺失區(qū)[10].提示在染色體13q14基因區(qū)域至少存在一種或多種腫瘤抑制基因.Cimmino等發(fā)現(xiàn)在約65%的CLL患者中miR-15a和miR-16-1發(fā)生缺失或表達(dá)下調(diào)[11],與此同時(shí)BCL-2基因則呈過表達(dá),miR-15a和miR-16-1的表達(dá)水平和BCL-2蛋白表達(dá)水平呈明顯負(fù)相關(guān).BCL-2蛋白在細(xì)胞凋亡中起著關(guān)鍵作用,因此推測miR-15a和miR-16-1的缺失或下調(diào)可能會(huì)導(dǎo)致BCL-2表達(dá)增強(qiáng),從而導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生.
在哺乳動(dòng)物中發(fā)現(xiàn)miR-34家族包含3個(gè)miRNAs,分別是miR-34a、miR-34b和miR-34c.其中miR-34a定位于1p36上,而miR-34b和miR-34c共同分享一個(gè)轉(zhuǎn)錄本,定位于染色體11q23上[12].在小鼠研究中發(fā)現(xiàn),miR-34a在腦部呈高表達(dá),而miR-34b/c則在肺組織中呈高表達(dá).Tazawa等研究發(fā)現(xiàn),在36%的直腸癌和73%的前列腺癌中miR-34a的表達(dá)水平下調(diào),在43%的非小細(xì)胞型肺癌中miR-34b發(fā)生下調(diào).并且當(dāng)miR-34a的活性被抑制后,p53誘發(fā)的細(xì)胞凋亡率大幅下調(diào),而過表達(dá)miR-34a的腫瘤細(xì)胞的成瘤能力明顯降低[13].這些miRNA的異常表達(dá)同時(shí)下調(diào)多種細(xì)胞周期調(diào)節(jié)蛋白,導(dǎo)致細(xì)胞周期阻滯[12].因此,恢復(fù)miR-34的功能將被視為一條治療腫瘤的有效途徑.
miR-143和miR-145定位于染色體5q32-33D的脆性位點(diǎn)處[14].在乳腺癌、前列腺癌、宮頸癌、淋巴系統(tǒng)腫瘤及大腸癌細(xì)胞等腫瘤細(xì)胞中miR-143和miR-145表達(dá)下調(diào)[15].目前尚未發(fā)現(xiàn)miR-143和miR-145確定作用的靶基因,而潛在的基因包括有:信號傳導(dǎo)途徑中的基因,如Raf、RICS、G-protein γ7、HGK;基因表達(dá)的染色質(zhì)調(diào)控基因,如M96A,SMARCF1;蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)錄和代謝過程的基因,如ATP1A1、GOLGA2、SMS、TMOD1、NUDT5、PAH、DHFR和MTHFR;處理加工RNA和蛋白質(zhì)的基因,如HNRPC、TXNDC4、ERP44等[15].Chen等發(fā)現(xiàn)miR-143是通過抑制KRAS的翻譯來抑制結(jié)腸癌增殖的[16].但 是Kulda[17]認(rèn)為miR-143在癌變細(xì)胞中的作用是非常復(fù)雜的,目前還難以確定miR-143究竟是抑癌或是致癌miRNA.
miR-155定位于人染色體21q21,位于BIC基因241~262位之間[14].與TS-miRs(Tumor Supressor-miRNAs)不同的是,致癌miRNA通常在腫瘤中表達(dá)上調(diào),并表現(xiàn)出增殖或抗凋亡活性.miR-155屬于最早被鑒定的致癌microRNA之一,它與非蛋白編碼基因BIC共表達(dá).miR-155可以通過影響細(xì)胞因子的生成從而調(diào)節(jié)T輔助細(xì)胞的分化[18],同時(shí)Rodriguez等[19]發(fā)現(xiàn)bic/mir-155能夠通過調(diào)節(jié)淋巴和樹突細(xì)胞的功能引起免疫應(yīng)答缺陷.Lee等研究發(fā)現(xiàn)在霍奇金淋巴瘤(HL)、原發(fā)性縱隔B細(xì)胞淋巴瘤(PMBL)中BIC的表達(dá)與miR-155的水平一致,提示BIC可能為miR-155的前體[14].通常,在被激活的B細(xì)胞、T細(xì)胞和單核細(xì)胞中miR-155都有較高水平的表達(dá)[20].Tam等曾在淋巴細(xì)胞瘤模型中驗(yàn)證BIC編碼的mRNA能與c-Myc相互作用促進(jìn)細(xì)胞增殖,并參與淋巴瘤的發(fā)生和發(fā)展,推斷BIC與c-Myc之間的相互作用是通過miR-155來實(shí)現(xiàn)的.因此,miR-155可能是作為癌基因與c-Myc協(xié)同發(fā)揮作用[21].
具有原癌基因活性的miR-21位于染色體的脆性區(qū)域17q23.2,它在大多數(shù)癌細(xì)胞中的表達(dá)均有上調(diào)[3].已有的研究結(jié)果顯示,miR-21能夠促進(jìn)腫瘤細(xì)胞生長并同時(shí)抑制細(xì)胞凋亡.miR-21可以直接靶向PTEN使其下調(diào),從而導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞凋亡率明顯下降.此外,miR-21也可靶向于一種促凋亡基因PDCD4[22].通常miR-21在HCC中的表達(dá)是上調(diào)的,而PDCD4在肝癌細(xì)胞(HCC)中則是下調(diào)的.這表明miR-21可以同時(shí)通過靶向PTEN和PDCD4來抑制凋亡.近來研究表明,miR-21還可靶向于其他重要的腫瘤抑制基因,包括TPM1和SERPINB5[23],提示miR-21也有可能在促進(jìn)腫瘤侵襲和遷移中扮演重要的角色.
與miR-21一樣,miR-17-92是另一種在癌組織中高表達(dá)的miRNAs.miR-17家族包括7種miRNA:miR-17-5p,miR-17-3p,miR-18,miR-19a,miR-19b-1,miR-20以及miR-92-1[24].miR-17家族位于人類染色體13q31上C13orf25基因初級轉(zhuǎn)錄本的第3個(gè)內(nèi)含子區(qū).miR-17-92表達(dá)簇所在的13q31.3在多種類型淋巴瘤及實(shí)體瘤中經(jīng)常發(fā)生片段的擴(kuò)增.He等[24]發(fā)現(xiàn)過表達(dá)的miR-17-92與c-Myc可共同誘導(dǎo)鼠B細(xì)胞淋巴瘤的生成及腫瘤組織中凋亡細(xì)胞的比例降低;而在單獨(dú)過表達(dá)c-Myc所誘發(fā)的淋巴瘤模型中,其組織中細(xì)胞凋亡的比例增加,表明miR-17-92可能具有阻斷c-myc誘導(dǎo)凋亡作用的功能.此外,O′Donnell等[25]發(fā)現(xiàn),這些miRNAs在轉(zhuǎn)錄水平受到c-Myc的調(diào)控,在多細(xì)胞模型中,誘導(dǎo)c-Myc的表達(dá)可以增加miR-17的水平.他的研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄因子E2F1是miR-17和miR-20的靶基因.E2F1既能通過激活DNA合成期的S期基因加速細(xì)胞增殖,也能通過ARF-P53途徑加速細(xì)胞凋亡.這些研究表明,miR-17-92家族主要是通過抑制抑癌基因和細(xì)胞周期調(diào)控基因的表達(dá)來誘導(dǎo)腫瘤的發(fā)生.
同正常細(xì)胞相比,某些miRNA在腫瘤組織及細(xì)胞中呈現(xiàn)高表達(dá),因此miRNA有潛力成為腫瘤新的標(biāo)記,并有可能成為腫瘤診斷、預(yù)后的生物標(biāo)記物.RT-PCR、Northern-blot和microarray是研究這一方面的有力工具.Lee等[26]通過原位RT-PCR技術(shù)在胰腺細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)miR-221、miR-376a和miR-301有異常表達(dá),而在基質(zhì)細(xì)胞、良性的胰腺腺泡或腺管中則未出現(xiàn)異常.Yanaihara等[27]發(fā)現(xiàn)hsamiR-155高表達(dá)和hsa-let-7a-2低表達(dá)與肺腫瘤的預(yù)后不良有關(guān).Lu等[28]根據(jù)微珠流式細(xì)胞術(shù)建立的miRNAs表達(dá)圖譜,對腫瘤組織和正常組織的miRNAs表達(dá)譜進(jìn)行了比較,發(fā)現(xiàn)不同腫瘤類型間的miRNAs的表達(dá)譜存在一定差異.利用miRNAs表達(dá)譜的不同對不同組織來源的腫瘤進(jìn)行單獨(dú)聚類.來源于上皮細(xì)胞的腫瘤如結(jié)腸癌、肝癌、胰腺癌和胃癌等可以歸為一類,顯示出miRNAs表達(dá)譜有助于人類腫瘤的組織分型.另外Lu等認(rèn)為,miRNAs可能會(huì)在決定細(xì)胞分化狀態(tài)方面起到進(jìn)一步的作用,將腫瘤組織的miRNAs表達(dá)譜與正常組織相比可確定這些細(xì)胞的分化程度.因此建立腫瘤miRNA標(biāo)簽或miRNA表達(dá)譜,將有助于對癌癥的診斷與治療.
miRNA作為腫瘤抑制基因?qū)τ谀[瘤的治療具有很大的影響.在腫瘤中,針對某些特定的miRNA的表達(dá)進(jìn)行干預(yù)可控制腫瘤的相關(guān)過程如細(xì)胞分化、增殖和凋亡等.近年來應(yīng)用miRNA治療腫瘤主要有兩個(gè)策略.一種策略是針對在腫瘤組織中下調(diào)的miRNA,導(dǎo)入相應(yīng)外源的miRNA以提升其表達(dá),可抑制腫瘤細(xì)胞的增殖和/或誘導(dǎo)其凋亡,如通過補(bǔ)充與天然miRNA序列相同的小分子可增強(qiáng)miRNA的 作 用.Takamizawa等[29]將 合成 的let-7補(bǔ)充到let-7低表達(dá)的肺腺癌細(xì)胞株A549中,抑制RAS蛋白的翻譯,腫瘤細(xì)胞的生長明顯受到抑制.這種方法與siRNA相比,由于前者來源于細(xì)胞基因組中,其序列相對固定,并且體內(nèi)存在miNRA表達(dá)的調(diào)控機(jī)制,并由組織特異性啟動(dòng)子所控制,而siRNA由于是人工設(shè)計(jì)合成的一段小干擾RNA,使用siRNA進(jìn)行基因治療則會(huì)使機(jī)體產(chǎn)生較大的免疫反應(yīng).另一種策略是應(yīng)用反義技術(shù)抑制上調(diào)的miRNA.人們直接將化學(xué)合成的針對成熟miRNA序列的反義寡核苷酸(AMOs)用于腫瘤的治療研究.He等[24]發(fā)現(xiàn),在轉(zhuǎn)基因小鼠體內(nèi)表達(dá)mir-17-92能夠有效抑制c-myc誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡,從而加快腫瘤形成.而Krutzfeldt[30]等開發(fā)出一組拮抗miRNA的藥物,小鼠尾靜脈注射拮抗miR-16、miR-122、miR-192和miR-194的抗miRNA寡核 苷 酸(antagomirs)會(huì)導(dǎo)致小鼠肝、肺、腎、心、小腸、脂肪、皮膚、骨髓、肌肉、卵巢和腎上腺等組織中相應(yīng)的miRNA明顯減少.這種方法比其他抗腫瘤藥物更為穩(wěn)定且毒性小,可以有效的控制miRNA在各個(gè)器官中的活性.
目前miRNAs在動(dòng)物生長發(fā)育、細(xì)胞增殖、分化、凋亡及基因調(diào)控中的作用,引發(fā)了人們對miRNAs與腫瘤形成之間關(guān)系的思考.無疑抑癌與致癌miRNAs的發(fā)現(xiàn)將成為癌癥研究的新熱點(diǎn).近年來人類對miRNA的認(rèn)識已取得很大進(jìn)展,大量新的miRNA被發(fā)現(xiàn),對miRNA作用機(jī)制和一些基因的功能有了較為全面的認(rèn)識,并且已經(jīng)開始進(jìn)行miRNA在腫瘤等人類疾病的診斷和治療方面的探索.miRNA作為細(xì)胞網(wǎng)絡(luò)調(diào)控表達(dá)中的關(guān)鍵因子,影響著多條信號傳導(dǎo)通路.通常一個(gè)miRNA可以影響多個(gè)靶基因,而一個(gè)靶基因又可受多個(gè)miRNA的調(diào)控.然而有關(guān)miRNA的研究還有許多難點(diǎn),如miRNA存在時(shí)空表達(dá)特異性,不同類型腫瘤、同一類型腫瘤的不同階段其miRNA表達(dá)均存在高度時(shí)空特異性.再比如miRNA是通過什么信號轉(zhuǎn)導(dǎo)方式與靶基因的mRNA的3'端結(jié)合,并影響其翻譯功能.因此揭示miRNA的作用機(jī)制對于人們認(rèn)識體內(nèi)miRNA之間、miRNA與mRNA之間、miRNA與蛋白質(zhì)以及與DNA之間的網(wǎng)絡(luò)交互作用具有重要的意義.相信不久的將來,miRNA研究一定會(huì)有突破性進(jìn)展,從而推動(dòng)miRNA在腫瘤基因治療領(lǐng)域中的廣泛應(yīng)用.
[1]Lau N C,Lim L P,Weinstein E G,et al.An abundant class of tiny RNAs with probable regulatory roles in Caenorhabditis Elegans[J].Science,2001,294(5543):858-862.
[2]Lagos-Quintana M,Rauhut R,Meyer J,et al.New microRNAs from mouse and human[J].RNA,2003,9(2):175-179.
[3]Yu Wang,Caroline L.MicroRNA and cancer-focus on apoptosis[J].Journal of Cellular and Molecular Medicine,2009,13(1):12-23.
[4]Lewis B P,Burge C B,Bartel D P,et al.Conserved seed pairing,often flanked by adenosines,indicates that thousands of human genes are microRNA targets[J].Cell,2005,120(1):15-20.
[5]Macrae I J,Ma Enbo,Zhou Min,et al.In vitro reconstitution of the human RISC-loading complex[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2008,105(2):512-517.
[6]Hummel R,Hussey D J,Haier J.MicroRNAs:Predictors and modifiers of chemo and radiotherapy in different tumour types[J].European Journal of Cancer,2010,46(2):298-311.
[7]Johnson S M,Grosshans H,Shingara J,et al.RAS is regulated by the let-7microRNA family[J].Cell,2005,120(5):635-647.
[8]Kumar M S,Lu Jun,Mercer K L,et al.Impaired microRNA processing enhances cellular transformation and tumorigenesis[J].Nature Genetics,2007,39(5):673-677.
[9]Guled M,Lahti L,Lindholm P M,et al.CDKN2A,NF2,and JUN are dysregulated among other genes by miRNAs in malignant mesothelioma-A miRNA microarray analysis[J].Genes Chromosomes and Cancer,2009,48(1):615-623.
[10]Dong Jintang,Boyd J C,F(xiàn)rierson Jr.H F.Loss of heterozygosity at 13q14and 13q21in high grade,high stage prostate cancer[J].Prostate,2001,49(3):166-171.
[11]Cimmino A,Calin G A,F(xiàn)abbri M,et al.miR-15and miR-16induce apoptosis by targeting BCL2[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2005,30(102):13944-13949.
[12]Hermeking H.The miR-34family in cancer and apoptosis[J].Cell Death and Differentiation,2010,17(2):193-199.
[13]Tazawa H,Tsuchiya N,Izumiya M,et al.Tumorsuppressive miR-34ainduces senescence-like growth arrest through modulation of the E2Fpathway in human colon cancer cells[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2007,104(39):15472-15477.
[14]Garson R,F(xiàn)abbri M,Cimmino A,et al.MicroRNA expression and function in cancer[J].Trends in Molecular Medicine,2006,12(12):580-587.
[15]Michael M Z,O′Connor S M,Pellekaan N G,et al.Reduced accumulation of specific microRNAs in colorectal neoplasia[J].Molecular Cancer Research,2003,1(12):882-889.
[16]Xu Bin,Niu Xiaobing,Zhang Xiangxiang,et al.miR-143decreases prostate cancer cells proliferation and migration and enhances their sensitivity to docetaxel through suppression of KRAS[J].Molecular and Cellular Biochemistry,2011,350(1/2):207-213.
[17]Kulda V,Pesta M,Topolcan O,et al.Relevance of miR-21and miR-143expression in tissue samples of colorectal carcinoma and its liver metastases[J].Cancer Genetics and Cytogenetics,2010,200(2):154-160.
[18]Thai T H,Calado D P,Casola S,et al.Regulation of the germinal center response by microRNA-155[J].Science,2007,316(5824):604-608.
[19]Rodriguez A,Vigorito E,Clare S,et al.Requirement of bic/microRNA-155for normal immune function[J].Science,2007,316(5824):608-611.
[20]Fabbri M,Croce C M,Calin G A.MicroRNAs in the ontogeny of leukemias and lymphomas[J].Leukemia&Lymphoma,2009,50(2):160-70.
[21]Tam W,Hughes S,Hayward W,et al.Avian bic,a gene isolated from a common retroviral site in avian leukosis virus-induced lymphomas that encodes a noncoding RNA,cooperates with c-myc in lymphomagenesis and erythroleukemogenesis[J].Journal of Virology,2002,76(9):4275-4286.
[22]Bhatti I,Lee A,James V,et al.Knockdown of microRNA-21inhibits proliferation and increase cell death by targeting programmed cell death 4(PDCD4)in pancreatic ductal adenocarcinoma[J].Journal of Gastrointestinal Surgery,2011,15(1):199-208.
[23]Zhu Shuomin,Wu Hailong,Wu Fangting,et al.MicroRNA-21targets tumor suppressor genes in invasion and metastasis[J].Cell Research,2008,18(3):350-359.
[24]He Lin,Thomson J M,Hemann M T,et al.A microRNA polycistron as a potential human oncogene[J].Nature,2005,435(7043):828-833.
[25]O′Donnell K A,Wentzel E A,Zeller K I,et al.c-Myc regulated microRNAs modulate E2F1expression[J].Nature,2005,435(7043):839-843.
[26]Lee E J,Gusev Y,Jiang Jinmai,et al.Expression profiling identifies microRNA signature in pancreatic cancer[J].International Journal of Cancer,2007,120(5):1046-1054.
[27]Yanaihara N,Caplen N,Bowman E,et al.Unique microRNA molecular profiles in lung cancer diagnosis and prognosis[J].Cancer Cell,2006,9(3):189-198.
[28]Lu Jun,Getz G,Miska E A,et al.MicroRNA expression profiles classify human cancers[J].Nature,2005,435(7043):834-838.
[29]Takamizawa J,Konishi H,Yanagisawa K,et al.Reduced expression of the let-7microRNAs in human lung cancers in association with shortened postoperative survival[J].Cancer Research,2004,64(11):3753-3756.
[30]Krützfeldt J,Rajewsky N,Braich R,et al.Silencing of microRNAs in vivo with antagomirs[J].Nature,2005,438(7068):685-689.