李秀霞,孫協(xié)軍,馮彥博,李 嬌,勵(lì)建榮
(渤海大學(xué)化學(xué)化工與食品安全學(xué)院,遼寧錦州121013)
凌棗又稱鈴棗,其果樹(shù)耐寒、抗貧瘠,適應(yīng)性強(qiáng),是遼西地區(qū)的特色栽培品種,主要分布在遼寧省凌源市。凌棗果實(shí)脆甜,凌棗棗果富含多糖、氨基酸和多種維生素及礦物質(zhì),屬鮮食品種。有研究表明,凌棗中總黃酮含量為棗果之首[1],主要包括蘆丁、藥黃素和黃酮-C-葡萄糖苷等黃酮類化合物等[2]。這些黃酮類生物活性物質(zhì)具有很高的營(yíng)養(yǎng)保健價(jià)值,可起到消炎止咳、降血壓、降血脂、增進(jìn)冠狀動(dòng)脈血流量和防治冠心病、心絞痛等作用,經(jīng)常食用有增進(jìn)人體健康的功效。對(duì)凌棗功能性成分進(jìn)行開(kāi)發(fā)利用,對(duì)于促進(jìn)凌源棗業(yè)的發(fā)展和滿足人們對(duì)天然保健食品的需求具有重要的意義。本實(shí)驗(yàn)以遼西凌棗黃酮為研究對(duì)象,探討不同部位凌棗黃酮的含量和抗氧化活性,為凌棗功能性食品的研究和應(yīng)用開(kāi)發(fā)奠定基礎(chǔ)。
凌棗 購(gòu)于當(dāng)?shù)厥袌?chǎng);蘆丁 色譜純,中國(guó)生物制品檢定所;2,2-二苯基苦基苯肼(DPPH) 美國(guó)Sigma-aldrich公司;鄰二氮菲 天津市大茂化學(xué)試劑廠;焦性沒(méi)食子酸 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;三氟乙酸 天津大茂化學(xué)試劑廠;其他試劑 均為分析純。
P680型液相色譜儀 美國(guó)戴安公司;AD雙反型超純水機(jī) 上海訊輝環(huán)??萍加邢薰?;TU1901型紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 北京普析通用儀器公司;A-2004型電子分析天平 上海恒平科學(xué)儀器有限公司;RE-2000型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;SHZ-D(Ⅲ)型循環(huán)水真空泵、101B-2型電熱鼓風(fēng)干燥箱 上海申光儀器儀表有限公司。
1.2.1 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制 以甲醇為溶劑配成質(zhì)量濃度為1g/L的蘆丁對(duì)照品貯備液,使用時(shí)分別稀釋成系列濃度:0.02、0.06、0.10、0.20、0.50、1g/L。
1.2.2 色譜條件 參照彭艷芳[2]棗果蘆丁HPLC分析方法進(jìn)行,有所改動(dòng),具體條件為流動(dòng)相及比例:甲醇/水(80∶20,v/v),流速:1.0mL/min,進(jìn)樣量:20μL,柱溫:40℃。
1.2.3 待測(cè)樣品的制備
1.2.3.1 凌棗預(yù)處理 選擇飽滿完整的凌棗分為3份,用冷水沖洗,去除凌棗表面附著的塵土、泥沙,水蒸汽蒸30min后立即放入冷水中浸泡、剝皮。凌棗果皮、果肉、果核及全棗分別于65℃電熱鼓風(fēng)干燥箱內(nèi)烘干,粉碎機(jī)粉碎,過(guò)40目篩后裝袋密封,置于干燥器中貯存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3.2 凌棗黃酮提取方法 準(zhǔn)確稱取干燥至恒重的棗粉1.000g置于250mL圓底燒瓶中,加入一定體積和濃度的乙醇溶液,在設(shè)定溫度恒溫水浴中加熱回流提取一定時(shí)間后抽濾,收集濾液并蒸干溶劑后,用30%乙醇溶液定容至刻度,即為待測(cè)液。
1.2.3.3 黃酮得率的計(jì)算 以提取液黃酮得率作為考查指標(biāo),黃酮得率計(jì)算式為:S(%)=cv/m×100
式中:S—黃酮得率,mg/g;c—提取液蘆丁含量,mg/mL;v—提取液定容體積,mL;m—棗粉質(zhì)量,g。
1.2.4 還原力測(cè)定 參照Oyaizu和榮建華等的方法[3-4]。取2.0mL不同濃度的樣品(2~50mg/mL)或抗壞血酸溶液(標(biāo)準(zhǔn)參照物),加入2.0mL pH6.6的磷酸鹽緩沖液(0.2mol/L)和2.0mL 1%(w/v)的鐵氰化鉀溶液,混勻,在50℃保溫20min后迅速冷卻,向混合液中加入2.0mL 10%(w/v)的三氯乙酸溶液,混勻后以655.2×g離心10min。取上清液2.5mL,加入2.5mL蒸餾水和0.5mL 0.1%(w/v)的三氯化鐵溶液,然后在700nm波長(zhǎng)下比色,以水為空白。吸光值越大,則樣品的還原力越強(qiáng)。
1.2.5 清除羥自由基能力的測(cè)定 以鄰二氮菲-亞鐵化學(xué)法測(cè)定羥自由基能力清除能力[5]。取7.5mmol/L鄰二氮菲溶液1mL置于試管中,依次加入0.2mol/L的pH7.40磷酸緩沖液2mL和樣品液1mL,充分混合后,加入0.75mmol/L硫酸亞鐵液1mL,混勻,加入1mL 0.01% H2O2,于37℃下溫育60min,于536nm測(cè)其吸光度值,記為AS。用1mL蒸餾水代替1mL H2O2,測(cè)得的吸光度稱AB??瞻坠芤?.00mL蒸餾水代替1.00mL樣品作為參照,測(cè)得的吸光度為AP,羥自由基清除能力按以下公式計(jì)算:
1.2.6 清除DPPH自由基能力測(cè)定 參照Suda描述的方法進(jìn)行測(cè)定[6]。利用DPPH溶液的特征紫紅色團(tuán)的吸收峰,用分光光度法測(cè)定加不同濃度的抗氧化劑或樣品后在517nm吸收的變化表示其對(duì)有機(jī)自由基的清除能力。取2.0mL水解液,加入1.0mL 0.2mol/L磷酸鹽緩沖液(pH7.0)和2.0mL 0.2mmol/L DPPH乙醇溶液,混合均勻,于室溫下暗處放置20min,然后在517nm下測(cè)定其吸光值,自由基DPPH的清除能力以清除率計(jì)算:
式中:A1—DPPH溶液+樣品溶液的吸光度;A2—DPPH溶劑+樣品溶液的吸光度;A0—DPPH溶液+樣品溶劑的吸光度。
經(jīng)紫外可見(jiàn)光分光光度計(jì)掃描,甲醇溶液中蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品最大吸收波長(zhǎng)為360nm,因此,選擇檢測(cè)波長(zhǎng)為360nm。凌棗全棗粉中主要的黃酮類組分為蘆?。ㄒ?jiàn)圖1)[2,7],圖2為蘆丁標(biāo)樣的液相色譜圖。由色譜工作站處理數(shù)據(jù),以峰面積-質(zhì)量濃度作圖(圖形未給出),以蘆丁峰面積X為橫坐標(biāo),相對(duì)應(yīng)的質(zhì)量濃度Y(g/L)為縱坐標(biāo),得到蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線為:Y=0.0019X-0.0031,R2=0.9995,線性區(qū)間為0.02~1.00g/L,按3倍信噪比(N/S)計(jì)算,蘆丁的檢出限為:0.23μg/L。
圖1 凌棗全棗黃酮提取液色譜圖Fig.1 Chromatogram of flavonoid extract from entire ling jujube
圖2 蘆丁標(biāo)樣色譜圖Fig.2 Chromatogram of rutin standard
以75%的乙醇溶液作提取劑,在提取溫度65℃,提取時(shí)間1.5h,液固比30∶1(mL/g)條件下,提取不同部位凌棗黃酮并測(cè)定含量,測(cè)得結(jié)果表明凌棗去核全棗、棗肉、棗核和棗皮蘆丁含量分別為(3.60±0.32)、(3.85±0.27)、(0.40±0.05)、(3.50±0.65)mg/g,凌棗棗肉和棗皮中黃酮含量稍高于棗核,考慮去核全棗原料豐富易得,并易于處理,以下提取參數(shù)優(yōu)化實(shí)驗(yàn)均以凌棗去核全棗(簡(jiǎn)稱凌棗)為原料來(lái)進(jìn)行。
2.2.1 提取劑濃度對(duì)凌棗黃酮得率的影響 固定提取溫度65℃,提取時(shí)間1.5h,液固比30∶1(mL/g),考查提取劑濃度對(duì)凌棗黃酮得率的影響。實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖3所示,隨著乙醇濃度增大,黃酮得率增加。當(dāng)提取劑濃度為80%時(shí)提取量最大,提取效果最好,其后濃度升高,提取量反而下降。其原因可能是當(dāng)提取劑濃度超過(guò)80%時(shí),凌棗全棗粉中一些雜質(zhì)隨之溶出,對(duì)提取過(guò)程產(chǎn)生了干擾,從而使黃酮得率下降,因此選用濃度為80%的乙醇濃度進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)。
圖3 提取劑濃度對(duì)凌棗黃酮得率的影響Fig.3 Effect of extractant concentration on ling jujube flavonoid yield
2.2.2 液固比對(duì)凌棗黃酮得率的影響 固定乙醇濃度75%,提取時(shí)間1.5h,提取溫度75℃,考查液固比對(duì)凌棗黃酮得率的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖4所示。凌棗黃酮得率隨液固比增加而增大,當(dāng)液固比為30∶1~50∶1(mL/g)時(shí)黃酮提取效果最好,之后黃酮得率略有降低,這是由于凌棗中黃酮含量有限,當(dāng)提取溶劑用量達(dá)到一定程度后,對(duì)黃酮的提取已基本完成,再增加溶劑用量對(duì)提取得率沒(méi)有提高,而且液固比過(guò)大增加生產(chǎn)成本,浪費(fèi)溶劑,并對(duì)后續(xù)濃縮工作帶來(lái)較多不便,因此選用液固比30∶1(mL/g)為宜。
圖4 液固比對(duì)凌棗黃酮得率的影響Fig.4 Effect of ratio of liquid to solid on ling jujube flavonoid yield
2.2.3 提取溫度對(duì)凌棗黃酮得率的影響 固定乙醇濃度75%,提取時(shí)間1.5h,液固比30∶1(mL/g),考查提取溫度對(duì)凌棗黃酮得率的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖5所示。提取溫度對(duì)提取效果影響較大,隨著提取溫度的升高,凌棗黃酮得率呈逐漸上升趨勢(shì),說(shuō)明溫度越高,黃酮在提取劑中的溶解度越大,提取效果越好,同時(shí)可初步判斷凌棗黃酮耐熱性好。75℃時(shí)黃酮得率達(dá)最大值,到85℃時(shí)略有下降,說(shuō)明凌棗黃酮提取的最適提取溫度在75℃左右。一般認(rèn)為,提取溫度是增大得率的有效方式,隨著溫度的升高,溶劑的分子運(yùn)動(dòng)速度加快,滲透、擴(kuò)散、溶解速度加快,從而使黃酮更易于從棗粉細(xì)胞轉(zhuǎn)移至提取溶劑中,但由于溫度升高會(huì)溶出較多雜質(zhì),同樣會(huì)干擾黃酮的浸出。因此,選擇凌棗黃酮的提取溫度75℃進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)。
圖5 提取溫度對(duì)凌棗黃酮得率的影響Fig.5 Effect of extraction temperature on ling jujube flavonoid yield
2.2.4 提取時(shí)間對(duì)凌棗黃酮得率的影響 固定乙醇濃度75%,提取溫度75℃,液固比30∶1(mL/g),考查提取時(shí)間對(duì)凌棗黃酮得率的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖6所示。凌棗黃酮得率隨提取時(shí)間的延長(zhǎng)而增加,提取時(shí)間為1.5h時(shí)提取效果最好,之后延長(zhǎng)提取時(shí)間,提取量增長(zhǎng)幅度平緩,說(shuō)明黃酮提取已基本完成,再延長(zhǎng)提取時(shí)間對(duì)黃酮得率沒(méi)有大的提高,較長(zhǎng)時(shí)間的提取會(huì)增加能源消耗和生產(chǎn)成本,降低制備效率,故提取時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),因此選用提取時(shí)間為1.5h。
圖6 提取時(shí)間對(duì)凌棗黃酮得率的影響Fig.6 Effect of extraction time on ling jujube flavonoid yield
2.2.5 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果 根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以乙醇濃度、提取溫度、料液比、提取時(shí)間為考查因素,選用L9(34)正交表安排設(shè)計(jì)正交實(shí)驗(yàn),以黃酮得率為考查指標(biāo),并對(duì)各因素水平結(jié)果進(jìn)行極差分析,得出正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果。依據(jù)正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定并驗(yàn)證最佳制備工藝條件。
正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果分析見(jiàn)表1。運(yùn)用極差進(jìn)行數(shù)據(jù)分析處理后得到結(jié)果為:RB>RD>RC>RA,即影響凌棗棗肉黃酮類化合物提取效果的因素依次為:液固比>提取時(shí)間>提取溫度>乙醇濃度,最佳因素水平為A1B2C2D3,即最佳工藝水平為液固比30∶1(mL/g)、提取時(shí)間2h、提取溫度75℃、乙醇濃度75%。經(jīng)驗(yàn)證,在此條件下,凌棗粉中黃酮類化合物得率為5.01mg/g。
表1 正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果分析Table 1 Results of extracting orthogonal tests
2.3.1 還原力測(cè)定結(jié)果 還原力測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖7,凌棗黃酮提取液的還原力隨著提取液黃酮濃度的增加而增加,可以推測(cè)凌棗提取物中的具有電子供體作用的黃酮類物質(zhì),通過(guò)提供電子而使自由基形成穩(wěn)定的結(jié)構(gòu)從而終止了自由基的鏈?zhǔn)椒磻?yīng)。在0.15~0.73mg/mL濃度范圍內(nèi),凌棗不同部位黃酮還原力大小依次為:棗肉黃酮>全棗黃酮>棗核黃酮>棗皮黃酮。
圖7 凌棗黃酮和維生素C的還原力測(cè)定結(jié)果Fig.7 Reducing power of ling jujube flavonoid extract and ascorbic acid
2.3.2 羥自由基清除能力 本實(shí)驗(yàn)中,羥自由基是由Fe2+和H2O2反應(yīng)而產(chǎn)生的,凌棗黃酮含有的酚羥基在反應(yīng)生成的羥自由基和氧自由基的清除作用中起著氫供體的作用,還原氧化性自由基[8-9]。羥自由基清除率測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖8,在0.29~3.50mg/mL濃度范圍內(nèi),凌棗各部位黃酮提取液羥自由基清除能力均隨著濃度的增加而增大。凌棗不同部位黃酮清除羥自由基能力的順序依次為:棗肉黃酮>全棗黃酮>棗核黃酮>棗皮黃酮。
2.3.3 DPPH自由基清除能力 DPPH清除能力測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖9,凌棗不同部位黃酮對(duì)DPPH自由基的清除能力大小依次為:棗肉黃酮>全棗黃酮>棗核黃酮>棗皮黃酮,綜合以上結(jié)果,凌棗棗肉中可能含有較高活性或較高含量的活性黃酮組分。
圖8 凌棗黃酮和維生素C清除羥自由基的能力Fig.8 Hydroxyl radical scavenging activity of ling jujube flavonoid extract and ascorbic acid
圖9 凌棗黃酮和維生素C的DPPH自由基清除能力Fig.9 DPPH scavenging activity of ling jujube flavonoid extract and ascorbic acid
對(duì)凌棗黃酮回流提取工藝進(jìn)行了優(yōu)化,得到最佳工藝條件為:液固比30∶1(mL/g)、提取時(shí)間2h、提取溫度75℃、乙醇濃度75%。在此條件下,凌棗棗肉黃酮得率為5.01mg/g。凌棗不同部位黃酮還原力和羥自由基及DPPH自由基清除能力順序均為:棗肉黃酮>全棗黃酮>棗核黃酮>棗皮黃酮,說(shuō)明凌棗棗肉中含有較高活性或較高含量的黃酮類物質(zhì)。
[1] 苗利軍. 棗果中三萜酸等功能性成分分析[D]. 保定:河北農(nóng)業(yè)大學(xué),2006,38.
[2] 彭艷芳. 棗主要活性成分分析及棗蠟提取工藝研究[D]. 保定:河北農(nóng)業(yè)大學(xué),2008,8:25-26.
[3] Oyaizu M. Studies on products of browning reaction:antioxidative activities of products browning reaction prepared from glucosamine[J]. Japan J Nutr,1986,44:307-315.
[4] 榮建華,李小定,謝筆鈞. 大豆肽體外抗氧化效果的研究[J].食品科學(xué),2002,23(11):118-120.
[5] Jin M,Cai YX,Li JR,et al. 1,10-Phenanthroline-Fe2+oxidative assay of hydroxyl radical produced by H2O2/Fe2+[J].Prog in Biochem Biophys,1996,23:553-555.
[6] Suda I.Antioxidative activity,in The methods of food functions analysis[M]. Japan:Korin Tokyo,2000:218-220.
[7] 胥秀英,鄭一敏,傅善權(quán),等. 高效液相色譜法測(cè)定大棗中蘆丁的含量[J]. 食品科學(xué),2004,25(4):147-149.
[8] 周冰潔,陳炳華,王晶晶,等. 5種不同寄主來(lái)源的紅花寄生葉提取物清除羥自由基的能力[J]. 福建師范大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2010,26(4):84-89.
[9] 楊映雪,陳建業(yè),王亞平. 黃芪總黃酮的抗氧化作用[J]. 川北醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2007,22(6):606-608.